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一种生物法合成生产长链十二碳二元酸的方法

摘要

本产品涉及一种新发现的菌株热带假丝酵母(Candida tropicalis)C1201,该菌株一方面能保持现有高水平发酵生产DC12的能力,又具有高度专一的α,ω‑氧化能力,使得产品一元酸的含量大大降低,本发明的DC12产品具有令人满意的晶体状形态,更容易满足欧洲无尘化、低粉尘产品出口要求。

著录项

  • 公开/公告号CN107177508A

    专利类型发明专利

  • 公开/公告日2017-09-19

    原文格式PDF

  • 申请/专利权人 张艾琳;

    申请/专利号CN201610139691.2

  • 发明设计人 陈远童;

    申请日2016-03-11

  • 分类号

  • 代理机构北京汇捷知识产权代理事务所(普通合伙);

  • 代理人李宏伟

  • 地址 100021 北京市朝阳区清林路1号世茂奥临

  • 入库时间 2023-06-19 03:19:06

法律信息

  • 法律状态公告日

    法律状态信息

    法律状态

  • 2020-05-19

    授权

    授权

  • 2018-04-27

    著录事项变更 IPC(主分类):C12N1/14 变更前: 变更后: 申请日:20160311

    著录事项变更

  • 2018-02-16

    实质审查的生效 IPC(主分类):C12N1/14 申请日:20160311

    实质审查的生效

  • 2017-09-19

    公开

    公开

说明书

技术领域

本发明涉及一种生物法合成生产长链十二碳二元酸的方法与菌株。

背景技术

长链二元酸是指碳原子数在十个以及以上的二元酸,一般指直链二元酸。十二碳二元酸(DC12)是合成高性能尼龙工程塑料尼龙1212和服装用高档尼龙热熔胶和高级涂料的重要原料。

DC12可以通过微生物发酵或化学合成两种方法制备生产。传统的生产长链二酸的化学方法需要9个复杂的反应步骤,高温、高压和催化剂;生产时需要防火、防爆和防毒装置,收率低、成本高和环境污染严重。而生物发酵法合成工艺简单,常温常压下就能生产,无污染、收率高,具备成本优势。

然而,生物法合成十二碳二元酸的现有方法中,依然存在发酵水平不高,产品纯度达不到制备长链二元酸酯的要求,特别是二元酸产品中由于发酵菌株α,ω-氧化位点的不同,会产生一定含量的一元酸杂质,由于一元酸和二元酸不容易分离,这给后面合成尼龙1212的工艺带来巨大不便。

发明内容

令人意外地,本发明的发明人通过长期生产实践过程中,意外地在发酵后废液(即含有废弃的生产菌株的发酵液中)筛选出一株热带 假丝酵母(Candida tropicalis)C1201(保藏号CCTCC NO.M2014545,保藏日期为2014年11月4日,保藏地点为武汉大学,中国典型培养物保藏中心,分类命名Candida tropicalis C1201),其一方面能保持现有高水平发酵生产DC12的能力或略有提高,又具有高度专一的α,ω-氧化能力,使得产品一元酸的含量大大降低,即热带假丝酵母(Candida tropicalis)C1201为具有单一产品二元酸的高产菌株。此外,该菌株发酵获得产品二元酸,具有更大晶形,使得产品更容易达到后续工艺无尘化和低尘化要求,更加符合欧美市场特别是欧盟市场对无尘化产品的要求

热带假丝酵母(Candida tropicalis)C1201的生理特征如下:

一、糖类的发酵:葡萄糖+,半乳糖+,蔗糖+,麦芽糖+,乳糖-。

二、同化:葡萄糖+,半乳糖+,山梨糖-,蔗糖+,麦芽糖+,纤维二糖+,海藻糖+,乳糖-,密二糖-,棉子糖-,松二糖+,菊芋糖-,可溶性淀粉+,木糖+,L-阿戊糖+,D-阿戊糖-,核糖-,鼠李糖-,α-甲基葡萄糖苷+,甘油+,乙醇+,赤鲜醇-,甘露醇+,肌醇-,核糠醇+,半乳糖醇-,葡萄糖醇+,柠檬酸钠-,丁二酸钠+,乳酸钙-。

三、生长素的需要:生物素++,维生素B1++,维生素B2+,维生素B6+,维生素B12+,叶酸+,烟酸+,泛酸+,肌醇+,对氨基苯甲酸+。四、其它:硝酸盐-,冻化牛奶-,熊果酸分解-,凝固牛奶-,油脂酶-。

