P53介导的ROS及线粒体通路在Azurin及其联合化疗药物诱导骨肉瘤细胞凋亡的机制探讨

摘要

背景:
　　 骨肉瘤因其恶性程度高、转移早，目前临床上治疗多采用手术配合化疗、放疗的综合疗法，但限于手术治疗的致残率高、假体功能差，放化疗毒副反应大，晚期肿瘤容易形成对化疗药物的耐受，极易复发，再次治疗也极为棘手，故而骨肉瘤的远期生存率较低，疗效难如人意，传统疗法的局限使得骨肉瘤的新型疗法如生物治疗、免疫治疗、基因治疗和微生物纯化产物治疗正日益成为研究和临床的焦点与热点。
　　 近年Yamada研究报道由假单孢细菌分泌的含铜细菌氧化还原蛋白Azurin，可以与P53蛋白结合形成复合体，抑制P53降解，从而稳定P53蛋白。它在体外细胞试验和体内荷瘤裸鼠实验中均可诱导P53野生型的单核巨噬细胞、黑色素瘤细胞、乳腺癌细胞凋亡，而在呈现P53突变或缺失的黑色素瘤细胞、乳腺癌细胞中细胞毒性大大降低，其细胞毒性具有明显的P53选择性。尤为关键的是，在恶性黑色素瘤细胞、乳腺癌细胞的裸鼠体内移植瘤瘤块中，野生型Azurin可以促使移植瘤退变，抑制移植瘤瘤块生长，诱导肿瘤细胞凋亡，而裸鼠体内却没有发现明显的毒副作用。这一发现为活菌产物纯化蛋白Azurin应用于临床肿瘤治疗带来了希望和前景。
　　 浙二骨科研究所杨迪生教授和苗旭东等人已经对Azurin蛋白在人骨肉瘤细胞中开展了一系列体外细胞实验研究。结果如下:Azurin抑制了骨肉瘤的生长，诱导P53野生型U2OS细胞凋亡，而对正常肝脏L-02、P53突变型入骨肉瘤MG-63细胞毒性较小。对其分子机制的进一步研究发现:P53蛋白是其发挥凋亡效应的关键因素，Bax的线粒体移位、Bcl-2/Bax比例的下调、caspase-3，8活性增加、线粒体、细胞外Fas受体途径都参与了Azurin诱导U2OS细胞凋亡的分子机制。
　　 野生型P53基因是一种抑癌基因，p53的主要功能在于阻滞细胞周期或者诱导细胞凋亡。在p53诱导的细胞凋亡信号途径中有三个关键步骤:(i)氧化还原相关基因的转录诱导;(ii)形成的活性氧(ROS)的形成;(iii)线粒体成分的氧化降解，最终活化caspase导致细胞凋亡。
　　 在骨肉瘤的化疗中，药物毒副反应较大，同时肿瘤由于反复给药极易获得耐药性，复发率较高，因此远期生存率较低。研究表明，肿瘤细胞对细胞凋亡逃避导致的细胞凋亡抵抗(resistance to apoptosis)是肿瘤耐药发生的主要原因之一，细胞内活性氧自由基(ROS)及谷胱甘肽(GSH)还原体系状态水平的改变与细胞凋亡密切相关。因此肿瘤细胞的耐药性与其细胞内的ROS水平差异密切相关。通过调节细胞内GSH水平或升高ROS水平，可以增强化疗药物的凋亡诱导效应。
　　 据此，我们推测Azurin上调p53转录活性，引发胞内氧化还原状态失衡，通过线粒体途径诱导了细胞凋亡，同时，Azurin是否对骨肉瘤化疗药物顺铂(Cisplatin，CDDP)、氨甲喋呤(MTX)、阿霉素(ADM)和异环磷酰胺(IFO)具有化疗增敏效应？并探讨p53、GSH、ROS在Azurin化疗增敏效应中的具体作用机制。
　　 方法:
　　 本实验选取三种P53不同基因型的骨肉瘤细胞株（p53野生型U2OS、p53突变型MG-63、p53缺失型SAOS-2）以及一种p53野生型正常人外周血单核细胞(PMBCs)，应用MTT比色法检测细胞存活率，应用Annexin(Ⅴ)、PI双染流式细胞仪检测细胞凋亡率Annexin(Ⅴ) positive cell(％)，通过流式细胞仪、荧光显微镜检测线粒体膜电位(△Ψm)以及线粒体内膜心磷脂氧化，通过细胞免疫荧光技术、激光共聚焦以及亚细胞器蛋白分离Western blot技术检测线粒体内外膜间蛋白CytochromeC（细胞色素C）、AIF（凋亡诱导因子）释放进入细胞质、细胞质Bax移位线粒体，采用Western blot检测线粒体核心凋亡蛋白Bcl-xL、MCL-1、XIAP、survivin、Bak、Bid、tBid的表达，通过流式细胞仪检测活性氧(H202)、超氧阴离子(O2-)以及一氧化氮(NO)，通过酶标仪比色法检测胞内GSH、细胞外液GSH、谷胱甘肽过氧化物酶(GPX)、GSSG（氧化型GSH）、谷胱甘肽还原酶(GR)水平，报告基因质粒pp53-TA-luc和内参Renilla-luc瞬时共转染骨肉瘤细胞SAOS-2(null)、MG-63(mut)、U2OS（wt），荧光检测仪检测上述细胞荧光素酶活性，即p53基因的转录活性。