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摘要
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化学缩写符号简表
第一章 前言
1.1 研究背景
1.2 研究意义
1.3 人工核酸酶的切割机理
1.3.1 水解切割机理
1.3.2 氧化切割机理
1.3.3 消去机理
1.4 常用的研究方法
1.4.1 光谱法
1.4.2 质谱法
1.4.3 凝胶电泳法
1.4.4 X-射线晶体衍射法
1.4.5 核磁共振法
1.5 人工核酸酶的分类
1.5.1 单核配合物
1.5.2 双核配合物
1.5.3 三核及多核配合物
1.6 罗丹明B荧光探针
1.7 课题的来源和研究目的
1.8 硕士论文的设计思路和研究内容
第二章 二齿配体的设计与合成
2.1 引言
2.2 实验部分
2.2.1 实验仪器及试剂
2.2.2 配体(L1-L3)合成路线
2.2.3 中间体1(HCCP)的台成
2.2.4 中间体2(C54H34N3O8P3)的台成
2.2.5 中间体3(C54H38N3O8P3)的合成
2.2.6 中间体4(C54H36Br2N3O6P3)的合成
2.2.7 配体L1(C62H52N5O8P3)的合成
2.2.8 配体L2(C60H42N7O6P3)的合成
2.2.9 配体L3(C60H42N7O6P3)的合成
2.3 中间体4(C54H36Br2N3O6P3)单晶的培养及晶体结构描述
2.3.1 中间体4(C54H36Br2N3O6P3)单晶的培养
2.3.2 中间体4(C54H36Br2N3O6P3)单晶结构
2.4 结果与讨论
2.4.1 合成中问题的讨论
2.4.2 配体L1-L3的波谱分析
2.5 本章小结
第三章 四齿配体的设计与合成
3.1 实验部分
3.1.1 实验仪器及试剂
3.1.2 配体L4-L6合成路线
3.1.3 中间体6(C48H32N3O10P3)的合成
3.1.4 中间体7(C48H40N3O10P3)的合成
3.1.5 中间体8(C48H36Br4N3O6P3)的合成
3.1.6 配体L4(C64H68N7O10P3)的合成
3.1.7 配体L5(C60H48N11O6P3)的合成
3.1.8 配体L6(C60H48N11O6P3)的合成
3.2 中间体6(C48H32N3O10P3)单晶的培养及晶体结构描述
3.2.1 中间体6(C48H32N3O10P3)单晶的培养
3.2.2 中间体6(C48H32N3O10P3)单晶结构
3.4 结果与讨论
3.4.1 合成中问题的讨论
3.4.2 配体L4-L6的波谱分析
3.5 本章小结
第四章 配体L1-L6对DNA氧化切割活性的研究
4.1 引言
4.1.1 凝胶电泳的实验原理
4.2 实验部分
4.2.1 实验仪器与试剂
4.2.2 溶液的配制
4.2.3 实验方法
4.3 实验结果与讨论
4.3.1 金属离子的考查
4.3.2 配合物L1-Cu氧化切割DNA条件优化
4.3.3 配合物L2-Cu氧化切割DNA条件优化
4.3.4 配合物L3-Cu氧化切割DNA条件优化
4.3.5 配合物L4-Cu氧化切割DNA条件优化
4.3.6 配合物L5-Cu氧化切割DNA条件优化
4.3.7 配合物L6-Cu氧化切割DNA条件优化
4.3.8 二齿配体活性比较
4.3.9 四齿配体活性比较
4.3.10 二齿与四齿配体活性比较
4.4 本章内容小结
第五章 基于环磷腈的罗丹明衍生物(L7)的合成及光谱性能研究
5.1 前言
5.2 实验仪器及药品
5.3 配体L7合成路线
5.4 合成步骤
5.4.1 中间体10(RB-乙醇胺)的合成
5.4.2 配体L7(C168H172N15O18P3)的合成
5.5 光谱性质研究
5.5.1 L7对金属离子的选择性
5.5.2 阳离子干扰实验
5.5.3 Fe3+滴定实验
5.5.4 Pb2+滴定实验
5.5.4 PH值依赖实验
5.6本章内容小结
结论
参考文献
附录
硕士期间发表的学术论文
致谢