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鸡PTHLH基因5′调控区两个突变位点的分子标记方法及其在鸡育种中的应用

摘要

本发明涉及一种鸡PTHLH基因5′调控区突变位点的分子标记方法及其在育种中的应用,鸡PTHLH 5′调控区存在2个突变位点,即‑1827(A>G)和‑165(C>T)位点,并用SHEsis在线软件进行了连锁不平衡分析,结果发现隐性白洛克鸡中这两个位点呈现完全连锁状态。两个位点均与开产日龄及32周产蛋数相关,AC/GT基因型的开产日期极显著早于GT/GT和AC/AC基因型,同时32周产蛋数也极显著多于另外两种基因型。本发明方法简便快捷,并且有助于选育开产早、产蛋数多的鸡品种,为标记辅助育种工作提供有利的帮助。

著录项

  • 公开/公告号CN106048043A

    专利类型发明专利

  • 公开/公告日2016-10-26

    原文格式PDF

  • 申请/专利权人 山东农业大学;

    申请/专利号CN201610544176.2

  • 申请日2016-07-11

  • 分类号C12Q1/68(20060101);A01K67/02(20060101);

  • 代理机构

  • 代理人

  • 地址 271018 山东省泰安市岱宗大街61号

  • 入库时间 2023-06-19 00:43:59

法律信息

  • 法律状态公告日

    法律状态信息

    法律状态

  • 2019-09-27

    授权

    授权

  • 2016-11-23

    实质审查的生效 IPC(主分类):C12Q1/68 申请日:20160711

    实质审查的生效

  • 2016-10-26

    公开

    公开

说明书

技术领域

本发明涉及分子遗传学领域,具体涉及了一种鸡PTHLH基因5′调控区的两个突变位点的分子标记方法及其育种中的应用。

背景技术

甲状旁腺激素样激素(Parathyroid hormone-like hormone,PTHLH)也叫甲状旁腺相关蛋白(Parathyroid hormone-related hormone,PTHrP),首次发现于20世纪80年代,被认为是引起恶性肿瘤伴发的体液高钙血症的主要原因(Moseley et al,1987)。PTHLH广泛分布于骨骼、胰腺、乳腺、肾脏、胃、子宫等多种胎儿及成年组织中,通过旁分泌、自分泌、细胞内分泌等形式起作用,生物学功能涉及钙转运(Weir et al,1996;Miao et al,2004;Martin et al,2005)、骨形成(Cuthbertson et al,1999;Zhao et al,2002;Pinheiro etal,2010;Klopocki et al,2010)、平滑肌收缩及妊娠的维持(Thiede et al,1990;Fegusonet al,1994;Guo et al,2012;Erbach et al,2013)、细胞生长与分化的调控(Vasavada etal,1996;Wojcik et al,1998;Aya et al,1999)等多个方面。

分子标记辅助选择育种,是在分子水平上对目标性状进行选择,可以不受环境影响,通过遗传背景选择,减少连锁累赘,从而加速育种过程及精准度。基因表达是生命过程中的细胞把储存在DNA序列上的遗传信息经过转录和翻译,转变成蛋白质的过程。其中,转录受5′调控区序列的调控,其碱基突变通常会影响转录的起始,从而影响基因的表达。因此,研究鸡PTHLH的5′调控区的SNPs,有助于找到有意义的分子标记,为鸡的标记辅助选择育种提供有利的理论依据。

发明内容

根据现有技术,具体涉及了一种鸡PTHLH基因5′调控区突变位点的分子标记方法及其在育种中的应用。发明人发现鸡PTHLH 5′调控区存在2个突变位点,即-1827(A>G)和-165(C>T)位点,并用SHEsis在线软件进行了连锁不平衡分析,结果发现这两个位点在隐性白洛克鸡中呈现完全连锁状态。因此对其进行单个位点标记分析,结果发现两个位点均与开产日龄及32周产蛋数相关,AC/GT基因型的开产日龄极显著早于GT/GT和AC/AC基因型,同时32周产蛋数也极显著多于另外两种基因型。可见检测这两个与产蛋性状相关联的分子标记,不仅方法简便快速,并且有助于选育高产蛋的鸡种,为育种工作提供有利的帮助。

本发明的具体标记方法是:

采用标记引物P-PTHLH,包括

P-PTHLH-F,其序列如Seq ID No:1所示;