形态特征:奶油白色,皱褶型,菌落为蛋糕状和桃酥状。

培养特征:在麦芽汁液体培养基中培养时,假菌丝多而长;在烷烃种子培养基培养时,有一定数量的短假菌丝;而在发酵培养基中发酵时,大部分是单个椭圆细胞。

发明所述的发酵转化正十二烷(nC12)生产十二碳二元酸(DC12)的方法是以热带假丝酵母(Candida tropicalis)C1201为发酵菌种,在以正十二烷为基质的培养基混合液中同步发酵,生产α, ω-十二碳二元酸。

发明所述的发酵转化正十二烷(nC12)生产十二碳二元酸(DC12)的方法的步骤为:

第一阶段为生产热带假丝酵母(Candida tropicalis)C1201的种子培养,即

优选地,把用一株热带假丝酵母C1201(Candida tropicalis)培养成的种母液接入pH值为5.5~9.0含有5~40%(v/v)12个碳原子的正烷烃和95~60%(v/v)发酵培养基的混合液中。

优选地,本发明的种子培养基:

(1)10巴林糖度的麦芽汁加2%琼脂制成的固体斜面;

(2)10巴林糖度的麦芽汁液体培养基;

(3)烷烃种子培养基包含:KH2PO4>

优选地,培养种子的过程为:取一接种环热带假丝酵母(Candida tropicalis)C1201酵母菌体,涂布在麦芽汁固体斜面上(试管,每支装6~7mL培养基,灭菌后放成斜面),于29~30℃培养40小时。取1~2支上述培养好的菌种全部刮入装有30mL烷烃种子培养基的250mL三角瓶中,于29~30℃220转/分的旋转摇床上培养40~48小时,作为摇瓶发酵种子或取两支上述培养好的斜面菌种全部刮入装有500mL培养基的5000mL三角瓶中,于200转/分的旋转摇床29~30℃培养44~48小时,菌株生长OD值达到0.6~0.85时,作为发酵液的种子。

应当明确,以上种子培养基及培养方法仅为优选方法,在本发明说明书给出了该菌株的培养特征、营养特征的前提下,可以对上述条件进行改变,只要使得菌株生长正常能够达到OD值达到0.6~0.85, 作为发酵液的种子即可。

优选地,用本发明的C1201菌株生产长链二元酸,特别是十二碳二元酸的第二阶段是:

优选地,把培养好的经过镜检,没有杂菌的发酵液种子接入pH值为5.5~9.0含有5~40%(v/v)12个碳原子的正烷烃和95~60%(v/v)发酵培养基的混合液中。

更优选地,把培养好的经过镜检,没有杂菌的发酵液种子接入pH6.0~6.8的含有15~30%(v/v)的C12的正烷烃和85~70%(v/v)发酵培养基的混合液中。

优选地,发酵培养基的组成为:碱金属磷酸盐4~15g/L,最好为6~10g/L,氯化钠0.5~2.5g/L,最好为1.0~2.0g/L,消泡剂400~1200ppm,重蜡或蔗糖15~30g/L及一些其他公知的营养源。

应当明确,以上种子培养基及培养方法仅为优选方法,在本发明说明书给出了该菌株的培养特征、营养特征的前提下,可以根据菌体在不同培养罐中的环境对上述条件进行改变。

优选地,所述热带假丝酵母C1201(Candida tropicalis)的发酵培养阶段为:将所述混合液在24~34℃下转化48~168小时,然后将生产的十二碳二元酸进行分离纯化。

更优选地,所述热带假丝酵母C1201(Candida tropicalis)的发酵培养阶段为:在pH6.0~7.5下将上述混合物在25~34℃,最优选地在27~31℃通气发酵72~168小时。

优选地,发酵阶段的第一阶段中,体系pH控制在6.0~6.8,以菌体生长为主,同时生产一定数量的二元酸;第二阶段,体系pH控制7.0~8.0之间,以发酵产酸为主,也生长部分菌体;第三阶段,只产酸,不长菌体。更优选地,从72小时开始,每天补加一定量正烷烃,使发酵液中正烷烃浓度始终>5%(v/v),碱金属磷酸盐可从 KH2PO4或NaH2PO4中选一种。

优选地,本发明还包括将发酵液中产物十二碳二元酸分离回收阶段:

