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5-氟尿嘧啶和柳氮磺胺吡啶对胰腺癌细胞BxPC-3体内体外凋亡及增殖的作用

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中文论著摘要

英文论著摘要

英文缩略语

论文一 5-氟尿嘧啶和柳氮磺胺吡啶体外对胰腺癌细胞株BxPC-3抗增殖影响

前言

材料与方法

结果

附论文图表

讨论

结论

论文二 柳氮磺胺吡啶和5-氟尿嘧啶诱导胰腺癌细胞株BxPC-3凋亡基因、多药耐药基因的作用

前言

材料和方法

结果

附论文图表

讨论

结论

论文三 Sulfafalazine和5-FU对胰腺癌细胞株BxPC-3裸鼠皮下异位移植瘤凋亡基因、多药耐药基因的作用

前言

材料和方法

结果

附论文图表

讨论

结论

本研究创新自我评价

参考文献

综述 NF-κB在胰腺癌凋亡调控、多药耐药机制及抗增殖的作用

在学期间科研成绩

致谢

个人简历

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摘要

目的: 本研究目的在于通过抑制NF-к B活性消除胰腺癌细胞对5-FU化疗耐药并探讨5-FU和sulfasalazine对胰腺癌细胞株BxPC-3抗增殖作用是否与诱导胰腺癌细胞凋亡有关。我们应用RT-PCR和Western Blot检测NF-к B(P65)、Bcl-2、MDR、cyclinD1 mRNA和蛋白水平的变化,探讨在体内、外条件下sulfasalazine,5-FU单独及联合作用于胰腺癌细胞株BxPC-3及细胞BxPC-3裸鼠异位移植瘤上述凋亡相关基因表达之间关系及相互作用机制,为深入研究胰腺癌凋亡机制、多药耐药及细胞增殖周期内在联系,为克服胰腺癌多药耐药提供一定的实验依据。 方法: 一、细胞培养细胞株BxPC-3用RPM11640培养液(10%胎牛血清,2.0mmol/L谷氨酰胺、100u/ml青霉素、100mg/L链霉素)在37℃,5%CO<,2>条件培养。 二、采用四甲基唑蓝(MTT)法检测生长抑制率不同浓度的(12.5,25,50,100 mg/L)5-FU、(25,50,100,200 mg/L)sulfasalazine单独及联合作用(终浓度为100+200,100+100,50+200,50+100 mg/L)细胞BxPC-3在不同时间的生长抑制率,并设立各自同期阴性对照组,酶联免疫检测仪在波长570nm测吸收光度值(A值),计算生长抑制率=(阴性对照组A<,1>值-用药组A值)/(阴性对照组A<<1>值一空白组A<,n>值)×100%,上述实验重复3次。 三、PI染色法检测细胞BxPC-3中晚期凋亡率及细胞周期的变化不同浓度的(12.5,25,50,100mg/L)5-FU、(25,50,100,200mg/L)sulfasalazine单独及联合作用(终浓度为100+200,100+100,50+200,50+100mg/L)同步化的细胞BxPC-3在不同时间(12,24,36,48h)的中晚期凋亡率及细胞周期变化,设3个阴性对照组(分别为0.09%NaCl,0.2%DMSO,0.09%NaCl+0.2%DMSO),低于G<,1>期亚二倍体细胞为凋亡细胞,用CELL Quest软件(Becton Dickson,美国)分析样本,测出各细胞周期百分率和凋亡率,并按以下公式计算增殖指数(PI):PI=(S+G<,2>/M)/(G<,0>/G<,1>+S+G<,2>/M)。每个样本检测10,000个细胞,上述实验重复6次。 四、PI/Annexin-V 双染法检测早期凋亡率(100mg/L)5-FU、(200mg/L)sulfasalazine单独及联合作用同步化的胰腺癌细胞株BxPC-3在不同时间(12,24,36,48h)的早期凋亡率,设3个阴性对照组(分别为0.09%NaCl,0.2%DMSO,0.09%NaCl+0.2%DMSO),冷PBS洗涤2次,离心1000rpm 5分钟4℃,弃上清,细胞重悬于200ul binding buffer;加10ulAnnexin V-FITC和5ul PI,轻轻混匀,4℃避光反应30分钟,每个样品加300ulBinding buffer,在1小时内上机检测,上述实验重复6次。 五、免疫细胞化学法检测凋亡相关蛋白的表达(100mg/L)5-FU,(200mg/L)sulfasalazine单独及联合作用细胞BxPC-3 24h时NF-к B(P65),Bcl-2,cyclinD1蛋白表达,并设立各自阴性对照组,95%乙醇固定30min,1%Triton-X-100作用30min,分别与兔抗人NF-к B(P65),Bcl-2,cyclin D1抗体4℃结合24h,与生物素标记山羊抗兔IgG 37℃ 10min,DAB显色,苏木素复染,梯度脱水中性树胶封固。