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tmTNF-α促凋亡正向信号和抗凋亡反向信号转导机制的研究

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英文缩略词表

中文摘要

英文摘要

第一部分 tmTNF-α促凋亡正向信号转导机制的研究

前言

材料与方法

一. 材料

三、实验方法

实验结果

一、两型TNF-α通过TNFR1介导的信号机制差异的研究

二、STAT1在tmTNF-α/TNFR1信号转导中的作用

讨论

小结

第二部分tmTNF-α抗凋亡反向信号通路的研究

前言

材料与方法

一.材料

二.实验方法

实验结果

1. 前期工作结果

2. tmTNF-α不与经典途径分子发生免疫共沉淀

3. tmTNF-α反向信号激活NF-κB经典途径

4. tmTNF-α反向信号可活化Akt途径

5.抑制Akt活化可拮抗tmTNF-α反向信号组成性活化NF-κB经典途径

6. tmTNF-α不与Akt上游信号分子发生免疫共沉淀

讨论

小结

本研究主要创新点

参考文献

综述: TNF-α信号的调节:生存或死亡

附录

致谢

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摘要

肿瘤坏死因子α(TNF-α)分为两型:跨膜型 TNF-α(tmTNF-α)和分泌型 TNF-α(sTNF-α)。tmTNF-α表达在淋巴细胞,活化的巨噬细胞等细胞表面,剪切后分泌到细胞外,即 sTNF-α。两型 TNF-α均可导致肿瘤细胞凋亡,但 tmTNF-α能诱导抵抗sTNF-α的肿瘤细胞凋亡,提示两型TNF-α凋亡信号通路可能不同。本实验室已证实两型 TNF-α都可以通过和 TNFR1结合进而介导细胞凋亡,但 tmTNF-α不能引起TNFR1的内化,也不依赖TNFR1的DD和NSD传递死亡信号,但其机制尚不清楚。
  此外,tmTNF-α也可传递反向信号:即作为配体向细胞内传导信号。本实验室已证实tmTNF-α通过其反向信号诱导NF-κB经典途径组成性活化,上调抗凋亡分子,使肿瘤细胞耐药并抑制凋亡,但其具体分子机制不详。
  本研究拟探索tmTNF-α通过正向信号介导凋亡和tmTNF-α通过反向信号保护肿瘤细胞抵抗凋亡的分子机制。其主要研究结果如下:
  一、 tmTNF-α促凋亡正向信号转导机制的研究
  1.两型TNF-α在细胞不同部位通过TNFR1形成DISC复合物
  分别用tmTNF-α或sTNF-α作用TNFR1高表达的U937细胞30min,提取总蛋白进行免疫共沉淀(co-immunoprecipitation, Co-IP)证实:两型TNF-α均可通过TNFR1募集TRADD、FADD和Caspase8,形成DISC复合物。随后收集刺激后的细胞(同上),提取细胞膜和细胞浆蛋白进行Co-IP证实:sTNF-α诱导TNFR1在胞浆中形成DISC,而tmTNF-α则诱导TNFR1在胞膜上形成DISC。
  2. sTNF-α通过TNFR1激活NF-κB,而tmTNF-α则不能
  分别用tmTNF-α或sTNF-α作用TNFR1高表达的U937细胞30min,提取细胞膜蛋白,Co-IP实验结果可见sTNF-α作用TNFR1后,可以在细胞膜上募集形成信号复合物I,而tmTNF-α则不能。用Western blot证实sTNF-α可诱导IκB-α降解,激活经典NF-κB通路,而tmTNF-α则无此效应。用MTT实验证实两型TNF-α均有胞毒效应,用PDTC抑制NF-κB活化,对tmTNF-α的杀伤作用无影响,仅能促进sTNF-α对肿瘤细胞的杀伤作用。
  3. tmTNF-α以DD非依赖方式诱导TNFR1募集STAT1和DISC分子
  分别将含 wild-type TNFR1和ΔDD-TNFR1突变体基因的真核表达载体转染至293T细胞,两型TNF-α刺激30 min后,用TNFR1单抗对总蛋白或胞膜蛋白进行免疫共沉淀,结果证实:与wild-type TNFR1相比,ΔDD-TNFR1使sTNF-α诱导TNFR1募集STAT1减少,并不能募集DISC复合物,然而却不影响tmTNF-α诱导TNFR1募集STAT1和DISC的形成。在胞膜上sTNF-α不能诱导TNFR1及其突变体募集STAT1,而tmTNF-α则可为之,并形成DISC,且不受缺失DD的影响。
  4. STAT1为tmTNF-α/TNFR1介导凋亡信号及其胞毒效应所必需