即发酵结束后,将发酵液加热加碱破乳,加热至80-90℃,加碱至pH10左右,压入静置分层罐分层。优选地,本发明还包括将残余正烷烃回收再用的步骤,即膜分离除去菌体,清液放置,冷却至20℃,收集DC12钠盐的晶体,母液直接酸化结晶,收集DC12钠盐和DC12,用水或有机溶剂进行重结晶,得到DC12白色结晶。

用本发明的热带假丝酵母C1201菌株和发酵方法,可在50m3发酵罐,从nC12发酵生产DC12时,发酵163小时,产酸量达220g/L以上,转化率达到90%以上,DC12纯度达到98%以上,其中一元酸的含量小于0.01%。此外,令人意外地,如说明书附图图1所示,本发明的DC12产品具有令人满意的晶体状形态,这对欧洲无尘化、低粉尘产品进口要求而言更具有竞争力。

附图说明

图1a为本发明方法实施例1制备的十二碳二元酸晶体;

图1b为对比例1方法制备的十二碳二元酸粉末产品。

具体实施方式

实施例1:

(1)、取一接种环热带假丝酵母C1201菌体,涂布在15×180大试管麦芽汁固体斜面上,在28℃培养2天。

(2)、取上述菌种一支,接入装有30ml液体种子培养基的250ml三角瓶中于28-30℃在220转/分的旋转摇床上培养40小时。液体种子培养基中含有KH2PO4>

(3)、在装有15ml发酵培养基的500ml三角瓶中,接入3.5ml上述培养好的种子液,于28-30℃,220转/分旋转摇床上发酵4天,每24小时用6N NaOH调一次PH至7.5-8.0。发酵培养基混合液中含KH2PO4>

发酵结束后,用6N的HCl调节PH至2-3,用120ml乙醚抽提后,蒸去乙醚,得到DC12白色结晶,用15ml中性乙醇溶解后,用标准NaOH溶液滴定,计算出发酵液中DC12含量为89.8g/l,纯度99.43%,其中一元酸含量0.009%。

实施例2:

(1)种子培养基及培养方法和发酵培养基同实例1。

(2)把3000mL培养两天,OD(×30,620nm)为0.81pH 3.8,健壮,无杂菌种液接入装有700L种子培养基,经121℃灭菌40分钟的一级种子罐中,29℃350转/分,罐压0.8kg/cm2,通气量1∶0.8,培养36小时,作为二级种母的种子。

(3)把(2)中培养的健壮,无杂菌的700L种液接入装有6.5m3种子培养基,经过121℃灭菌40分钟的10m3二级种母罐中,30℃,200转/分,罐压1kg/cm2,通气量1∶0.7,培养40~48小时,作为发酵的种子。

(4)把(3)中培养的健壮、无杂菌的种液,接入装有33m3发酵培养基,经121℃灭菌40分钟的50m3发酵罐中,30℃,200转/分,罐压1kg/cm2,通气量1∶0.5,开始时,nC12>3,30小时内,体系pH控制在7.0以下,菌体迅速生长,同时产生28.5g/L>12,然后体系pH在7.0~8.0,继续发酵,到67小时,产酸量达到120g/L,70小时后每天补加一定量nC12,使发酵液中正烷烃浓度始终>5%(v/v)。发>

发酵结束后,进行破乳分层,回收上层残余nC12,下层菌体层通过压滤,除去菌体,合并清液,加入0.6~0.7%活性炭90℃脱色20分钟,压滤除去活性炭,脱色清液加热后加入浓H2SO4至pH3,冷却至室温,压滤,空气吹干,固形物经烘干机烘干,得白色结晶状DC12产品。nC12转化率为92.8%,后处理总收率达到90.5%,DC12纯度达到99.35%,其中一元酸的含量0.008%。

实施例3:

(1)种子培养基及培养方法及发酵培养基、发酵方法同实例2。

(2)把3000mL培养两天,OD(×30,620nm)为0.81pH 3.8,健壮,无杂菌种液接入装有2个700L种子培养基,经121℃灭菌40分钟的一级种子罐中,29℃350转/分,罐压0.8kg/cm2,通气量1∶0.8,培养36小时,合并作为二级种母的种子。

(3)把(2)中培养的健壮,无杂菌的2个700L种液分别接入2个装有26.5m3种子培养基,经过121℃灭菌40分钟的10m3二级种母罐中,30℃,200转/分,罐压1kg/cm2,通气量1∶0.7,培养40~48小时,合并作为发酵的种子。

