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【6h】

脱氢表雄酮对支气管上皮细胞上皮间质转化的作用及机制

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摘要

缩略词表

前言

第一章 材料与方法

1.1 实验对象

1.2 仪器设备及试剂

1.2.1 仪器设备

1.2.2 主要试剂与耗材

1.3 试剂的配制

1.4 实验方法

1.4.1 16HBE-14o细胞的培养

1.4.2 实验分组及给药方案

1.4.3 Western blot检测

1.5 统计分析

第二章 结果

2.1 TGF-β1诱导EMT模型的建立

2.2 不同浓度DHEA对TGF-β1诱导EMT的抑制作用

2.3 TGF-β1处理后不同时间点p-AKT及AKT蛋白表达变化

2.4 各组细胞p-AKT及AKT蛋白表达变化

2.5 各组细胞E-cadherin及α-SMA蛋白表达变化

2.5.1 各组细胞E-cadherin蛋白表达变化

2.5.2 各组细胞α-SMA蛋白表达变化

第三章 讨论

3.1 EMT与哮喘气道重塑的关系

3.2 TGF-β1诱导EMT模型的建立

3.3 DHEA通过AR发挥对EMT的作用

3.4 DHEA对EMT的抑制作用与PI3K/AKT途径有关

第四章 结论

参考文献

综述

致谢

攻读学位期间研究成果

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摘要

目的:采用转化生长因子-β1(transforming growth factor-β1,TGF-β1)诱导人支气管上皮细胞株16HBE-14o构建上皮-间质转化(Epithelial-Mesenchymal Transition,EMT)模型,观察脱氢表雄酮(Dehydroepiandrosterone,DHEA)对TGF-β1诱导的EMT的作用,并探讨其具体机制。
   方法:1.将16HBE-14o用含有5%胎牛血清的MEM培养基培养,5ng/ml TGF-β1作用16HBE-14o72h,观察细胞的形态变化,采用Westem Blot(WB)检测E-钙粘素(E-cadherin)、α-平滑肌肌动蛋白(α-smooth muscle actin,α-SMA)表达。2.给予不同浓度(1μM、10μM、100μM) DHEA预处理细胞24h,后加入TGF-β1干预72h,检测方法同1。3.设DHEA100(DHEA终浓度为100μM)+ TGF-β1组和TGF-β1组,在不同时间点(0、0.5h、1h、2h)采用WB检测两组细胞p-AKT及AKT的变化过程。4.分别予雄激素受体(androgenreceptor,AR)拮抗剂氟他胺、PI3K抑制剂LY294002(LY)或PI3K激动剂IGF-1预处理细胞,设八组,分别为(1)无处理组;(2) TGF-β1组;(3) DHEA100+ TGF-β1组;(4) DHEA100+ TGF-β1+氟他胺组;(5) TGF-β1+ LY组;(6) TGF-β1+ IGF-1组;(7) TGF-β1+ DHEA100+LY组;(8) TGF-β1+ DHEA100+ IGF-1组,TGF-β1共同干预1h后立即收集细胞,WB检测各组细胞p-AKT及AKT的变化。各组细胞加入TGF-β1培养72h后立即收集细胞,WB检测各组细胞E-cadherin、α-SMA表达。
   结果:1.TGF-β1作用72h后,细胞鹅卵石外观变为梭形,细胞间连接疏松。E-cadherin表达下降;α-SMA表达增强。2.不同浓度DHEA对TGF-β1诱导EMT均有抑制作用,且呈浓度依赖性,100μMDHEA抑制作用最强。3.TGF-β1组、DHEA100+ TGF-β1组均在TGF-β1处理后,p-AKT蛋白表达增加,1h达到高峰。DHEA抑制p-AKT蛋白表达,AKT蛋白表达无明显差异(P>0.05)。4.氟他胺可减轻DHEA对p-AKT蛋白表达及EMT过程的抑制作用。5.LY可进一步降低p-AKT蛋白表达及EMT过程;IGF-1促进p-AKT蛋白表达及EMT发生。
   结论:1.TGF-β1能诱导16HBE-14o发生EMT。2.DHEA对TGF-β1诱导的EMT有抑制作用,且呈浓度依赖性。3.DHEA通过AR而发挥对TGF-β1诱导的EMT的抑制作用。4.DHEA对EMT的抑制作用与PI3K/AKT信号途径有关。

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