摘要
缩略语表
1 前言
1.1 白细胞介素1α(IL-1α)的性质与作用
1.1.1 IL-1α的分子结构
1.1.2 IL-1α的性质
1.1.3 IL-1α与疾病
1.2 重组蛋白的表达系统
1.2.1 原核表达系统
1.2.2 酵母表达系统
1.2.3 动物细胞表达系统
1.2.4 植物细胞表达系统
1.3 重组人白细胞介素1α(rhIL-1α)在毕赤酵母中的表达
1.3.1 毕赤酵母表达系统的优势
1.3.2 毕赤酵母表达菌株
1.3.3 毕赤酵母表达载体
1.3.4 毕赤酵母的转化
1.3.5 毕赤酵母工程菌株的筛选及鉴定
1.3.6 毕赤酵母工程菌的发酵
1.3.7 毕赤酵母工程菌的分离纯化
1.4 研究目的与意义
2 材料和方法
2.1 材料
2.1.1 实验材料
2.1.2 主要试剂
2.1.3 储存液
2.1.4 培养基
2.1.5 主要实验仪器
2.2 实验方法
2.2.1 rhIL-1α基因序列合成
2.2.2 重组表达质粒pPIC9K-rhIL-1α的构建
2.2.3 毕赤酵母感受态的制备
2.2.4 表达质粒的线性化
2.2.5 转化
2.2.6 筛选阳性克隆
2.2.7 rhIL-1α工程菌的表达
2.2.8 SDS-PAGE检测
2.2.9 rhIL-1α免疫印迹鉴定
2.2.10 rhIL-1α工程菌摇瓶条件下最佳表达条件的探究
2.2.11 rhIL-1α工程菌3L发酵罐中的最佳表达条件摸索
2.2.12 rhIL-1α工程菌10L条件下发酵罐的样品获取
2.2.13 rhIL-1α工程菌50L发酵罐中的样品获取
2.2.14 蛋白浓度测定
2.2.15 rhIL-1α分离纯化
2.2.16 MTT检测
3 实验结果
3.1 工程菌的构建
3.1.1 质粒的鉴定
3.1.2 阳性克隆的筛选
3.1.3 PCR鉴定
3.2 含rhIL-1α基因工程菌的诱导筛选
3.3 rhIL-1α工程菌的摇瓶发酵
3.3.1 最佳温度优化结果
3.3.2 最佳pH优化结果
3.3.3 最佳装液量优化结果
3.3.4 最佳甲醇浓度优化结果
3.3.5 温度、pH双因素优化结果
3.4 rhIL-1α工程菌3 L发酵罐的表达
3.4.1 最佳温度优化结果
3.4.2 最佳pH优化结果
3.4.3 最佳甲醇浓度优化结果
3.4.4 温度、pH双因素条件优化
3.5 rhIL-1α工程菌10L发酵罐的表达
3.6 rhIL-1α工程菌50L发酵罐的表达
3.7 分离纯化
3.7.1 双水相萃取条件的优化
3.7.2 超滤
3.7.3 DEAE离子交换层析
3.8 rhIL-1α对BEL-7402细胞的生物学作用
4 讨论
结论
参考文献
致谢
攻读硕士学位期间参加的科研项目及已发表的论文
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