  tmTNF-α可诱导表达STAT1的HT1080细胞形成大量TNFR1/DISC复合物,却使STAT1缺陷细胞株U3A形成TNFR1/DISC明显减少;用siRNA下调HT1080细胞STAT1基因表达或转染U3A细胞STAT1基因可分别抑制或增强tmTNF-α的凋亡信号。用MTT实验证实tmTNF-α对HT1080有明显的胞毒效应,却对U3A细胞杀伤能力明显减弱,转染STAT1可恢复tmTNF-α的胞毒效应。体内荷瘤实验证实注射tmTNF-α质粒可明显抑制HT1080肿瘤的生长,促进肿瘤细胞凋亡,但对STAT—的U3A肿瘤的生长则无明显抑制作用。
  5.确认tmTNF-α诱导TNFR1与STAT1结合的位点
  利用PCR获得Δ338-455-TNFR1,Δ319-455-TNFR1和Δ266-455-TNFR1等3种不同的胞浆段截短型TNFR1突变体,并转染293T细胞,用tmTNF-α刺激30 min,结果证实只有野生型TNFR1和Δ338-455-TNFR1突变体可募集STAT1,其他2种突变体则不行,提示STAT1与TNFR1的318~337位氨基酸结合。此外,转染Δ338-455-TNFR1突变体,只有tmTNF-α,而非sTNF-α,可诱导STAT1与之结合,提示sTNF-α诱导TNFR1募集STAT1是间接的。
  6. STAT1 S727磷酸化是tmTNF-α诱导TNFR1募集DISC所必需
  用两型TNF-α刺激U937细胞30min,Western blot证实sTNF-α诱导STAT1的Y701磷酸化,而tmTNF-α则刺激STAT1的Y701和S727均发生磷酸化;转染S727A可完全阻断tmTNF-α诱导TNFR1募集DISC分子。
  结论:与sTNF-α不同,tmTNF-α通过TNFR1募集STAT1,进而募集TRADD与其他DISC分子,诱导细胞凋亡,且不激活NF-κB,显示比sTNF-α杀瘤的优越性。
  二、 tmTNF-α抗凋亡反向信号通路的研究
  本室前期工作证实tmTNF-α通过反向信号诱导肿瘤细胞组成性活化NF-κB经典途径,导致肿瘤细胞抵抗凋亡而耐药。但是,tmTNF-α通过其反向信号激活经典NF-κB的机制尚不清楚。本研究初步证实:
  1. tmTNF-α不募集NF-κB经典途径的分子
  提取Raji细胞总蛋白,并用本室自制的tmTNF-α单抗进行Co-IP,证实tmTNF-α不能与RIP1、TRAF2、TRAF3、TAK1、IKKβ和p65等NF-κB经典途径分子发生共沉淀,只能与IKKα(可参与NF-κB非经典途径)发生共沉淀,提示tmTNF-α不能通过募集NF-κB经典途径的上游分子激活NF-κB经典途径。
  2. tmTNF-α反向信号激活NF-κB经典途径
  转染wild-type tmTNF-α或TNF-LS(缺失胞外段)至293T细胞,用Western blot证实二者均可导致IκB降解,cIAP1增加,以及NF-κB负性调控分子CYLD减少。再次证实tmTNF-α可通过其反向信号激活NF-κB经典途径。
  3. tmTNF-α反向信号通过Akt途径激活NF-κB
  转染wild-type tmTNF-α或TNF-LS(缺失胞外段)至293T细胞,用Western blot证实二者均可导致Akt磷酸化增加,提示tmTNF-α反向信号可活化Akt途径。用Akt抑制剂LY294002抑制Akt磷酸化,则可阻断tmTNF-α反向信号诱导的IκBα降解,提示tmTNF-α通过Akt途径激活NF-κB经典途径。
  4. tmTNF-α反向信号可能直接激活Akt
  分别提取Raji细胞总蛋白和转染TNF-LS的293T细胞总蛋白,免疫共沉淀实验证实tmTNF-α可与Akt发生共沉淀,却不能与其上游信号分子PI3K发生共沉淀,提示Akt存在于tmTNF-α反向信号复合物中,但是Akt磷酸化机制尚不明确,还需进一步实验研究。
  结论:本研究结果初步证实tmTNF-α反向信号可通过Akt诱导NF-κB经典途径的活化。但是,tmTNF-α反向信号活化Akt的分子机制尚需进一步研究。
  本研究在分子水平阐明了tmTNF-α通过TNFR1诱导凋亡的信号通路,并初步证实tmTNF-α反向信号间接活化NF-κB经典途径,促进肿瘤细胞生存。为认识tmTNF-α正向和反向信号转导通路提供实验依据,为临床肿瘤治疗提供新的思路与靶点。

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