法律状态公告日
法律状态信息
法律状态
2019-11-22
未缴年费专利权终止 IPC(主分类):A01H4/00 授权公告日:20171024 终止日期:20181209 申请日:20151209
专利权的终止
2017-10-24
授权
授权
2016-06-01
实质审查的生效 IPC(主分类):A01H4/00 申请日:20151209
实质审查的生效
2016-05-04
公开
公开
技术领域
本发明涉及一种植物种子诱导及快速繁殖的方法,特别是一种欧亚瑞香种子诱导及快速繁殖的方法。
背景技术
瑞香科植物分布于世界各地,产于欧洲、亚洲西部。有67属约1200种,其中瑞香属(Daphnegenus)有95种,我国有52种,全国均有分布。自20世纪70年代初,人们从瑞香属植物中分离出具有抗肿瘤活性的欧亚瑞香素(mezerein)和瑞香毒素(daphnotoxin)后,该属植物便成为一个研究热点。欧亚瑞香(DaphnemezereumL.)株型优美、四季常青,在冬天和早春开花且香味浓郁,深受园艺爱好者的青睐,被视为很珍贵的植物;欧洲用瑞香树皮制的膏药做辛辣剂、刺激剂、康复药;法国用果实做黑胡椒的代用品。欧亚瑞香种子繁殖或扦插繁殖存活率不高且生长缓慢,较难满足市场需求。
发明内容
本发明的目的是提供一种欧亚瑞香种子诱导及快速繁殖的方法,能够促进欧亚瑞香种苗的繁殖速度,种子原生苗不易发生退化,保证种苗质量,为进一步开展该物种的研究提供优质种源。
本发明通过以下技术方案达到上述目的:一种欧亚瑞香种子诱导及快速繁殖的方法,包括以下步骤:
(1)外植体的消毒:将2~5滴洗洁精滴入装50ml自来水的烧杯中,取无病虫害欧亚瑞香种子置于烧杯中浸泡5min,用纱布擦洗种子表面污垢,线状自来水冲洗5min~10min,在超净工作台内用75v/v%的乙醇灭菌30S,无菌水冲洗1次,再用0.1v/v%HgCl2消毒12min,无菌水冲洗3次,用无菌滤纸吸干外植体表面水分,获得外植体,其中无菌水为经高高温压灭菌的蒸馏水;
(2)无菌芽的诱导:将步骤(1)得到的外植体接种于MS启动培养基中,在培养温度为23±2℃,光照强度20~30μmol/m2·s,光照时间为12h/d的条件下培养20~30d开始萌发,得到无菌芽,所述启动培养基是以MS为基本培养基,还加入0.5~2.0mg/L的6-苄基腺嘌呤6-BA、0~1.0mg/L的萘乙酸NAA,0.05~1.5mg/L的赤霉素GA3,30g/L蔗糖,5g/L的琼脂,培养基的pH值为5.8;
(3)无菌芽的增殖:将步骤(2)中得到的无菌芽剪切成1~2cm长接种于MS增殖培养基中,在培养温度为23±2℃,光照强度20~30μmol/m2·s,光照时间为12h/d的条件下培养15~20d便长出更多的芽丛,所述增殖培养基为MS基本培养基,添加0.1~2.5mg/L的噻重氮苯基脲TDZ、0.5~2.0mg/L的6-苄基腺嘌呤6-BA、0.05~1.0mg/L的吲哚乙酸IBA,30g/L蔗糖,5g/L的琼脂,培养基的pH值为5.8;
(4)无菌苗的壮苗生根:将步骤(3)中得到的芽丛剪切为单芽置于1/2MS生根培养基中,在培养温度23±2℃,光照强度20~30μmol/m2·s,光照时间为12h/d的条件下进行生根培养,培养10~25d开始生根。所述生根培养基是以1/2MS为基本培养基,还加入0~1.5mg/L的6-苄基腺嘌呤6-BA、0.3~1.5mg/L的萘乙酸NAA、0~1.5g/L的活性炭,5g/L的琼脂,培养基的pH值为5.8。
本发明的突出优点在于:
(1)采用生物技术方法实现了欧亚瑞香种子诱导和快速繁殖。该方法能促使种子较早萌发并提高了诱导率,缩短组培苗生长周期,降低组织培养成本,提高组培苗的质量。
(2)采用本发明所述的方法培养20d能够诱导出芽,芽诱导率达最高达89.1%,培养30d,增殖系数为4.9,生根率为84.8%。
具体实施方式
下面结合实施例对本发明的技术方案进一步说明。
实施例1
本发明所述的欧亚瑞香种子诱导及快速繁殖的方法一个实例,包括如下步骤:
(1)外植体的消毒:将2~5滴洗洁精滴入装50ml自来水的烧杯中,取无病虫害欧亚瑞香种子置于烧杯中浸泡5min,用纱布擦洗种子表面污垢,线状自来水冲洗5min~10min,在超净工作台内用75v/v%的乙醇灭菌30S,无菌水冲洗1次,再用0.1v/v%HgCl2消毒12min,无菌水冲洗3次,用无菌滤纸吸干外植体表面水分,获得外植体,其中无菌水为经高高温压灭菌的蒸馏水。
