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马动脉炎病毒的液相芯片检测引物及检测方法

摘要

本发明涉及一种马动脉炎病毒的液相芯片检测引物及检测方法,本发明的检测方法能够对样品进行快速检测,从样品处理到出结果仅需4小时左右;由于采用了接近生物反应体系的液相芯片系统和特异性的探针,使该方法可与荧光定量PCR相媲美。本发明设计的引物与常见马属动物其他病毒不发生交叉反应,由于采用了液相反应体系,使该方法的特异性高于传统检测方法,大大杜绝了非特异性扩增造成的假阴性结果。本发明的方法提供了优化的操作程序,操作简单,具有良好重复性。

著录项

法律信息

  • 法律状态公告日

    法律状态信息

    法律状态

  • 2015-02-11

    未缴年费专利权终止 IPC(主分类):C12Q1/70 授权公告日:20130522 终止日期:20131219 申请日:20111219

    专利权的终止

  • 2013-05-22

    授权

    授权

  • 2012-06-06

    实质审查的生效 IPC(主分类):C12Q1/70 申请日:20111219

    实质审查的生效

  • 2012-04-25

    公开

    公开

说明书

技术领域

本发明属于动物病毒检测技术领域,具体涉及一种马动脉炎病毒的液相芯 片检测引物及检测方法。

背景技术

马病毒性动脉炎(Equine Viral Ateritis,EVA)是一种由马病动脉炎病毒 (Equine Ateritis Virus,EAV)引起,在马属动物之间通过呼吸道或生殖器官传 播的传染病。马匹感染EAV后大部分呈亚临床感染,一部分成年马的流感样症 状、怀孕母马发生流产,新生马驹发生间质性肺炎。约有30%-60%种公马感染 EAV后持续带毒,精液中的病毒可传播给雌马,引起EAV的传播。该病在临疹 上表现为发热、白细胞减少,常伴有眼睑水肿和四肢浮肿,其特征性病理变化 为小动脉内膜变性和坏死。

本病主要以美洲和欧洲为中心呈世界性分布,以小规模或中等规模的流行形 式反复发生。澳大利亚虽然没有临床症状发生,但是通过对保存血清的检查表 明,1975年澳大利亚就有EAV抗体阳性马。对1989-1992年收集的马血清检查 结果表明,南非也有抗体阳性马。1996年日本发现EAV抗体阳性的赛马。1996 年我国出口韩国的马匹中也发现了EAV抗体阳性马,但至今没有从马匹中分离 到EAV。

近年来,由于赛马业的发展和国外对食用马的需求,进出口马病的检测量不 断增加。国内外研究者开发了多项马病快速检测诊断方法,如山东检验检疫局 马病实验室研究的ELISA、PCR检测马鼻肺炎和马动脉炎,固相基因芯片技术 检测五种马病等这些方法基本上实现了快速检测的需要。但是有些病还没有成 熟的检测技术及试剂,如锥虫病、焦虫病等还需要用进口检测试剂。进口试剂 和试剂盒特别昂贵,且使用时必须提前2个月左右定货,会严重影响检测进程。 此外,现有的快速检测方法中,ELISA、PCR等技术通量小,费时费力;固相 芯片技术可以实现高通量检测,但成本特别昂贵,无法在马病检测中应用。迫 切需要一种高通量、低成本、快速特异、灵敏可靠检测方法。

发明内容

本发明的目的是提供马动脉炎病毒的液相芯片检测引物及检测方法,即一 种操作简单、结果准确的马动脉炎病毒液相芯片检测方法,及其所用到的引物, 从而弥补现有技术的不足。

本发明为实现上述目的,采用液相芯片技术。该技术是在核酸水平上的一 种检测技术,具有准确性好、灵敏度高的特点。其原理是将编码微球单个逐一 通过检测通道时受到双色激光(如红色和绿色)同时照射,第一束激光激发微 球的分类荧光,根据荧光编码确定微球的类别,即微球内部的两种荧光物质受 激发后可发射两种不同波长的荧光,不同类别微球内这两种荧光物质比例不同, 则荧光强度比例也不同,从而将不同的特异性反应区分开来;第二束激光激发 报告分子上的荧光素,根据荧光强度确定微球上结合的报告分子的数量从而确 定目标分子的数量(定量)。系统只记录与红色荧光同时出现的绿色荧光信号, 不记录未结合的报告分子荧光信号,因此检测前无需洗脱未结合的报告分子。 此外,利用流式细胞术中90℃角散射光可有效地消除微球聚集对结果造成的影 响。各种荧光信号经分析软件进行数字化处理,可获得检测物的种类和数量。

本发明中所涉及到的引物和探针序列如下:

正向引物dirct primer:5-CAACGGGTACACCGCAGTTGGT-3` SEQ ID NO:1

反向引物reverse pr imer:5-CGGACCCGCATCTGACCAAACA-3`SEQ ID NO:2

探针Probe:5`-CGGCGGCGACAGCCTACA-3`SEQ ID NO:3。

正向引物和反向引物5’端进行生物素标记;探针的5’端进行氨基化修饰。

本发明的引物和探针用于检测马动脉炎病毒,其检测方法包括有:1)检测 样品RNA的提取、2)RT-PCR扩增目的片段、3)寡核苷酸探针与微球共价偶联、 4)探针与RT-PCR扩增片段杂交和5)液相芯片仪分析步骤。