P-PTHLH-R,其序列如Seq ID No:2所示;

扩增鸡育种材料的基因组DNA,PCR扩增产物琼脂糖凝胶电泳并回收,经测序得到的序列如Seq ID No:3所示,结果检测到存在2个突变位点,即-1827(A>G)和-165(C>T)位点。

在开产晚的群体中,选择AC/AC纯合基因型和GT/GT纯合基因型的公母鸡通过相互交配得到AC/GT杂合基因型,由这样个体组成的群体具有开产早、产蛋数多的特点。

通过这种标记方法得到的AC/GT基因型种鸡能兼顾开产日龄和产蛋数,在产蛋性能低的地方品种中有意增加AC/GT基因型的频率对提高产蛋量是一个有效措施,而对于开产较晚的群体,这样的措施会使其开产提前,从而实现早期选种。

(四)附图说明

图1为P-PTHLH-F/R引物PCR扩增的片段电泳图,

图2为鸡PTHLH 5′调控区-1827(A>G)(正向)、-165(C>T)(反向)位点的多态性测序图;

图3为隐性白洛克鸡中2个多态位点的连锁不平衡关系图;

图4为构建点突变pGL3-载体后序列比对结果;

图5为wt-PTHLH和mut-PTHLH两种基因型及FSH处理后双荧光素酶报告基因启动活性检测示意图;

(五)具体实施方式

实施例1鸡PTHLH 5′调控区序列比对及多态性位点分析

1.试验材料

48只隐性白洛克鸡(山东纪华家禽育种有限公司),随机采样,翅静脉采血,提取基因组后,-20℃保存。

2.试验方法

2.1引物设计

根据已发表红色原鸡序列(GenBank Accession NC_006088.4)设计引物P-PTHLH(其序列详见表1和Seq ID No:1/Seq ID No:2),此引物是为研究鸡PTHLH 5′调控区的突变而根据数据库中登录的红色原鸡的序列特意设计的。

2.2PCR扩增

随机选取48只隐性白洛克鸡基因组,用引物P-PTHLH进行PCR扩增。引物见表1,反应体系20μL,其中包括1μL基因组DNA(50-100ng),10Μl2×PrimeSTAR GC Buffer,1.6μLdNTPs(2.5mM each,TaKaRa),上下游引物各0.5μL(10μM),0.1μLPrimeSTAR HSDNApolymerase(5U/μL,TaKaRa),ddH2O补足至20μL。扩增程序:94℃预变性5min;98℃变性10sec,60℃退火15sec,72℃延伸2min,进行35个循环;循环结束72℃孵育5min。

将48只个体的PCR扩增产物随机混合分为6组,每组8个个体,进行琼脂糖凝胶电泳,用琼脂糖凝胶回收试剂盒(AxyPrep DNA Gel Extraction Kit,AXYGEN)进行回收,送济南铂尚生物技术公司测序。

表1引物的序列、位置和退火温度

3.结果与分析

PCR产物电泳见附图1,目的片段2144bp。

使用DNAMAN version 7.0比对序列同源性和完成突变核苷酸的检索,用ChromasPro软件对测序结果分析,发现扩增的隐性白洛克鸡PTHLH5′调控区-1827(A>G)和-165(C>T)位点存在SNP(见附图2)。

实施例2鸡PTHLH5′调控区多态性与开产日龄和产蛋量的关联分析

1试验材料

随机选取50只济宁百日鸡(济宁大唐百日鸡保种场)、50只新杨褐鸡(上海家禽育种有限公司)、50只汶上芦花鸡(山东省济宁市汶上县)、45只海兰褐鸡(山东泰安海兰褐育种公司)和有产蛋记录的隐性白洛克鸡550只(山东纪华家禽育种有限公司)。以上均为随机采样,翅静脉采血,提取基因组后,-20℃保存。

2试验方法

2.1PCR扩增

以基因组为模版,进行PCR扩增。引物见表1,反应体系40μL,其中包括2μL基因组DNA(50-100ng),20μL2×PrimeSTARGCBuffer,3.2μL dNTPs(2.5mM each,TaKaRa),上下游引物各1μL(10μM),0.4μLPrimeSTAR HSDNA polymerase(5U/μL,TaKaRa),ddH2O补足至40μL。扩增程序:94℃预变性5min;98℃变性10sec,60℃退火15sec,72℃延伸2min,进行35个循环;循环结束72℃孵育5min。