(2)无菌芽的诱导:将步骤(1)得到的外植体接种于MS启动培养基中,在培养温度23±2℃,光照强度20~30μmol/m2·s,光照时间为12h/d的条件下进行培养,培养30d开始萌发,得到无菌芽。所述启动培养基是以MS为基本培养基,还加入0.5mg/L的6-苄基腺嘌呤6-BA、1.0mg/L的萘乙酸NAA,0.05mg/L的赤霉素GA3,30g/L蔗糖,5g/L的琼脂,培养基的pH值为5.8,培养30d,芽诱导率为69.6%。
(3)无菌芽的增殖:将步骤(2)中得到的无菌芽剪切成1~2cm长接种于MS增殖培养基中,在培养温度23±2℃,光照强度20~30μmol/m2·s,光照时间为12h/d的条件下培养,培养15~20d便长出更多的芽丛。所述增殖培养基为MS基本培养基,添加0.1mg/L的噻重氮苯基脲TDZ、1.5mg/L的6-苄基腺嘌呤6-BA、0.05mg/L的吲哚乙酸IBA,30g/L蔗糖,5g/L的琼脂,培养基的pH值为5.8,培养30d,增殖系数为3.2。
(4)无菌苗的壮苗生根:将步骤(3)中得到的芽丛剪切为单芽置于1/2MS生根培养基中,在培养温度23±2℃,光照强度20~30μmol/m2·s,光照时间为12h/d的条件下进行生根培养,培养25d开始生根。所述生根培养基是以1/2MS为基本培养基,还加入1.0mg/L的萘乙酸NAA、0.5g/L的活性炭,5g/L的琼脂,培养基的pH值为5.8,培养30d,生根率为73.9%。
实施例2
本发明所述的欧亚瑞香种子诱导及快速繁殖的方法另一个实例,包括如下步骤:
(1)外植体的消毒:将2~5滴洗洁精滴入装50ml自来水的烧杯中,取无病虫害欧亚瑞香种子置于烧杯中浸泡5min,用纱布擦洗种子表面污垢,线状自来水冲洗5min~10min,在超净工作台内用75v/v%的乙醇灭菌30S,无菌水冲洗1次,再用0.1v/v%HgCl2消毒12min,无菌水冲洗3次,用无菌滤纸吸干外植体表面水分,获得外植体,其中无菌水为经高高温压灭菌的蒸馏水。
(2)无菌芽的诱导:将步骤(1)得到的外植体接种于MS启动培养基中,在培养温度23±2℃,光照强度20~30μmol/m2·s,光照时间为12h/d的条件下进行培养,培养20d开始萌发,得到无菌芽。所述启动培养基是以MS为基本培养基,还加入1.0mg/L的6-苄基腺嘌呤6-BA、0.5mg/L的萘乙酸NAA,0.2mg/L的赤霉素GA3,30g/L蔗糖,5g/L的琼脂,培养基的pH值为5.8,培养30d,芽诱导率为89.1%。
(3)无菌芽的增殖:将步骤(2)中得到的无菌芽剪切成1~2cm长接种于MS增殖培养基中,在培养温度23±2℃,光照强度20~30μmol/m2·s,光照时间为12h/d的条件下培养,培养15~20d便长出更多的芽丛。所述增殖培养基为MS基本培养基,添加1.5mg/L的噻重氮苯基脲TDZ、1.0mg/L的6-苄基腺嘌呤6-BA、0.5mg/L的吲哚乙酸IBA,30g/L蔗糖,5g/L的琼脂,培养基的pH值为5.8,培养30d,增殖系数为4.8。
(4)无菌苗的壮苗生根:将步骤(3)中得到的芽丛剪切为单芽置于1/2MS生根培养基中,在培养温度23±2℃,光照强度20~30μmol/m2·s,光照时间为12h/d的条件下进行生根培养,培养16d开始生根。所述生根培养基是以1/2MS为基本培养基,还加入1.5mg/L的6-苄基腺嘌呤6-BA、0.3mg/L的萘乙酸NAA、5g/L的琼脂,培养基的pH值为5.8,培养30d,生根率为69.6%。
实施例3
本发明所述的欧亚瑞香种子诱导及快速繁殖的方法再一个实例,包括如下步骤:
(1)外植体的消毒:将2~5滴洗洁精滴入装50ml自来水的烧杯中,取无病虫害欧亚瑞香种子置于烧杯中浸泡5min,用纱布擦洗种子表面污垢,线状自来水冲洗5min~10min,在超净工作台内用75v/v%的乙醇灭菌30S,无菌水冲洗1次,再用0.1v/v%HgCl2消毒12min,无菌水冲洗3次,用无菌滤纸吸干外植体表面水分,获得外植体,其中无菌水为经高高温压灭菌的蒸馏水。
(2)无菌芽的诱导:将步骤(1)得到的外植体接种于MS启动培养基中,在培养温度23±2℃,光照强度20~30μmol/m2·s,光照时间为12h/d的条件下进行培养,培养25d开始萌发,得到无菌芽。所述启动培养基是以MS为基本培养基,还加入1.5mg/L的6-苄基腺嘌呤6-BA、0.3mg/L的萘乙酸NAA,1.0mg/L的赤霉素GA3,30g/L蔗糖,5g/L的琼脂,培养基的pH值为5.8,培养30d,芽诱导率为82.6%。
