声明
摘要
缩写词表
第一章 研究背景
1.1 纤维素资源的开发利用
1.2 纤维素的结构
1.3 纤维素的微生物降解
1.3.1 纤维素降解微生物
1.3.2 纤维素降解机制
1.3.3 纤维素结晶区的降解策略
1.4 Ⅸ型分泌系统
1.5 Cytophaga hutchinsonii研究背景
1.5.2 C.hutchinsonii的特征
1.5.3 C.hutchinsonii的研究进展
1.7 论文的立题和工作思路
第二章 基于FLP/FRT重组系统外源DNA插入整合技术的建立
2.1 材料与方法
2.1.1 菌种及质粒
2.1.2 实验中用到的引物
2.1.3 主要试剂及仪器
2.1.4 培养条件
2.1.5 分子生物学常用反应体系及操作
2.1.6 E.coli感受态的制备与转化
2.1.7 C.hutchinsonii感受态的制备与转化
2.2 实验结果
2.2.1 含单个FRT位点C.hutchinsonii出发菌株的构建
2.2.2 基于FLP/FRT重组系统的基因组插入整合质粒的构建
2.2.3 外源基因基于FLP/FRT重组系统的表达实例
2.3 讨论
第三章 chu_3220基因功能研究
3.1 材料和方法
3.1.1 菌种及质粒
3.1.2 实验中用到的引物
3.1.3 主要试剂及仪器
3.1.4 培养条件
3.1.5 插入突变筛选纤维素降解缺陷株
3.1.6 滤纸降解实验
3.1.7 基因敲除
3.1.8 再生无定形纤维素(RAC)的制备
3.1.9 生长曲线测定
3.1.10 RT-PCR
3.1.11 RT-qPCR
3.1.12 XRD测定纤维素结晶度
3.1.13 纤维素底物利用效率测定
3.1.15 蛋白表达与纯化
3.1.16 纤维素结合实验
3.1.17 蛋白定位
3.1.18 纤维素酶活测定
3.1.19 菌体对纤维素吸附效率测定
3.1.20 离子色谱测定纤维素降解产物
3.1.21 基因表达水平测定
3.1.22 纤维素内切酶酶活的复性电泳
3.2 结果
3.2.1 转座子插入突变获得滤纸降解缺陷株
3.2.2 生物信息学分析
3.2.3 chu_3220是纤维素结晶区降解必需基因
3.2.4 CHU_3220是纤维素结合蛋白
3.2.5 CHU_3220的亚细胞定位
3.2.6 chu_3220在不同碳源中的表达水平变化
3.2.7 chu_3220对纤维素酶的影响
3.2.8 chu_3220对纤维素水解产物的影响
3.2.9 影响纤维素结晶区降解的其他因素
3.3 讨论
第四章 chu_1557基因功能研究
4.1 材料和方法
4.1.1 菌种及质粒
4.1.2 实验中用到的引物
4.1.3 主要试剂及仪器
4.1.4 培养条件
4.1.5 转座子插入突变筛选纤维素降解缺陷株
4.1.6 滤纸降解实验
4.1.7 生长曲线测定、基因敲除和XRD测定纤维素结晶度
4.1.8 基因表达水平检测
4.1.9 葡萄糖吸收实验
4.1.10 胞内ATP测定
4.1.11 RT-PCR、RT-qPCR、蛋白定位、纤维素内切酶酶活测定
4.1.12 纤维素吸附蛋白的制备
4.2 结果
4.2.1 转座子插入突变获得滤纸降解缺陷株
4.2.2 chu_1557表达水平检测
4.2.3 chu_1557影响纤维素结晶区降解
4.2.4 XRD测定纤维素的结晶度
4.2.5 chu_1557与葡萄糖的吸收相关
4.2.6 低浓度葡萄糖预培养能够回复突变株纤维素降解的能力
4.2.7 添加葡萄糖能够回复突变株降解纤维素的能力
4.2.8 chu_1557的缺失影响了胞内ATP水平
4.2.9 CHU_1557的亚细胞定位
4.2.10 CHU_1557是纤维素结合蛋白
4.2.11 chu_1557对纤维素酶的影响
4.2.12 chu_1557的缺失对外膜蛋白的影响
4.3 讨论
全文总结及展望
参考文献
在读期间发表的学术论文
致谢
学位论文评阅及答辩情况表