PCR扩增产物进行1%琼脂糖凝胶电泳,用琼脂糖凝胶回收试剂盒(AxyPrep DNAGel Extraction Kit,AXYGEN)进行回收,送济南铂尚生物技术公司测序。

2.2单倍型构建及关联分析

利用DNAMAN version 7.0和ChromasPro对突变位点进行统计分析,R软件统计基因型和基因型频率,SHEsis软件构建单倍型。

数据统计采用SAS8.1统计软件包的GLM程序进行基因型与性状(产蛋数、开产日龄)的关联分析。不同基因型间的比较分析用最小二乘法,试验数据用最小二乘均值±标准误表示(LSM±SE),显著水平设定P<0.05。

3结果与分析

3.1PTHLH 5′调控区2个突变位点在不同品种中基因型和等位基因频率的分布

用SHEsis在线软件分析PTHLH 5′调控区2个突变位点在隐性白洛克鸡中的连锁不平衡关系,结果表明:两个呈现完全连锁状态(附图3)。统计了白洛克、文昌鸡、济宁百日鸡和汶上芦花鸡品种的基因型和等位基因频率。分析结果见表2。

由表2到表3可知,隐性白洛克550个个体中,-1827(A>G)、-165(C>T)位点的优势等位基因分别为A、C;野生纯合基因型和杂合基因型的频率均高于突变纯合基因型。不同品种中基因型频率及等位基因频率存在差异。

表2-1827多态位点的基因型和等位基因频率在不同品种中的分布

表3-165多态位点的基因型和等位基因频率在不同品种中的分布

3.2PTHLH 5′调控区-1827(A>G)、-165(C>T)位点多态性分析及其与生产性能的关联分析

3.2.1隐性白洛克中PTHLH 5′调控区-1827(A>G)、-165(C>T)位点多态性与生产性能的关联分析

在550只隐性白洛克群体,分析PTHLH 5′调控区-1827、-165位点对开产日龄(AFE)、32周产蛋数(E32)及48周产蛋数(E48)的效应,结果48周产蛋数未达到显著水平(P>0.05),但是开产日龄与32周产蛋数均达到P<0.01的统计极显著水平,分别为AG型和CT型的个体开产较早。表明两个突变位点杂合基因型均与开产早、32周产蛋高的性状有关联。

表4白洛克中不同基因型与开产日龄及产蛋数的关联分析

注:表中数值为AFE(开产日龄)和E32(32周产蛋量)的最小二乘均值±标准误,不含相同字母最小二乘均值间差异极显著(P<0.01)。

3.3PTHLH 5′调控区-1827和-165位点单倍型分析及其与生产性能的关联分析

3.3.1PTHLH 5′调控区单倍型在不同品种中的分布

用PHASE软件对鸡PTHLH基因5′调控区-1827和-165突变位点构建单倍型,只有三种单倍型:GT、GC和AC。由表5看出,鸡PTHLH基因5′调控区-1827和-165突变位点构建的单倍型,其频率在5个品种中存在差别,隐性白洛克鸡、汶上芦花鸡均以AC单倍型占优势,海兰褐、新杨褐和济宁白日鸡以GT单倍型占优势。

表5PTHLH 5′调控区单倍型在不同品种中的分布

3.3.2白洛克中PTHLH 5′调控区双倍型与开产日龄(AFE)、产蛋数(E32)的关联分析

统计了550个有生产记录的白洛克个体,对-1827和-165两位点基因型构建双倍型进行联合分析,结果(表6)显示基因型与开产日龄(P=0.0008)及32周产蛋数(P=0.0002)关系达到了极显著水平,AC/GT对应较小的开产日龄(176.46d)及较多的32周产蛋数(35.8个),GT/GT和AC/AC对应较大的开产日龄(约179d)及较少的32周产蛋数(33个)。

表6双倍型与开产日龄及产蛋数的最小二乘均值及标准误

注:表中数值为AFE(开产日龄)和E32(32W产蛋量)的最小二乘均值±标准误,不含相同字母最小二乘均值间差异极显著(P<0.01)。

实施例3鸡PTHLH 5′调控区多态位点对基因表达的影响

1试验材料

随机采样泰安市临溪村养殖场的高峰产蛋期的健康海兰褐鸡(3-5只),

2试验方法

2.1PTHLH 5′调控区多态位点突变型荧光素酶表达载体的构建

1)在隐性白洛克群体中选PTHLH 5′调控区-1827和-165位点分别为野生型和突变型的个体两只,以其DNA为模板来获得wt-PTHLH和mut-PTHLH序列,扩增片段长度为2144bp,引物序列同Seq ID No.1和2。