并采用线粒体膜PT孔道抑制剂环孢菌素A(CsA);还原剂Catalase、NAC、MnTBAP; GSH耗竭剂BSO; P53信号阻断剂PFT-α从正反二个方向验证，以明确线粒体、ROS、P53的具体作用机制。
　　 结果:
　　 首先我们观察了Azurin通过P53途径诱导了肿瘤细胞凋亡。
　　 为进一步明确Azurin的P53选择性杀灭肿瘤机理，我们选取了其他组织来源的不同P53基因型背景的肿瘤细胞:携带野生型P53的人肝癌细胞系HepG2细胞株、肺癌细胞株A549、骨肉瘤细胞株U2OS;具有P53突变型的肺癌细胞株H322、肝癌细胞株Huh-7细胞、骨肉瘤细胞株MG-63;呈现P53缺失型的肺癌细胞株H1299、肝癌细胞株Hep3B细胞、骨肉瘤细胞株SAOS-2;携带野生型P53的正常人外周血单核细胞(PMBCs)。并通过MTT法观察了Azurin对上述细胞系细胞增殖的影响。
　　 通过MTT试验，我们发现在肺癌、肝癌、骨肉瘤细胞株的不同P53基因背景的肿瘤细胞中，Azurin也同样明显抑制了携带野生型P53的HepG2、A549、U2OS细胞的增殖活性，与之相反，在P53功能性失活的细胞中，Azurin的细胞毒性明显减弱。在上述细胞中，Azurin同样表现出明显的P53选择性细胞毒性效应，同时对正常PMBCs细胞毒性较小。
　　 在p53野生型U2OS细胞中，经Azurin处理后，caspase-3活性明显增加，启动Caspase级联反应，PARP发生剪切，诱导细胞凋亡。反之，在p53突变型MG-63、p53缺失型SAOS-2细胞株中，Azurin上调的caspase-3激酶活性、Annexin V positivecell(％)均明显减弱;试验进一步采用P53信号阻断剂PFT-α预孵育U2OS细胞，观察其对Azurin作用后的Cleaved-PARP蛋白、激酶caspase-3活性、Annexin Vpositive cell(％)、MTT等指标的影响，我们发现PFT-α几乎完全抑制了Azurin诱导的Caspase-3的活化、PARP的剪切、Annexin V positive(％)的上调;从而证实了Azurin的细胞凋亡分子机理呈现P53依赖性。
　　 其次我们检测了Azurin诱导的线粒体损伤。
　　 P53野生型细胞U2OS经Azurin作用后，JC-1红绿荧光比值明显下降，即线粒体膜电位(△Ψm)发生了降低;线粒体NAO荧光强度明显降低，即线粒体内膜心磷脂含量的减少，内膜产生了脂质过氧化损伤，引起线粒体外膜通透性增加;细胞质蛋白Bax单体靶向移位聚集线粒体外膜，构型改变发生寡聚化，构成跨线粒体外膜的蛋白孔道，引发线粒体外膜通透性进一步增加。Bcl-2家族抑凋亡蛋白Bcl-xL和MCL-1、XIAP的蛋白表达水平自8h时间点开始降低，促凋亡蛋白Bak的表达量呈现时间依赖性上调，同时截短型Bid(tBid)从4h时间点开始出现，24h时间点tBid蛋白表达量达到峰值，Bid蛋白发生了剪切。与心磷脂结合的细胞色素C得以解偶联，线粒体内外膜之间的蛋白Cytochrome C（细胞色素C）、AIF（凋亡诱导因子）经蛋白孔道大量释放进入细胞质，启动caspase的级联反应，激活下游效应器caspase-3，AIF进而易位细胞核，在核内通过和DNA结合导致染色质聚集并断裂。
　　 值得注意的是，在p53突变型MG-63、p53缺失型SAOS-2细胞以及正常人外周血单核细胞(PMBCs)中，经Azurin处理后，线粒体膜电位△、ψm、线粒体内膜心磷脂含量均未见明显改变，提示P53信号途径与Azurin诱导的线粒体损伤有关。
