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犬弓首蛔虫卵黄原蛋白基因的克隆、表达及组织分布研究

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目录

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第一章 文献综述

1.1 寄生虫与宿主的相互作用

1.2 卵黄原蛋白概述

1.3 线虫卵黄原蛋白研究进展

1.4 结语

第二章 引言

2.1 研究背景及意义

2.2 主要研究内容

2.3 试验技术路线

第三章 犬弓首蛔虫卵黄原蛋白基因的生物信息学分析

3.1 试验方法

3.2 结果

3.3 分析与讨论

第四章 Tc-vwd、Tc-duf1943结构域的克隆及功能分析

4.1 材料与方法

4.2 试验结果

4.3 分析与讨论

第五章 Tc-vwd、Tc-duf1943表达载体的构建及原核表达

5.1 材料与方法

5.2 试验结果

5.3 分析与讨论

第六章 TcvWD多克隆抗体的制备及Western blot检测

6.1 材料与方法

6.2 试验结果

6.3 分析和讨论

第七章 犬弓首蛔虫卵黄原蛋白的组织分布研究

7.1 材料与方法

7.2 试验结果

7.3 分析与讨论

第八章 全文总结

参考文献

附录

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致谢

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摘要

弓首蛔虫病(Toxocariasis)主要是由犬弓首蛔虫(Toxocara canis, T. canis)寄生于宿主小肠而引起的一类寄生虫病。该病具有世界性分布的特点,有数据显示,世界各地T. canis的感染率为0.9%~64.7%。其感染性虫卵不仅可以感染犬,还可以感染多种动物及人类,能引起眼睛幼虫移行症(Ocular larva migrans, OLM)、神经幼虫移行症(Nerve larvae migration, NLM)、隐秘幼虫移行症(Cryptic larval migration, CLM)和内脏幼虫移行症(Visceral larva migrans, VLM),导致严重的病理综合征。因此,该病在兽医公共卫生学上具有十分重要的意义。
  卵黄原蛋白(Vitellogenin, Vg)是脂质转运蛋白家族成员之一,通常是在卵生非哺乳动物的卵巢外组织中合成,经卵黄原蛋白受体(Vitellogenin receptor, VgR)介导的胞吞作用进入卵巢,分解为卵黄蛋白(Yolk protein, YP)、卵黄脂磷蛋白(Lipovitellin, Lv)、卵黄高磷蛋白(Phosvitin, Pv)等功能性物质。研究发现,Vg不仅为胚胎发育提供营养元素,还具有促进动物卵母细胞的生长和分化、粒子载体、生物标志物、抗氧化活性、免疫防御等多种生理功能。随着秀丽隐杆线虫(Caenorhabditis elegans)卵黄原蛋白基因的发现,陆续展开了对有齿食道口线虫(Oesophagostomum dentatum)、捻转血矛线虫(Haemonchus contortus)、毛圆线虫(Trichostrongylus vitrinus)等寄生虫卵黄原蛋白的相关研究,而有关犬弓首蛔虫Vg的研究还未见报道。
  本论文在实验室已有的T. canis转录组数据基础上,对犬弓首蛔虫卵黄原蛋白(T. canis-vg, Tc-vg)基因进行了克隆、原核表达和组织定位等相关研究。主要试验结果如下:
  1. Tc-vg基因的生物信息学分析