2)PCR扩增

扩增反应采用高保真酶PrimeSTAR,反应体系(20ul)包括:2×PrimeSTARGCBuffer 10ul,1.6μL dNTPs(2.5mM each,TaKaRa),加NheI和KpnI酶切位点的上下游引物各0.5μL(10μM),2μLPrimeSTARHSpolymerase(5U/μL,TaKaRa),1μL基因组DNA,ddH2O补足至20μL。扩增程序:94℃预变性4min;98℃变性10sec,60℃退火15sec,72℃延伸2min,进行35个循环;循环结束72℃,孵育5min。

PCR扩增产物进行1%琼脂糖凝胶电泳,用琼脂糖凝胶回收试剂盒(AxyPrep DNAGel Extraction Kit,AXYGEN)进行回收,然后进行连接转化,提取质粒后,酶切验证,选择阳性克隆菌液送济南铂尚生物技术公司测序,分析突变位点是否分别是野生型和突变型。

3)去内毒素质粒的制备

用TIANGEN公司的EndoFree Maxi Plasmid Kit去内毒素质粒大提试剂盒,按照说明书进行操作。

将构建好的wt-PTHLH和mut-PTHLH载体质粒,重新转化感受态细胞,挑取单克隆菌落,进行摇菌,用TIANGEN公司的去内毒素质粒大提试剂盒提取双荧光素酶表达载体质粒,用于原代细胞的转染。

2.2鸡卵泡膜细胞的分离培养

1)高峰期产蛋海兰褐母鸡,手术刀划开颈脉,放血处死后用灭菌剪刀刨开腹腔,剪下整个卵巢(注意不要将卵泡弄破),然后迅速投放至盛有3%双抗的磷酸缓冲液的烧杯中,封上锡箔纸后,带入无菌间进行分离操作。

2)分离方法依据Gilbert(1997)及康丽(2009)等的文献进行。

在超净台上,将各级卵泡分为等级前卵泡(<12mm)和等级卵泡(>12mm),用眼科剪刀从卵泡蒂处剪开取下,放至盛有3%双抗的磷酸缓冲溶液的灭菌的平皿中,左手用眼科镊子夹住卵泡蒂处,右手用眼科镊子顺着卵泡将膜细胞层剥离下来,放入磷酸缓冲溶液中,并冲洗两三次,以尽量洗去膜层上残留的血管,从而分离到纯度较高的膜细胞。

3)分离完成后,在灭菌的小烧杯中用眼科剪刀将膜细胞层充分剪碎,之后加入适量已预热的0.1%II型胶原酶,放入38℃、5%CO2培养箱中消化25min,每5min晃动一次烧杯以充分消化组织,消化后加入含有血清的M199培养基以终止消化。

4)在超净台上用200目铜网将消化完毕的细胞混合液,过滤至100mL灭菌的烧杯中,然后分装到15mL离心管中,4000rpm离心8min,收集细胞沉淀,弃去滤液;每管再加适量M199培养基轻轻吹打,重悬细胞沉淀,离心弃滤液,共三次。

5)离心洗涤完后,吹匀细胞,取少量细胞悬液放入等体积的0.1%台盼蓝,用血球计数板进行计数,计算细胞存活率应在90%以上;按所需的细胞量接种在12孔培养板,每孔细胞数1~2×106为宜,38.5℃静置培养,CO2浓度为5%。

6)接种的细胞在12小时后进行部分换液,24小时后可进行全部换液。当细胞培养至80%以上汇合率时,方可进行转染实验。

2.3质粒DNA转染实验

1)转染前两小时换液,更换新鲜的完全培养基。

2)制备Nanofection/DNA混合液(12孔板)a.每孔1μgDNA质粒+100uL无血清高糖DMEM与1.5mL离心管中,轻轻混匀;b.按照每孔2μLNanofection加入量,轻轻蜗旋(移液枪轻轻吹打5~10s);c.室温孵育15min,使形成Nanofection/DNA复合体。