(4)把(3)中培养的健壮、无杂菌的种液,接入装有66m3发酵培养基,经121℃灭菌40分钟的100m3发酵罐中,30℃,200转/分,罐压1kg/cm2,通气量1∶0.5,开始时,nC12>3,30小时内,体系pH控制在7.0以下,菌体迅速生长,同时产生32g/L>12,然后体系pH在7.0~8.0,继续发酵,到67小时,产酸量达到125g/L,70小时后每天补加一定量nC12,使发酵液中正烷烃浓度始终>5%(v/v)。发酵140小时,产酸量达215g/L,发酵到163小时结束,产酸量达213g/L。

发酵结束后,进行破乳分层,回收上层残余nC12,下层菌体层通过压滤,除去菌体,合并清液,加入0.6~0.7%活性炭90℃脱色20分钟,压滤除去活性炭,脱色清液加热后加入浓H2SO4至pH3,冷却至室温,压滤,空气吹干,固形物经烘干机烘干,得白色结晶状DC12产品。nC12转化率为90.8%,后处理总收率达到91.6%,DC12纯度达到99.45%,其中一元酸的含量0.009%。

对比例1:

该对比例使用中国科学院微生物所许可专利菌株热带假丝酵母UH-2-48,保藏号为CGMCC NO.0239菌株(参见专利ZL 95117436.3),其他方法同实施例1即:

(1)、取一接种环热带假丝酵母UH-2-48菌体,涂布在15×180大试管麦芽汁固体斜面上,在28℃培养2天。

(2)、取上述菌种一支,接入装有30ml液体种子培养基的250ml三角瓶中于28-30℃在220转/分的旋转摇床上培养40小时。液体种子培养基中含有KH2PO4>

(3)、在装有15ml发酵培养基的500ml三角瓶中,接入3.5ml上述培养好的种子液,于28-30℃,220转/分旋转摇床上发酵4天,每24小时用6N NaOH调一次PH至7.5-8.0。发酵培养基混合液中含KH2PO4>

发酵结束后,用6N的HCl调节PH至2-3,用120ml乙醚抽提后,蒸去乙醚,得到DC12白色粉末,用15ml中型乙醇溶解后,用标准NaOH溶液滴定,计算出发酵液中DC12含量为62.7g/l,纯度97.23%,其中一元酸的含量为大于1.2%。

此外,通过附图1的比较,本发明的实施例1获得产品晶体更大,而对比例1获得产品基本为粉末状。

对比例2:

该对比例使用微生物所许可专利菌株热带假丝酵母UH-2-48,保藏号为CGMCC NO.0239菌株(参见专利ZL 95117436.3),其他方法同实施例2即:

(1)种子培养基及培养方法及发酵培养基、发酵方法同实例2。

(2)把3000mL培养两天,OD(×30,620nm)为0.81pH 3.8,健壮,热带假丝酵母UH-2-48无杂菌种液接入装有700L种子培养基,经121℃灭菌40分钟的一级种子罐中,29℃350转/分,罐压0.8kg/cm2,通气量1∶0.8,培养36小时,作为二级种母的种子。

(3)把(2)中培养的健壮,无杂菌的700L种液接入装有6.5m3种子培养基,经过121℃灭菌40分钟的10m3二级种母罐中,30℃,200转/分,罐压1kg/cm2,通气量1∶0.7,培养40~48小时,作为发酵的种子。

(4)把(3)中培养的健壮、无杂菌的无杂菌种液种液,接入装有33m3发酵培养基,经121℃灭菌40分钟的50m3发酵罐中,30℃,200转/分,罐压1kg/cm2,通气量1∶0.5,开始时,nC12>3,30小时内,体系pH控制在7.0以下,菌体迅速生长,同时产生20.1g/L>12,然后体系pH在7.0~8.0,继续发酵,到67小时,产酸量达到108g/L,70小时后每天补加一定量nC12,使发酵液中正烷烃浓度始终>5%(v/v)。发酵139小时,产酸量达133g/L,发酵到163小时结束,产酸量达143g/L。

发酵结束后,进行破乳分层,回收上层残余nC12,下层菌体层通过压滤,除去菌体,合并清液,加入0.6~0.7%活性炭90℃脱色20>2SO4至pH>12产品。nC12转化率为88.8%,后处理总收率达到85%,DC12纯度达到96.35%,其中一元酸的含量大于1.5%。

以上实施例仅用以说明本发明专利的技术方案而非限制,尽管参照较佳实施例对本发明专利进行了详细说明,本领域的普通技术人员应当理解,可以对本发明专利的技术方案进行修改或者等同替换,而不脱离本技术方案的宗旨和范围,其均应涵盖在本发明专利的权利要求范围当中。

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