声明
摘要
图目录
表目录
主要符号表
1 绪论
1.1 研究背景与意义
1.1.1 细胞外微环境的复杂性和动态性
1.1.2 细胞内Ca2+信号动力学的重要功能
1.2 国内外相关工作研究进展
1.2.1 体外模拟动态生化信号的微流控研究
1.2.2 体外模拟剪切力刺激的微流控研究
1.3 本文研究思路、内容及技术路线
1.4 本文组织结构
2 微流控芯片及动态信号加载装置的流体力学设计
2.1 Y型微流控通道设计及流体力学分析
2.2 具有驻点流特点的变截面微流控通道设计及流体力学分析
2.3 Y型均匀截面微通道与驻点流变截面微通道的整合及其流体力学分析
2.4 微流控通道的计算分析方法
2.4.1 2D计算方法
2.4.2 3D计算方法
2.5 微流控通道内流场分布
2.5.1 流线与流场分布
2.5.2 流速剖面
2.5.3 3D流速仿真结果和2D解析公式的比较
2.6 微流控通道内壁面剪切力分布
2.7 恒定生化因子在微流控通道定常流中的的空间浓度分布
2.8 动态生化信号的生成原理及实验系统的整体设计
2.9 讨论
2.10 本章小结
3 生化信号在微通道内传输时的传输特性:低通滤波效应和非线性幅频调制
3.1 引言
3.2 微流控芯片装置系统的搭建
3.2.1 微流控芯片装置系统的构成
3.2.2 实验设备和材料
3.2.3 微流控芯片加工制作
3.2.4 动态荧光素信号的产生方法
3.3 研究方法
3.3.1 数值模拟方法
3.3.2 荧光素溶液实验验证方法
3.4 生化信号在定常流中的传输特性:低通滤波效应
3.4.1 数值仿真结果
3.4.2 荧光素溶液实验验证结果
3.5 生化信号在脉动流中的传输特性:非线性幅频调制
3.5.1 数值仿真结果
3.5.2 荧光素溶液实验验证结果
3.6 讨论
3.7 本章小结
4 剪切力和ATP时空信号对细胞内钙信号动力学的影响
4.1 引言
4.2 设备和材料
4.2.1 实验设备
4.2.2 实验材料
4.3 方法
4.3.2 荧光素溶液实验验证方法
4.3.3 试剂配制
4.3.4 细胞培养
4.3.5 细胞内Ca2+信号响应胞外刺激实验
4.4 实验结果与分析
4.4.1 动/静态ATP信号在微流控通道内不同位置处的时空分布
4.4.2 微流控通道内不同位置处提供单独或者联合剪切力和生化信号的刺激
4.4.3 单独或联合动态剪切力和静态ATP信号刺激对细胞内Ca2+响应的影响
4.4.4 单独或联合静态剪切力和动态ATP信号刺激对细胞内Ca2+响应的影响
4.4.5 单独静/动态ATP信号刺激对细胞内Ca2+响应的影响
4.4.6 不同频率动态剪切力和动态ATP信号刺激对细胞内Ca2+响应的影响
4.5 讨论
4.6 小结
5 结论与展望
5.1 结论
5.2 创新点
参考文献
攻读博士学位期间科研成果及科研项目
致谢
作者简介