3)每孔加入100uLNanofection/DNA复合体,轻晃培养板使其均匀分布。

4)38.5℃5%CO2培养箱内静置培养,24小时后换液,实验组用10ng/ml>

5)阴性对照pGL3-Basic载体以相同的条件作为对照组共转染培养的细胞。相同的转染共做2次,膜细胞来自于不同的鸡个体,即做了两个独立的转染实验。

2.4双荧光素酶活性测定

用Promega公司的Dual-Luciferase Reporter Assay System双荧光素酶报告基因检测试剂盒,来检测报告基因的表达水平,严格按照说明书进行如下操作:

1)细胞的裂解:用PBS缓冲液洗涤细胞2~3次,加入100μl 1×PLB细胞裂解液,充分混匀,于37℃摇床15min以保证PLB裂解液充分将细胞裂解;

2)充分裂解后,10,000~15,000×g离心3~5min,取20μl上清用于测定;

3)融解萤火虫荧光素酶和Renilla荧光素酶检测试剂,并达到室温。按照每个样品需100μl的量加入LARII试剂,反复吸打2~3次混匀。开启荧光测定仪,开始读数,记录下萤火虫荧光素酶的活性值M1。

4)然后加入100μl的Stop&Glo Reagent,将样品管重新放入luminometer中,开始读数。记录下Renilla荧光素酶值M2。

5)在内参为Renilla荧光素酶的情况下,用测定得到的萤火虫荧光素酶RLU值除以测定得到的Renilla荧光素酶RLU值。根据所得的M1/M2值即为报告基因的相对表达水平。

2.5统计分析

数据统计采用t检验,进行两两比较,数据用平均数±标准误表示,P<0.05为差异显著,P<0.01为差异极显著。

3结果与分析

3.1多态位点突变测序

点突变过程的PCR扩增使用高保真酶,有力的保证了不同等位基因间除突变位点外其他序列的一致性,突变结果如图4。

3.2野生型和突变型报告基因的启动活性

双荧光素酶报告基因检测结果如图5和表7所示,FSH能显著提高wt-PTHLH(AC/AC)野生型和mut-PTHLH(GT/GT)突变型的启动效率(P<0.05),mut-PTHLH(GT/GT)突变型的启动效率极显著高于wt-PTHLH(AC/AC)野生型(P<0.0001),且mut-PTHLH(GT/GT)突变型对FSH的应答也极显著高于wt-PTHLH(AC/AC)野生型(P<0.0001)。

表7PTHLH5`调控区不同基因型对PTHLH基因启动活性的影响

综合以上结果:

通过以上5个鸡品种比较,表明PTHLH基因在-1827和-165位点存在碱基突变,且在不同品种中存在不同的连锁不平衡关系,其中,隐性白洛克鸡中该两个位点是完全连锁。在白洛克鸡中该两个位点基因型与繁殖性状相关,AC/GT基因型个体开产日龄极显著早于GT/GT和AC/AC基因型个体(P<0.001),且32周产蛋数也极显著多于另外两种基因型(P<0.001)。双荧光素酶检测结果表明FSH能显著增加GT/GT突变型和AC/AC野生型的启动效率(P<0.05),GT/GT型的启动效率极显著高于AC/AC型(P<0.0001),对FSH的应答也极显著高于AC/AC型(P<0.0001)。

由此,通过这种标记方法得到的AC/GT型种鸡能兼顾开产日龄和产蛋数,在产蛋性能低的地方品种中有意增加AC/GT的频率对提高产蛋量是一个有效措施,而对于开产较晚的群体,这样的措施会使其开产适当提前,从而实现早期选种。具体示例如下:

白洛克鸡原属兼用型,于1937年美国着手向肉用型改良,后经不断改良,鸡的体型外貌与生产性能均有很大改变,现主要作肉鸡配套杂交母系使用。开产日龄(60%以上产蛋率)164~208天,其年产蛋数在150~160枚。表6白洛克群体的数据分析结果显示:GT/GT与AC/AC型个体的平均开产日龄约179天,32周龄平均产蛋数均为33枚;AC/GT型个体的开产日龄平均为176天,32周龄产蛋数平均为35.8枚。所以,应选育AC/GT型鸡。

通过以上育种得到的AC/GT型能兼顾开产日龄和产蛋数,可以进一步提高整个群体的产蛋性能。

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