声明
摘要
第一章 引言
第一节 HHV-8简介
1.1.1 HHV-8基因组简介
1.1.2 HHV-8基因组的特点
1.1.3 HHV-8的生活周期
第二节 HHV-8 ORF57基因及其表达产物
1.2.1 HHV-8 ORF57的基因结构
1.2.2 HHV-8 ORF57表达动力学及其定位
1.2.3 HHV-8 ORF57二级结构
第三节 HHV-8 ORF57的功能
1.3.1 HHV-8 ORF57在转录后水平促进无内含子基因的表达
1.3.2 HHV-8 ORF57作为剪接因子调节病毒RNAs剪接
1.3.3 HHV-8 ORF57在病毒转录中的作用
1.3.4 HHV-8 ORF57其它可能的功能
1.3.5 问题和展望
第四节 本文的研究意义
第二章 材料与方法
第一节 实验材料
2.1.1 菌株
2.1.2 引物
2.1.3 质粒
2.1.4 试剂
2.1.5 软件
第二节 实验方法
2.2.1 质粒的构建
2.2.2 目的重组蛋白的诱导表达与纯化
2.2.3 多克隆抗体的制备
2.2.4 蛋白免疫印迹系列检测
第三章 实验结果
第一节 质粒的构建
3.1.1 pET28a-ORF57(18-455)的构建
3.1.2 pET28a-ORF57(112-455)的构建
3.1.3 pET28a-ORF57(18-369)的构建
3.1.4 pET28a-ORF57(112-369)的构建
3.1.5 pET28a-ORF57(18-135)的构建
3.1.6 pET28a-ORF57(18-159)的构建
3.1.7 pET28a-ORF57(18-197)的构建
3.1.8 pET28a-ORF57(88-197)的构建
3.1.9 pET28a-ORF57(112-197)的构建
第二节 蛋白的表达和纯化
3.2.1 高量表达可溶性蛋白构建的筛选
3.2.2 ORF57(88-197)的表达和纯化
3.2.3 ORF57(112-197)的表达和纯化
第三节 抗体的制备及测试
3.3.1 anti-ORF57(88-197)抗体测试
3.3.2 anti-ORF57(112-197)抗体测试
第四章 讨论
第一节 外源表达片段的选择
第二节 目的蛋白的表达与纯化
4.2.1 目的蛋白在诱导表达中的表现
4.2.2 透析过程中蛋白的行为和洗脱缓冲液中的NaCl有关
第三节 抗体灵敏度和特异性评价
4.3.1 对anti-ORF57(88-197)抗体的评价
4.3.2 对anti-ORF57(112-197)抗体的评价
第五章 结论
参考文献
致谢
个人简历
南开大学;