　　 为了明确线粒体途径在Azurin诱导细胞凋亡中的作用，我们采用线粒体膜PT孔道抑制剂环孢菌素A(CsA)预先孵育U2OS细胞，CsA明显抑制了Azurin增强的caspase-3活性、Cleaved-PARP蛋白的上调以及细胞凋亡。但却对Azurin诱导的胞内的ROS水平上调、GSH水平降低近乎没有影响，这提示线粒体通道开放事件发生较晚，是位于氧化还原系统失衡发生的下游事件。
　　 再次，我们观察了Azurin诱导的细胞内氧化还原状态失衡。
　　 Azurin在P53野生型U2OS细胞中，迅速引发DCF(H2O2)、ethidium(O2-)荧光强度的显著上调，却对DAF-FM(NO)荧光强度没有影响，即Azurin主要引起了过氧化氢(H2O2)、超氧阴离子(O2-)这二种自由基的上升，却对一氧化氮(NO)没有影响。
　　 同时我们观察了Azurin对U2OS细胞GSH还原系统的影响，我们发现Azurin抑制谷胱甘肽过氧化物酶(GPX)的合成与酶的活性，氧化型GSSG含量大大增加，降低了GSH还原系统的抗氧化能力，诱发GSH释放进入细胞外液，进一步耗竭细胞内GSH，促发氧化还原系统失衡。
　　 应用GSH的前体抗氧化剂NAC预处理P53野生型U2OS细胞，我们发现NAC明显抑制了Azurin诱导的胞内GSH水平降低以及ROS上调，也阻止了Azurin促发的线粒体膜电位的下降以及内膜心磷脂的过氧化，并最终抑制了caspase活化介导的细胞凋亡。从而提示Azurin引发的胞内氧化还原状态失衡是介于线粒体损伤发生之前的上游事件。
　　 试验进一步采用还原剂过氧化氢(H2O2)酶Catalase预处理P53野生型细胞U2OS，Catalase抑制了Azurin诱导的胞内ROS水平上调以及细胞凋亡，却对Azurin所致的GSH水平降低没有影响，这表明Azurin在U2OS细胞中首先引发了GSH水平的下降，进而导致了氧自由基过氧化氢(H2O2)的积聚。GSH下降是先于ROS积聚发生的上游事件。
　　 我们还采用超氧阴离子清除剂MnTBAP预处理P53野生型细胞U2OS，发现其对Azurin诱导的胞内氧化应激、caspase活性均没有影响，这表明虽然超氧阴离子水平呈现上调，但其并未参与Azurin诱导的细胞凋亡。
　　 同U2OS细胞相比，P53突变型细胞MG63、p53缺失型SAOS-2经Azurin处理后，过氧化氢(H2O2)、超氧阴离子(O2。)、细胞外液GSH、细胞内GSH含量、谷胱甘肽过氧化物酶(GPX)活性均未见明显改变。
　　 BSO抑制细胞内GSH合成，P53突变型MG63、p53缺失型SAOS-2细胞经BSO作用后，胞内GSH显著下降，氧自由基水平急剧增高，线粒体△ψm明显降低，线粒体内膜脂质发生过氧化，Caspase活化，诱导细胞发生凋亡。BSO模拟了Azurin在U2OS中的细胞毒性效应。
　　 上述结果表明GSH耗竭、ROS的积聚在Azurin诱导的细胞凋亡中发挥着重要作用，并且氧化应激有可能受p53途径调控。
　　 最后，我们观察了P53信号通路、氧化应激、线粒体损伤、细胞凋亡间的相互关系。
　　 我们将报告基因质粒pp53-TA-luc和内参Renilla-luc瞬时共转染肺癌细胞株H1299(null)、H322(mut)、A549（wt）;肝癌细胞株Hep3B(null)、Huh-7(mut)、HepG2（wt）;骨肉瘤细胞株SAOS-2(null)、MG-63(mut)、U2OS（wt），荧光检测仪检测荧光素酶活性，我们发现Azurin增强了p53基因的转录活性。
　　 试验进一步采用p53抑制剂PFT-α(pifithrinalpha, PFT-α)干扰试验，阻断U2OS的P53信号途径，结果显示PFT-α的预处理抑制了Azurin触发的GPX活性降低、GSH下降、ROS上调;线粒体膜电位△ψm降低、内膜心磷脂氧化;Bax移位线粒体;细胞色素C、AIF释放进入胞质。这表明Azurin介导的氧化还原状态失衡、线粒体损伤受p53信号途径调控。
