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骨髓基质细胞-脱细胞骨基质-bFGF复合体修复兔膝关节关节软骨缺损的实验研究

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论文说明:英文缩略语表

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第一部分 体外骨髓基质细胞分离、培养及骨髓基质细胞在脱细胞骨基质友架体外部殖观察

1.材料和方法

2.结果

第二部分骨髓基质细胞-bFGF-脱细胞骨基质支架对兔关节软骨修复的实验研究

1.材料与方法

2 结果

3.讨论

4.结论

5.参考文献

文献综述 应用外科技术及组织工程技术修复膝关节关节软骨缺损的研究进展

攻读学位期间发表文章情况

个人简历

致谢

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摘要

目的:应用软骨组织工程技术,体外分离培养兔骨髓基质细胞(bone marrow stem cells,BMSCs)作为种子细胞,并与兔同种异体脱细胞骨基质(Acller bone matrix,ACBM)支架材料复合,造成兔膝关节5mm×5mm×3mm关节软骨缺损,植入BMSCs-ACBM复合体,观察其对关节软骨缺损的修复作用;并关节内应用碱性成纤维生长因子(basic fi-broblast growth factor,bFGF)缓释微球,观察bFGF对BMSCs-ACBM复合体修复关节软骨的强化作用。期望能够找到理想的修复关节软骨缺损的方法。方法:①MSCs细胞分离、培养:取2月龄健康兔3只,无菌穿刺抽取骼骨骨髓4-6ml,应用Percoll分离法分离获得BMSCs,进行原代、传代细胞培养,倒置相差显微镜观察细胞形态和生长状况。②ACBM的制备:按照Urist方法制备ACBM。将健康四月龄新西兰白兔麻醉后处死,取椎体松质骨,存放在-80℃冰柜中冻存72h,仔细剔除附着软组织,置于脱钙液中脱钙;脱脂;以无菌蒸馏水反复冲洗、浸泡。取出后自然晾干,剪成5mm×5mm×3mm的圆柱体状,环氧乙烷消毒。③取培养第二代BMSCs,调整细胞浓度为5×106/ml,接种到ACBM上,复合培养7天,电镜观察BMSCs在ACBM内生长增殖情况。④取4月龄健康新西兰白兔36只,双侧股骨滑车处钻直径5mm,深度3mm的关节软骨缺损,深达髓腔。随机分为3组,每组12只:A组,实验组,双膝软骨缺损处植入BMSCs+ACBM,并关节内应用b-FGF缓释微球;B组,对照组,双膝软骨缺损处植入BMSCs+ACBM;C组:支架组,双膝软骨缺损处植入ACBM。分别于术后4、8、12、16 w猝死动物取材,每组次3只,行大体和组织学观察。结果:原代BMSCs细胞诱导培养5d左右,即可达到90%以上的融合;电镜观察BMSCs细胞与ACBM黏附良好。A组体内植入16w后均形成成熟的软骨组织,并基本保持了复合物初始的大小和形状,新生软骨外观及组织学特征与正常关节软骨基本相同的类透明软骨,而B组形成纤维软骨样组织,C组是纤维结缔组织。结论:BMSCs—ACBM可有效治疗骨软骨缺损,b-FGF对BMSCs+ACBM修复软骨骨缺损的具有明显强化作用,BMSCs+ACBM+b-FGF联合应用是一种简单有效的修复骨软骨缺损的方法。但该实验仅为临床修复软骨缺损提供了一种思路,一种方法,因动物与人体存在种属差异,其临床应用之前仍需标准化的动物模型及优化实验设计。

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