根据阳性细胞数和染色强度行半定量分析。 六、相差显微镜观察细胞形态变化观察(100mg/L)5-FU,(200mg/L)sulfasalazine单独及联合作用细胞BxPC-324h及各自对照组细胞形态变化。 七、透射电镜观察细胞内超微结构变化(100mg/L)5-FU,(200mg/L)sulfasalazine单独及联合作用细胞BxPC-3及各自对照组细胞24h后,PBS洗涤2次,2.5%戊二醛前固定,1%锇酸后固定,乙醇脱水,树脂包埋,超薄切片,电子染色,透射电镜下观察。 八、扫描电镜观察细胞表面的微细结构变化(100mg/L)5-FU,(200mg/L)sulfasalazine单独及联合处理细胞BxPC-3及各自对照组细胞24h后,PBS洗涤2次,2.5%戊二醛前固定,0.3%硝酸银染色20秒,脱水后液态CO<,2>干燥,喷金包埋。每个样本取8个区域,于10,000x扫描电镜下观察。 九、实验裸鼠皮下异位移植瘤模型建立及实验分组BALB/c nu/nu裸小鼠雄:雌性比3:1,鼠龄4-6周,体重(20±2)g,共66只,在SPF条件下饲养。收集体外大量培养细胞株BxPC-3制成浓度为5.0×10<'6>个/ml单细胞悬液,在无菌条件下接种于裸小鼠肩胛背部为0.5ml/只,经过2-3个月,待移植瘤直径达到0.6-0.8cm,将移植瘤裸鼠随机分为11组,5-FU、sulfasalazine联合作用组(15+20,15+10,7.5+20,7.5+10mg/kg)、sulfasalazine单独作用组(20,10mg/kg)、5-FU单独作用组(15,7.5mg/kg)及各自阴性对照组分别为control1(NS:DMSO=1:1混合液)、controL2(DMSO)、control3(NS):按上述方案移植瘤体内注射,隔日1次,治疗共4周,颈椎脱位处死裸鼠,取出肿瘤称重,测量大小,放入EP管中存于-70℃冰箱中备用。 十、RT-PCR法检测5-FU、sulfasalazine单独及联合作用胰腺癌细胞BxPC-3及皮下异位移植瘤凋亡相关基因(Bcl-2,cyclinD1,Bax及NF-к B(P65))的mRNA水平变化收集移植瘤各处理组、收集各处理组细胞及各自对照组,RNAout提取总RNA,在紫外线分光光度仪测定总RNA含量,取1ul总RNA为模板按照TakaRa公司RNA PCR Kit(AMV)Ver.3.0操作步骤,逆转录合成cDNA,其反应体系为10ul,PCR仪扩增反转录反应产物,反应体系为40 ul,结果采用紫外凝胶成像分析系统行目的基因表达水平半定量分析,以上实验重复6次。 十一、Western Blot检测检测5-FU、sulfasalazine单独及联合作用胰腺癌细胞BxPC-3及皮下异位移植瘤凋亡相关基因(Bcl-2,oyclinD1,Bax,MDR1及NF-к B(P65))的蛋白水平变化。 取移植瘤各处理组或收集各处理组及各自对照组,冷PBS洗涤3次,置于冷裂解液(50mmol/L Tris[PH 7.4],150mmol/L NaCl,2.0mmol/L EDTA,1%NP-40)中,4℃离心12,000g 15min,按上述方法制备的20 μg溶胞产物加到样本缓冲液中,煮沸,取等量蛋白行SDS-PAGE电泳,分离蛋白转印,脱脂奶粉封闭,加入一抗(1:200)4℃过夜,TTBS漂洗5min,2次,与二抗(1:200)反应2h,漂洗2次,AP显色30min,成像分析软件Fluorchem V 2.0测定主带吸光度值计算上述指标的蛋白表达水平,以上实验重复6次。 结论: Sulfasalazine有抑制胰腺癌细胞BxPC-3增殖和增强5-FU诱导细胞凋亡作用,二者作用细胞BxPC-3有协同生长抑制作用,此作用与二者协同诱导细胞凋亡和细胞周期阻滞于Go/G<,1>期密切相关。 Bcl-2,cyclinDl,MDR1及NF-к B(P65)mRNA和蛋白水平下调是sulfasalazine协同增强5-FU诱导细胞BxPC-3凋亡作用机制之一。 Sulfasalazine可协同增强5-FU诱导裸鼠皮下异位移植瘤胰腺癌细胞BxPC-3凋亡作用:Bax水平上调,Bcl-2,cyclinD1,MDR1及NF-к B(P65)水平下调可能是二者联合作用皮下异位移植瘤凋亡机制之一。

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