  运用分子生物学技术对Tc-vg基因进行了分析,结果显示该基因为一个完整的编码区序列(Coding sequence, CDS),大小为5082 bp,可编码1694个氨基酸;理论分子质量为198 kDa,等电点为6.19。信号肽在线预测显示其N端含有一个信号肽,裂解位点在18-19 aa处。由在线软件分析显示该蛋白在一级结构上以亲水性为主;含有三个功能结构域:Vitellogenin_N、DUF1943(domain of unknown function)以及vWD(von Willebrand factor type D domain)。二级结构中含有α-螺旋、β-折叠和无规则卷曲。在线分析TcVg磷酸化位点显示该蛋白中存在三种主要的磷酸化氨基酸,即磷酸化苏氨酸(pThr)、磷酸化酪氨酸(pTyr)和磷酸化丝氨酸(pSer)共44个,分别为7、19、18。亚细胞定位分析为分泌通路;功能预测显示参与脂质分子的转运过程。根据Blast比对发现Tc-vg与猪蛔虫(Ascaris suum)、美洲钩虫(Necator americanus)和小杆线虫(Caenorhabditis briggsae)的相似性高达100%;系统进化分析显示Tc-vg与A. suum(ERG83573)的亲缘关系最近;与N. americanus(XP_013298422)、线虫( Pristionchus pacificus, KKA71696)、十二指肠钩虫( Ancylostoma duodenale, KIH69020)、捻转血矛线虫( Haemonchus contortus, CDJ93502)、胎生网尾线虫(Dictyocaulus viviparus, KJH46366)等的亲缘关系次之。
  2. Tc-vwd与Tc-duf1943结构域的克隆
  运用PCR技术,克隆获得了Tc-vg基因的两个功能结构域( Tc-duf1943和Tc-vwd)。其中,Tc-vwd结构域长度为834 bp,ORF长度为816 bp,编码272 aa,预测蛋白分子量大小为31.15 kDa,等电点为5.12。犬弓首蛔虫vWD(T. canis-vWD, TcvWD)蛋白主要参与发病机理的生物学过程。Tc-duf1943结构域长度为882 bp, ORF大小为864 bp,编码288 aa,预测成熟蛋白分子量为33.25 kDa,等电点为9.57。犬弓首蛔虫DUF1943(T. canis-DUF1943, TcDUF1943)蛋白主要具有脂质定位和有机物质运输的生物学过程。
  3. Tc-vwd/pET28a与Tc-duf1943/pET28a表达载体的构建及原核表达
  按照 TaKaRa公司的质粒提取试剂盒的说明对 Tc-vwd/pMD19-T、Tc-duf1943/pMD19-T和pET28a等质粒进行提取,酶切之后目的基因与pET28a进行连接,转化E. coli DH5α细胞,平板培养过夜,挑取单个白色菌落培养,PCR、双酶切及测序鉴定,将测序正确的重组质粒Tc-vwd/pET28a与Tc-duf1943/pET28a转化E. coli BL21(DE3)表达菌,挑取单菌落培养,当OD600值达到0.6~1.0时,加入IPTG进行诱导表达,同时对菌液进行IPTG浓度梯度和时间梯度的优化,筛选最佳的诱导条件。结果显示重组蛋白TcvWD与TcDUF1943均以包涵体形式存在,其中TcvWD大小约为40 kDa,TcDUF1943大小约为35 kDa;TcvWD蛋白于37℃,0.4 mM的IPTG诱导6 h时表达量最高,TcDUF1943在37℃,0.4 mM的IPTG诱导4h时表达量最高。
  4. TcvWD多克隆抗体的制备及Western blot检测
  对Tc-vwd/pET28a/BL21进行大量表达,离心收集包涵体沉淀,8 M尿素溶解,纯化上清,将重组蛋白TcvWD免疫新西兰白兔,2-3周免疫一次,共免疫四次,当效价大于1:50000时进行最终采血制备抗血清,对所得抗体进行效价、浓度、纯度测定。结果显示TcvWD融合蛋白纯度较高,所得抗体效价为1:512000,浓度为0.82 mg/ml,纯度合格。Western blot显示TcvWD能够与免疫抗血清反应,而不与免疫前血清反应,即TcvWD具有良好的特异性,可用于免疫组化试验。
  5. Tc-vg特异性表达和TcVg免疫组织化学分析
  运用实时荧光定量PCR(quantitative real-time PCR, qRT-PCR)方法检测Tc-vg基因的组织差异表达情况。结果显示Tc-vg基因在犬弓首蛔虫雌、雄虫肠道、生殖道和体壁均有表达,其中肠道表达量最高,体壁、生殖道次之。利用免疫组织化学技术对TcVg的组织分布情况进行了检测,结果显示TcVg在雌虫、雄虫各组织中均有表达,其中在肠道中高量表达,在生殖道和体壁如肌肉细胞、子宫和输精管内有较弱表达。

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