　　 此外，实验结果还显示:在U2OS细胞中，NAC预处理抑制了Azurin上调的P53转录活性，而GSH耗竭剂BSO则在U2OS细胞中模拟了Azurin上调的P53转录活性，从而提示氧化还原状态的失衡正反馈激活了P53信号途径。
　　 上述研究结果表明，P53信号通路及其调控的GSH代谢、ROS水平、线粒体途径，在Azurin诱导的靶细胞凋亡过程中扮演着重要角色。
　　 我们选取骨肉瘤化疗常用药物如顺铂(Cisplatin，CDDP)、氨甲喋呤(MTX)、阿霉素(ADM)和异环磷酰胺(IFO)，在U2OS、MG-63、SAOS-2细胞中，进行Azurin的药物增敏活性筛选，以验证小剂量Azurin联合低浓度化疗药物是否对骨肉瘤细胞的杀伤具有增敏效应？并就P53、ROS、GSH在其中的分子机制进一步探讨。
　　 在顺铂、氨甲喋呤的药敏试验中，在U2OS细胞中，MTT显示，低剂量Azurin显著增加顺铂、氨甲喋呤的细胞毒性，联合给药具有协同效应。同时，也引发了 GSH下降、ROS增加。还原剂NAC、p53抑制剂PFT-α(pifithrinalpha，PFT-α)预处理U2OS后，明显抑制了联合给药组所致的GSH降低、ROS上调以及细胞存活率的下降。而在P53功能缺失的其余二株MG-63、SAOS-2细胞中，联合给药组缺乏协同效应，同时，MG-63、SAOS-2胞内GSH、ROS水平也几乎没有改变。
　　 以上数据表明了在Azurin联合顺铂、氨甲喋呤组的增敏效应中，P53及其调控的氧化还原状态失衡尤为关键。
　　 在阿霉素、异环磷酰胺的药敏试验中，有趣的是，在三种MG-63、SAOS-2、U2OS细胞中，小剂量Azurin都显著增强了阿霉素、异环磷酰胺的细胞毒性，在联合给药中，我们没有观察到GSH下降、ROS增加，还原剂NAC、p53抑制剂PFT-α(pifithrinalpha，PFT-α)的预处理对联合给药组所致的细胞存活率的下降也近乎没有影响，从而提示在MG-63、SAOS-2、U2OS中，Azurin对阿霉素、异环磷酰胺细胞毒性的增敏效应与P53、ROS途径无关。这表明在P53功能性缺失的肿瘤细胞中，Azurin也可对化疗药物的细胞毒性具有协同增敏效应，从而避免其局限于P53野生型肿瘤细胞。
　　 此外，试验还发现对于人外周血单核细胞(PBMC)细胞，Azurin联合顺铂、氨甲喋呤、阿霉素、异环磷酰胺给药组的细胞毒性相对较小。这意味着，联合给药组既避免了单独给药时肿瘤细胞的获得性耐药，又使得其对正常体细胞的毒副反应大大降低。
　　 结论:
　　 综上所述，在杨迪生教授、苗旭东等人的工作基础上，我们进一步探讨了P53、ROS、线粒体途径在Azurin细胞毒性中的分子机制:Azurin增强p53转录活性↑→p53胞内水平↑→谷胱甘肽过氧化物酶(GPX)↓→GSH、↓→ROS↑→线粒体内膜心磷脂氧化→线粒体膜电位(△Ψm)↓→Bax移位线粒体→细胞色素C、AIF释放进入胞质→激活线粒体途径→caspase活化→骨肉瘤细胞凋亡。P53基因调控的氧化还原状态失衡(GSH耗竭和ROS增高)在其中尤为关键。此外，通过P53依赖性或者非P53依赖性途径，Azurin与低剂量化疗药物如顺铂(Cisplatin，CDDP)、氨甲喋呤(MTX)、阿霉素(ADM)和异环磷酰胺(IFO)的联合给药具有协同效应，Azurin对上述化疗药物体外骨肉瘤细胞的细胞毒性具有增敏效应，其P53依赖性增敏机制与P53调控的氧化应激密切相关，而其不依赖于P53的增敏机制则与氧自由基水平无关。
　　 本论文的研究结果将不仅有助于发现Azurin的可能作用靶点以及信号通路，还为Azurin的临床前期开发应用提供充分的实验依据，也为今后Azurin应用于临床骨肉瘤化疗的联合用药提供了安全有效的分子策略。