(3)无菌芽的增殖:将步骤(2)中得到的无菌芽剪切成1~2cm长接种于MS增殖培养基中,在培养温度23±2℃,光照强度20~30μmol/m2·s,光照时间为12h/d的条件下培养15~20d便长出更多的芽丛。所述增殖培养基为MS基本培养基,添加1.0mg/L的噻重氮苯基脲TDZ、2.0mg/L的6-苄基腺嘌呤6-BA、0.1mg/L的吲哚乙酸IBA,30g/L蔗糖,5g/L的琼脂,培养基的pH值为5.8,培养30d,增殖系数为4.5。
(4)无菌苗的壮苗生根:将步骤(3)中得到的芽丛剪切为单芽置于1/2MS生根培养基中,在培养温度23±2℃,光照强度20~30μmol/m2·s,光照时间为12h/d的条件下进行生根培养18d开始生根。所述生根培养基是以1/2MS为基本培养基,还加入0.8g/L的6-苄基腺嘌呤6-BA、1.5mg/L的萘乙酸NAA、1.0g/L的活性炭5g/L的琼脂,培养基的pH值为5.8,培养30d,生根率为80.4%。
实施例4
本发明所述的欧亚瑞香种子诱导及快速繁殖的方法又一个实例,包括如下步骤:
(1)外植体的消毒:将2~5滴洗洁精滴入装50ml自来水的烧杯中,取无病虫害欧亚瑞香种子置于烧杯中浸泡5min,用纱布擦洗种子表面污垢,线状自来水冲洗5min~10min,在超净工作台内用75v/v%的乙醇灭菌30S,无菌水冲洗1次,再用0.1v/v%HgCl2消毒12min,无菌水冲洗3次,用无菌滤纸吸干外植体表面水分,获得外植体,其中无菌水为经高高温压灭菌的蒸馏水。
(2)无菌芽的诱导:将步骤(1)得到的外植体接种于MS启动培养基中,在培养温度23±2℃,光照强度20~30μmol/m2·s,光照时间为12h/d的条件下进行培养,培养23d开始萌发,得到无菌芽。所述启动培养基是以MS为基本培养基,还加入2.0mg/L的6-苄基腺嘌呤6-BA、0.1mg/L的萘乙酸NAA,1.5mg/L的赤霉素GA3,30g/L蔗糖,5g/L的琼脂,培养基的pH值为5.8,培养30d,芽诱导率为76.1%。
(3)无菌芽的增殖:将步骤(2)中得到的无菌芽剪切成1~2cm长接种于MS增殖培养基中,在培养温度23±2℃,光照强度20~30μmol/m2·s,光照时间为12h/d的条件下培养15~20d便长出更多的芽丛。所述增殖培养基为MS基本培养基,添加2.5mg/L的噻重氮苯基脲TDZ、0.5mg/L的6-苄基腺嘌呤6-BA、1.0mg/L的吲哚乙酸IBA,30g/L蔗糖,5g/L的琼脂,培养基的pH值为5.8,培养30d,增殖系数为4.3。
(4)无菌苗的壮苗生根:将步骤(3)中得到的芽丛剪切为单芽置于1/2MS生根培养基中,在培养温度23±2℃,光照强度20~30μmol/m2·s,光照时间为12h/d的条件下进行生根培养,培养10d开始生根。所述生根培养基是以1/2MS为基本培养基,还加入0.3mg/L的6-苄基腺嘌呤6-BA、0.5mg/L的萘乙酸NAA、1.5g/L的琼脂,培养基的pH值为5.8,培养30d,生根率为84.8%。
机译: 一种发芽植物种子的生产方法,一种诱导发芽原材料的种子的生产方法,一种发芽加工植物种子的提取物成分以及筛选方法
机译: 将一种或多种成分施用于多种种子的方法,种子处理操作期间的湿度和温度控制方法,种子处理产品的开发方法,具有一种或多种种子处理产品的生产工厂中的种子处理方法,环境受控种子处理系统,以在生产场所或测试场所处理种子,在种子生产设施中用于将处理过的种子输送到种子的方法,该方法用于将种子处理产品应用于生产工厂中的多种玉米种子的方法,作物产量增强方法,种子生产设施中用于处理生产者的种子的环境控制种子处理系统以及在预定环境条件下评估处理产品种子性能的方法
机译: 分离的核酸,表达盒,表达载体,细胞,转基因植物,后代和植物种子,以及从脂肪酸合成或脂类代谢产生具有增加水平的基因产物的植物的方法,具有增加水平的植物亚麻酸(gla)的诱导,以在缺乏或缺少gla的植物中诱导至少一种γ-亚麻酸(gla)或十八碳烯酸(ota)的产生,从而减少用于合成脂肪酸的基因的产生或植物中的脂质代谢或脂质代谢,以及共抑制植物中脂肪酸或脂质代谢的天然基因的合成