摘要
缩略语
1 前言
1.1 淡水涡虫简介
1.2 饥饿对涡虫组织结构、细胞形态和基因表达的影响
1.2.1 涡虫生长和退行生长
1.2.2 饥饿对涡虫组织结构和细胞形态的影响
1.2.3 饥饿对涡虫干细胞及干细胞相关基因表达的影响
1.3 饥饿生理学研究进展
1.3.1 饥饿对动物体重和组织器官结构的影响
1.3.2 饥饿对动物生理代谢的影响
1.4 饥饿诱导的细胞死亡方式及其分子机制
1.4.1 细胞自溶及其演变和发展
1.4.2 细胞自噬及其分子机制
1.4.3 饥饿诱导细胞凋亡的分子机制
1.5 课题提出的意义和主要研究内容
2 材料与方法
2.1 实验动物及处理
2.2 主要仪器
2.2 主要试剂及配制
2.3 实验方法
2.3.1 石蜡切片制备和HE染色
2.3.2 透射电镜样品制备
2.3.3 蛋白质浓度的测定
2.3.4 SDS-PAGE电泳
2.3.5 Wrestem-blot
2.3.6 转氨酶、乳酸脱氢酶和肌酸激酶活性的测定
2.3.7 丙二醛含量、超氧化物歧化酶和过氧化氢酶活性的测定
2.3.8 磷酸酶活性电泳
2.3.9 蛋白水解酶活性电泳
2.3.10 总RNA提取和cDNA合成
2.3.11 半定量PCR检测PCNA mRNA的表达变化
2.3.12 基因组DNA提取
2.3.13 质粒DNA提取
2.3.14 JM109和BL21感受态细胞的制备
2.3.15 mRNA差异显示技术筛选饥饿诱导上调表达的ESTs
2.3.16 cDNA片段的纯化、克隆载体的连接及转化
2.3.17 双向电泳-差异蛋白质组学分析
2.3.18 DjHSP90 cDNA全长克隆
2.3.19 DjGRP78 cDNA全长克隆
2.3.20 DjHSP40 cDNA全长克隆
2.3.21 实时荧光定量PCR
2.3.22 DjHSP90抗血清制备
2.3.23 DjHSP70抗血清制备
2.3.24 免疫组化技术
2.3.25 细胞大小的测量
2.3.26 涡虫整体免疫组化技术
3 结果
3.1 持久饥饿对日本三角涡虫组织结构、细胞形态的影响
3.2 持久饥饿对日本三角涡虫体内6种酶活性的影响
3.2.1 持久饥饿对日本三角涡虫转氨酶活性的影响
3.2.2 持久饥饿对日本三角涡虫磷酸酶活性的影响
3.2.3 持久饥饿对日本三角涡虫蛋白水解酶活性的影响
3.2.4 持久饥饿对日本三角涡虫肌酸激酶和乳酸脱氢酶活性的影响
3.3 持久饥饿对日本三角涡虫干细胞标志基因PCNA表达的影响
3.4 持久饥饿诱导日本三角涡虫上调表达基因的筛选
3.5 持久饥饿诱导日本三角涡虫上调表达蛋白质的筛选
3.6 持久饥饿诱导日本三角涡虫氧化和抗氧化性损伤研究
3.7 日本三角涡虫DjHSP90/DjGRP78/DjHSP40基因克隆及表达模式
3.7.1 日本三角涡虫DjHSP90基因克隆及生物信息学分析
3.7.2 日本三角涡虫DjGRP78基因克隆及生物信息学分析
3.7.3 日本三角涡虫DjHSP40基因克隆及生物信息学分析
3.7.4 持久饥饿对DjHSP90、DjGRP78和DjHSP40基因表达的影晌
3.8 日本三角涡虫DjHSP90抗血清的制备及原位表达
3.8.1 DjHSP90 C-端多肽表达载体的构建与诱导表达
3.8.2 DjHSP90 C-端多肽融合蛋白的纯化结果
3.8.3 DjHSP90抗血清特异性检测结果
3.8.4 日本三角涡虫DjHSP90在饥饿涡虫体内的表达模式
3.9 日本三角涡虫DjHSP70抗血清的制备及原位表达
3.9.1 DjHSP70表达载体的构建
3.9.2 DjHSP70原核表达诱导条件优化
3.9.3 DjHSP70抗血清特异性检测结果
3.9.4 日本三角涡虫DjHSP70在饥饿涡虫体内的表达模式
4 讨论
4.1 持久饥饿对日本三角涡虫组织结构、细胞形态的影响分析
4.2 持久饥饿对日本三角涡虫生化代谢的影响分析
4.3 持久饥饿诱导日本三角涡虫氧化和抗氧化性损伤的影响分析
4.4 持久饥饿对日本三角涡虫干细胞相关基因表达的影响分析
4.5 持久饥饿诱导日本三角涡虫热休克蛋白表达的生理意义
4.6 持久饥饿、氧化性损伤、细胞死亡和细胞应激反应之间的关系
5 结论
参考文献
致谢
攻读博士学位期间参加的科研项目和取得的研究成果清单
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