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【6h】

人参皂苷Rg1调控Wnt/β-catenin信号通路延缓神经干细胞衰老的机制研究

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前言

第一部分:人参皂苷 Rg1对 D-半乳糖所致衰老小鼠海马的保护机制

1材料与方法

2结果

3讨论

参考文献

第二部分:人参皂苷Rg1调控神经干细胞Wnt/β-ca tenin信号通路延缓脑衰老作用机制的研究

1材料与方法

2结果

3讨论

参考文献

全文总结

文献综述:脑衰老特征及机制研究

1脑组织衰老

2 NSCs衰老

3 NSCs移植应用

参考文献

致谢

硕士期间发表的论文

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摘要

目的: 脑衰老已成为当今神经科学与衰老生物学领域的重点研究课题。研究证明,脑衰老将引起诸多中枢神经系统退行性疾病,如帕金森病、阿尔茨海默病等。人参是中医临床“补气要药”,其主要药效成分是人参皂苷,但其组分多达几十种。我们前期研究证明,人参皂苷 Rg1是人参中的抗衰老单体成分,它能有效拮抗致衰剂,延缓小鼠脑衰老,提高衰老小鼠学习记忆能力,并初步探讨了其延缓脑衰老与调控神经干细胞衰老(neural stem cells,NSCs)的关系,但Rg1调控NSCs衰老机制尚不清楚。最新研究证明,Wnt/β-catenin信号通路的过度激活与干细胞衰老密切相关,Rg1延缓NSCs衰老是否与调控该信号通路有关值得深入研究。 本研究中的巢蛋白-绿色荧光蛋白(Nestin-GFP)转基因小鼠衰老模型,是运用D-半乳糖(D-gal)来构建的,探讨人参皂苷Rg1保护或延缓小鼠海马衰老与调控NSCs衰老的关系,旨在阐释Rg1是否能通过抑制Wnt/β-catenin信号通路的过度激活调控NSCs衰老,研究将为寻找延缓脑衰老的新方法提供理论与实验依据。 方法: 1.衰老小鼠模型构建与给药处理:随机的将40只雄性Nestin-GFP转基因小鼠平均分为4组。衰老组:小鼠皮下注射 D-gal(200mg/kg qd×42d);Rg1衰老组:按衰老组方法注射D-gal,第16d起腹腔注射人参皂苷Rg1(40mg/kg qd×27d);Rg1对照组:小鼠皮下注射等量生理盐水(200mg/kg qd×42d),第16d起注射人参皂苷(剂量与时间同Rg1衰老组);对照组:小鼠注射等量与等时生理盐水。衰老模型建立与给药完成后第2d进行相关实验。 (1)各组小鼠动态情况观察; (2)Rg1对小鼠学习记忆能力的影响:建模完成第2d开始Morris水迷宫实验,检测小鼠的空间学习记忆能力; (3)Rg1对NSCs相对数量影响的影响:摘取鼠头,完整收取四组小鼠新鲜海马组织并做各组冷冻切片,分析各组海马区NSCs的荧光强度; (4)Rg1对NSCs衰老的影响:分析各组海马组织中衰老β-半乳糖苷酶(SA-β-Gal)染色NSCs的阳性百分率; (5)Rg1对海马组织氧化与抗氧化指标影响:制备海马组织匀浆,检测匀浆中SOD、T-AOC与MDA含量; (6)Rg1对海马组织炎症因子的影响:海马组织匀浆中 IL-1β、IL-6及TNF-α含量检测; (7)Rg1对海马组织衰老相关蛋白的影响:采用Western blotting实验方法检测海马组织的P53、P21蛋白表达量。 2.摘取Nestin-GFP转基因新生鼠全脑,提取NSCs,培养至P3代,检测以下指标: (1)NSCs培养鉴定:培养NSCs的Nestin自带绿色荧光,标记Sox2标记红色荧光。 (2)氯化锂对 NSCs增殖与存活率影响检测:在不同浓度(5mmol/l,10 mmol/l,20 mmol/l,40 mmol/l)的氯化锂培养基(Wnt/β-catenin信号激动剂)中分别培养第P3代NSCs,培养1d、2d、3d、4d、5d、6d、7d后,用CCK-8方法检测各组细胞增殖与存活率。 (3)人参皂苷Rg1对NSCs增殖与存活率影响检测:在不同浓度的人参皂苷 Rg1培养基(5μg/ml,10μg/ml,20μg/ml,40μg/ml)分别培养第P3代NSCs,培养1d、2d、3d、4d后,用CCK-8方法检测各组细胞OD值。 (4)人参皂苷Rg1与氯化锂(Wnt/β-catenin信号激动剂)对NSCs增殖与存活率影响:将培养第P3代NSCs随机平均分成四组。氯化锂组:第P3代NSCs在终浓度20 mmol/l的氯化锂培养基培养48h;Rg1+氯化锂组:第P3代NSCs在氯化锂培养基培养(剂量同氯化锂组)24h,加入人参皂苷 Rg1(终浓度20μg/ml)继续培养24h;Rg1组:第 P3代NSCs在常规培养基培养24h,再加人参皂苷Rg1(剂量同Rg1+氯化锂组)继续培养24h;对照组:第P3代NSCs在常规培养基中培养48h。检测以下指标: 1)光学显微镜观察各组NSCs生长情况; 2)流式检测各组细胞的细胞周期; 3)Brdu检测各组细胞增殖能力; 4)荧光显微镜观察各组NSCs的Nestin和Sox2荧光强度; 5)各组神经球SA-β-Gal染色分析衰老染色阳性率; 6)激光共聚焦观察各组NSCs的β-catenin定位; 7)Western Blotting检测各组 Wnt/β-catenin通路相关蛋白含量变化。 结果: 1.体内结果 1)衰老组小鼠毛色逐渐晦暗,精神萎靡且嗜睡,饮食减少,体质量增加缓慢,呈自然衰老体征。而对照组、Rg1组和Rg1衰老组小鼠无明显相关体征。 2)Morris水迷宫实验结果表明,衰老组小鼠空间学习记忆能力明显降低,而Rg1衰老组小鼠空间学习记忆能力显著改善; 3)免疫荧光观察结果显示,衰老组小鼠海马DG区Nestin-GFP绿色荧光强度明显降低,而Rg1衰老组小鼠海马DG区Nestin-GFP绿色荧光强度增加; 4)SA-β-Gal染色结果显示,衰老组小鼠海马CA3区Sa-β-gal染色阳性颗粒数明显增高,而 Rg1组和 Rg1衰老组小鼠海马 CA3区Sa-β-gal染色阳性颗粒数明显减少; 5)氧化与抗氧化能力检测显示,和正常对照组比较,衰老组小鼠海马组织匀浆的SOD活性及T-AOC降低,而MDA含量升高;而Rg1衰老组海马组织匀浆SOD及T-AOC活性较衰老组升高,MDA含量降低; 6)ELISA检测结果显示,衰老组小鼠海马匀浆中IL-1β、IL-6和TNF-α含量明显升高,而 Rg1衰老组小鼠海马区 IL-1β、IL-6以及TNF-α含量显著减少; 7)Western Blotting检测显示,衰老组小鼠海马区P53、P21蛋白含量明显升高,而Rg1衰老组小鼠海马区P53、P21蛋白含量明显减少。 2.体外结果 1)各组NSCs生长情况观察表明:氯化锂组神经球大小不一,数量减少,而Rg1+氯化锂组神经球大小规则,数量显著增多; 2)流式检测各组细胞周期表明:氯化锂组NSCs的S和G2期细胞百分率减少,G1期细胞百分率增多,Rg1+氯化锂NSCs的S和G2期细胞百分率较氯化锂组升高,G1期细胞百分率降低; 3)Brdu检测各组细胞增殖能力表明:氯化锂组NSCs的增殖能力降低,Rg1+氯化锂组NSCs的增殖能力增强; 4)荧光显微镜观察各组Nestin和Sox2荧光强度表明:各组NSCs的荧光强度无明显区别; 5)各组神经球Sa-β-gal衰老染色阳性率:氯化锂组神经球衰老染色阳性率升高,Rg1+氯化锂组神经干细胞球衰老染色阳性率降低; 6)各组 NSCs的β-catenin分布情况:氯化锂组 NSCs细胞质β-catenin较少且细胞数量少。Rg1+氯化锂组NSCs细胞质β-catenin较多且细胞数量较多; 7)Western Blotting检测各组细胞Wnt/β-catenin通路相关蛋白含量变化表明:氯化锂组Wnt/β-catenin通路激活相关蛋白含量升高,Rg1+氯化锂组Wnt/β-catenin通路激活相关蛋白含量降低。 结论: 1.D-gal可复制脑衰老模型,人参皂苷Rg1能拮抗D-Gal所致小鼠脑衰老,其可能机制与Rg1拮抗致衰剂对海马NSCs的氧化应激损伤,并调节下游P53-P21信号通路密切相关; 2.氯化锂可以激活NSCs的Wnt/β-catenin信号通路,人参皂苷Rg1能拮抗Wnt/β-catenin信号通路激活所导致的NSCs衰老从而延缓脑衰老。

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