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【6h】

Stra8在精子发生中抑制细胞凋亡及与Setd8相互作用的初步研究

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目录

摘要

符号说明

第一部分:Stra8在精子发生中抑制凋亡作用机制的初步探索

前言

实验材料

一、细胞株

二、实验动物

三、实验仪器

四、实验相关试剂与配制

实验方法

一、细胞培养

二、TUNEL

三、流式细胞仪检测细胞凋亡:Annexin V/PI双染色法

四、使用基因芯片分析凋亡差异表达基因

五、qRT-PCR

六、Western blot

七、统计学分析

实验结果

一、在Stra8 KO小鼠模型中发现Stra8抑制凋亡作用

二、在VAD和VAR小鼠模型中验证Stra8抑制凋亡作用

三、在Stra8过表达精原细胞验证Stra8抑制凋亡的作用

四、Stra8抑制凋亡的机制研究

讨论

第二部分:体外细胞系中Stra8与Setd8相互作用分析

前言

实验材料

一、细胞株

二、实验仪器

三、实验相关试剂与配制

实验方法

一、RA诱导P19细胞分化

二、Stra8过表达精原细胞的细胞周期同步化

三、细胞免疫荧光法

四、统计学分析

实验结果

一、Stra8过表达精原细胞中Stra8,Setd8和H4K20me1的表达分析

二、RA诱导P19细胞分化后Stra8,Setd8和H4K20me1的表达分析

三、Stra8过表达细胞株的细胞周期同步化方法的建立与鉴定

四、Stra8过表达细胞株不同周期Stra8,Setd8和H4K20me1的表达

讨论

总结

参考文献

综述 雄性小鼠联会复合体的研究进展

致谢

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摘要

Stra8(stimulated by retinoic acid gene8,Stra8),是视黄酸(retinoic acid,RA)诱导基因之一,对于减数分裂启动和男性生殖发育具有重要作用。Stra8在正在分化的精原细胞到前细线期精母细胞表达。而且Stra8在细胞核与细胞质均具有定位,并根据发挥功能的不同在核质之间穿梭。Stra8敲除小鼠不育,但其在精子发生中的作用及机制尚未阐明。本课题通过以下两个部分研究Stra8在精子发生中的作用与机制:第一,Stra8在精子发生中抑制细胞凋亡机制的初步探索。第二,体外研究Stra8与Setd8的相互作用。该研究为揭示Stra8在精子发生中的作用奠定了基础。
  本文主要从以下几个部分展开论述:
  第一部分 Stra8在精子发生中抑制细胞凋亡机制的初步探索。
  (一)通过体内和体外实验,发现并鉴定Stra8在精子发生中具有抑制细胞凋亡的作用。在Stra8KO小鼠模型、维生素A缺乏小鼠(VAD)及VAD恢复小鼠(VAR)中发现Stra8具有抑制凋亡的作用。我们选择11dpp的StraSKO小鼠睾丸进行TUNEL实验并计数凋亡细胞,结果发现:与WT小鼠相比,Stra8KO小鼠生精细胞管内凋亡细胞数量明显增加。其次,构建维生素A缺乏和VAD恢复小鼠模型(VAD and VAR)。通过TUNEL实验发现在45天和61天的VAD小鼠模型中,凋亡细胞明显增加,进一步验证Stra8具有抑制凋亡作用。最后,在Stra8过表达精原细胞验证了Stra8抑制凋亡的作用,应用TUNEL实验和流式细胞术对凋亡细胞进行计数,也发现在Stra8过表达精原细胞内凋亡细胞数量明显减少。
  (二)通过基因微阵列分析,探索Stra8抑制细胞凋亡的机制及相关通路。通过基因微阵列分析,我们发现了5个上调基因和4个下调基因与细胞凋亡相关。通过qRT-QCR验证与文献查阅发现,在这些DEGs中,PDK1(AKT重要上游因子)、ANG2(BCL2抑制因子)、USP33、TCF4、GSTP1(MAPK相关因子)、OSGIN1(P53相关因子)和Caspase3与AKT信号通路相关,同时BCL2、P53、ERK(MAPK1/3)、JNK(MAPK8/9)和P38(MAPK14)是AKT信号通路的关键因子。
  (三)Stra8在精子发生中抑制凋亡作用的潜在通路绘制。我们进一步在mRNA和蛋白水平检测发现,与对照组相比,Stra8过表达精原细胞内PDK1、AKT、BCL2和ERK的表达水平均明显升高,P53mRNA表达水平显著降低,但其蛋白表达没有明显差别。同时,通过检测发现,与对照组相比,Stra8过表达精原细胞内Caspase3在mRNA和蛋白水平均表达降低。因此,Stra8可能通过AKT通路直接或间接抑制P53或激活BCL2家族基因,与MAPK通路相互作用,进而抑制caspases家族基因,发挥抑制凋亡作用。
  第二部分 体外研究Stra8与Setd8的相互作用。
  (一)Stra8过表达精原细胞和P19细胞中Stra8、Setd8和H4K20me1的表达。应用WB检测Stra8过表达精原细胞内Setd8和H4K20me1的表达发现,与对照组相比,在Stra8过表达精原细胞中,Set8表达降低,而H4K20me1表达增高,提示三者之间可能具有相互调控关系。之后,我们应用4μM RA诱导P19细胞36-48hr,使其瞬时过表达Stra8,然后检测诱导后P19细胞内Set8和H4K20me1的表达,结果发现,与未诱导P19相比,RA诱导P19细胞分化后,Set8表达水平降低,而H4K20me1表达增高,与在Stra8过表达精原细胞的表型一致,进一步验证三者之间具有相互调控关系。
  (二)Stra8过表达细胞株的细胞周期同步化方法的建立。由于Stra8、Setd8和H4K20me1的表达与细胞周期相关。因此我们参照Hela细胞的细胞周期同步化方法,将Stra8过表达精原细胞同步化至细胞周期的不同阶段。首先,应用血清剥夺法同步化Stra8过表达精原细胞至G1期,分别血清剥夺培养细胞24,36,48,60,72,84,96hr,发现血清剥夺培养72hr后,细胞周期同步化至G1期效率最高,达60-70%。其次,应用“二次胸苷(2.5mM)阻滞法”同步化Stra8-GC1至S期,第二次释放时间分别为0,3,6,9hr,发现二次释放时间3hr后细胞的S期同步化效率最好,达60-70%。最后,应用100ng/ml诺考达唑分别处理4,8,12hr,发现处理8hr后细胞的M期同步化效率最好,达90%以上。
  (三)Stra8,Setd8和H4K20mel在Stra8过表达细胞株在细胞周期不同阶段的表达。我们应用细胞免疫荧光和Western Bloting法检测Stra8过表达精原细胞细胞周期不同阶段Stra8,Setd8和H4K20me1的表达,发现在Stra8-GC1内,Stra8表达在G1期低,S期达到高峰,信号核质均有,在G2/M期表达降低;Setd8表达在G1期无表达,在S期后期开始表达,信号主要在细胞核,在G2/M期表达水平达高峰;H4K20me1表达模式与Setd8表达相似。经过表型分析与文献查阅我们猜测在细胞周期S期中,Stra8抑制E3泛素连接酶相关基因表达,CRL4Cdt2,SCFSkp2等,减弱其对Set8的降解作用,导致Setd8总体表达下降;而由于H4K20me1提前表达,反而导致H4K20me1总体表达水平提高。

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