目录

声明

致谢

摘要

中英文缩略语表

引言

实验材料与方法

1．1 实验材料及仪器设备

1．1．1 细胞系

1．1．2 主要仪器设备

1．1．3 药品和试剂

1．2 实验方法

1．2．1 细胞复苏

1．2．2 细胞培养

1．2．3 外周血单核细胞分离

1．2．4 MTT法测细胞增殖

1．2．5 中位效应法判断不同浓度Azurin与化疗药物联用对各种细胞系凋亡的影响

1．2．6 Annexin V-FITC／PI检测Annexin V阳性细胞

1．2．8 Luciferase报告基因检测

1．2．9 线粒体内膜心磷脂脂质氧化的检测

1．2．10 线粒体膜电位的检测

1．2．11 活性氧自由基(ROS)的检测

1．2．12 还原型谷胱甘肽(GSH)含量的检测

1．2．13 细胞外GSH含量检测

1．2．14 谷胱甘肽过氧化物酶(GPX)活性的检测

1．2．15 免疫荧光定位检测细胞色素C、AIF、bax亚细胞器定位

1．2．16 蛋白兔疫印迹(Western blot)检测目的蛋白的表达

1．2．17 数据统计分析

实验结果与讨论

2．1 Azurin通过P53途径诱导肿瘤细胞凋亡

2．1．1 Azurin对不同组织来源、不同P53基因型背景的肿瘤细胞增殖的影响

2．1．2 Azurin诱导了不同组织来源的P53野生型肿瘤细胞发生凋亡

2．1．3 Azurin诱导骨肉瘤细胞凋亡的P53依赖性机制

2．2 Azurin诱导的线粒体损伤

2．2．1 Azurin诱导线粒体膜电位的下降

2．2．2 Azurin诱导线粒体内膜心磷脂过氧化

2．2．3 Azurin诱导线粒体细胞色素C释放进入细胞质

2．2．4 Azurin诱导AIF释放进入细胞质和细胞核

2．2．5 Azurin诱导Bax线粒体的移位

2．2．6 Azurin对U2OS细胞的凋亡相关蛋白表达的影响

2．2．7 线粒体PT孔道的开放在Azurin诱导细胞凋亡中的作用

2．3 Azurin诱导的细胞内氧化还原状态失衡

2．3．1 Azurin引发的活性氧自由基水平的变化

2．3．2 Azurin对GSH还原系统的影响

2．3．3 抗氧化剂Catalase、NAC、MnTBAP预孵育对Azurin细胞毒性效应的影响

2．3．4 GSH耗竭在Azurin诱导细胞凋亡中的作用机制

2．4 P53信号通路、氧化应激、线粒体损伤、细胞凋亡间的相互关系

2．4．1 氧化应激以及P53信号通路对细胞色素C、AIF释放进入胞质的影响

2．4．2 氧化应激以及P53信号通路对Bax移位线粒体的影响

2．4．3 P53信号通路对Azurin诱导线粒体损伤的影响

2．4．4 P53信号通路对Azurin诱导的ROS水平增高、GSH含量降低的影响

2．4．5 氧化应激对p53基因转录活性的影响

2．5 Azurin对化疗药物细胞毒性的增敏效应及其分子机制

2．5．1 Azurin分别对顺铂、氨甲喋呤、阿霉素、异环磷酰胺化疗药物的骨肉瘤细胞毒性的增敏效应

2．5．2 抗氧化剂NAC、P53信号阻断剂PFT-α对Azurin化疗药物细胞毒性增敏效应的影响

2．5．3 Azurin分别联合顺铂、氨甲喋呤、阿霉素、异环磷酰胺给药引发骨肉瘤细胞胞内氧自由基水平的改变

2．5．4 Azurin分别联合顺铂、氨甲喋呤、阿霉素、异环磷酰胺给药对GSH还原系统的影响

2．5．5 抗氧化剂NAC、P53信号阻断剂PFT-α对Azurin联合化疗药物处理组所致细胞氧化应激的影响

2．5．6 Azurin分别与顺铂、氨甲喋呤、阿霉素、异环磷酰胺联合给药对正常人外周血单核细胞(PMBCs)活性的影响

全文总结

参考文献

综述 TRAIL受体转导与调节机制

个人简历