其中步骤2)RT-PCR反应的循环条件为:

第一阶段,反转录50℃:30min;

第二阶段,预变性94℃:3min;

第三阶段,扩增94℃:30s,59℃:30s,72℃:30s,30个循环;

第四阶段,延伸72℃:5min。

本发明的检测方法能够对样品进行快速检测,从样品处理到出结果仅需4小 时左右;由于采用了接近生物反应体系的液相芯片系统和特异性的探针,使该 方法可与荧光定量PCR相媲美。本发明设计的引物与常见马属动物其他病毒不发 生交叉反应,由于采用了液相反应体系,使该方法的特异性高于传统检测方法, 大大杜绝了非特异性扩增造成的假阴性结果。本发明的方法提供了优化的操作 程序,操作简单,具有良好重复性。

具体实施方式

下面结合具体实施例对本发明的方法进行详细描述。

本发明所用到的仪器耗材信息如下:表面羧基化的荧光编码微球、鞘液购 置于BD公司,TMAC temtrameihyl-ammdnium chloride、Tris、SD S(10%sol μtion) 购置于美国Sigma公司,SPAE Streptavidin-R-phycoerythrin购于美国Prozyme 公司,RNA提取试剂盒、RT-PCR试剂盒购于大连宝生物公司。主要设备包括: BD FACSArray液相芯片仪、梯度PCR扩增仪、凝胶成像系统、Sigma高速冷冻 离心机等。

通过Internet登陆美国国立生物信息技术中心(NCBI),查询检索已公布的 马动脉炎病毒基因序列。利用Primer Premier5.0软件设计引物和探针,并最终筛 选出一对具有高特异性的引物和探针,参见表1。

表1设计的引物和预期目的片段大小

注:5’-Biotin表示5’端进行生物素标记;5`-NH2表示5’端进行氨基化修饰。

本发明的检测方法如下:

1、检测样品RNA的提取

采用大连宝生物公司的RNA提取试剂盒提取样品RNA,按照说明书的步 骤进行操作,提取的样品电泳检测提取质量。

2、RT-PCR扩增目的片段

采用RNA提取试剂盒(大连宝生物公司)进行EAV RNA的提取。在0.2mL PCR反应管中,依次加入10×RT-PCR bμffer,2.5μL、、dNTP(各2.5mmol/L), 2.0μL、10pmol/μL引物对,各1μL、Inhibiter 0.5μL、AMV XL 0.5μL、AMV Taq(5 M/μL),0.25μL、25mmol/L MgCl2,5.0μL、RNA模板5.0μL,加入双蒸水7.25 μL使反应体积达到25μL。在PCR仪(Eppendorf Mastercycler Gradient)上进 行RT-PCR扩增。优化并确定RT-PCR工作程序:50℃30min;94℃2min;然 后94℃30sec、59℃30sec、72℃30sec,30个循环;最后72℃延伸5min,4 ℃保温。

扩增产物用2%琼脂糖凝胶电泳,在紫外凝胶图像分析系统(Alphamager TM2200)上观察、分析扩增产物。

3、寡核苷酸探针与微球共价偶联

1)将微球漩涡混合20s充分分散;取3×106个微球(75μl),于1.5ml离 心管中10000g离心1min,去上清;

2)加入50μl 0.1mol/L甲基咪唑溶液(ph4.5),漩涡混合,超声波处理 (30s-imin);

3)加入氨基化探针1.0nmol,漩涡混合;

4)加入2.5μL碳二亚胺溶液(10mg的碳二亚胺粉末加入1.0mL的灭菌纯 水,现用现配)充分混匀,室温避光孵育30min。

5)重复4)一次。

6)加入1.0ml 0.02%Tween-20,混匀,10000g离心1min,弃上清;

7)加入1.0ml 0.1%SDS,混匀,10000g离心1min,弃上清;

8)0.1mol/L甲基咪唑溶液(ph4.5)100μL重悬微球,2-8℃避光保存待用。

4、探针与RT-PCR扩增片段杂交

杂交体系包换1.5μL探针偶联微球,33μL 1.5×TMAC杂交液,14.5μL TE,2.5μL RT-PCR产物。混合均匀后于98℃变性10min,在选定温度下孵育 15min,18000g离心2min去上清;加入50μL用1×TMAC杂交液稀释的PE 标记的链亲合素(1∶500),选定温度下孵育10min,18000g离心2min去上清; 加入50μL 1×TMAC杂交液,漩涡混合使微球重悬,上BD FACSArray液相 芯片仪对杂交后的微球进行分析。

杂交温度的优化,杂交反应时间在15min条件下,根据探针的Tm值,选 48℃、50℃、52℃、54℃、56℃等5个温度梯度为研究对象,考察不同杂交温 度下液相芯片的检测效果。

5、液相芯片仪分析步骤

利用BD FACSArray液相芯片仪对杂交微球进行分析,参与计数的荧光编码 微球均≥100个,表明用于计数的荧光编码微球数量有效,所产生的MFI值可 信,各个荧光编码微球的空白对照MFI均<500,表明结果有效,试验可以进行 结果判定。

液相芯片定性比值结果(LQRR)等于样品校正后的MFI值(MFIS)与空白对 照MFI平均值(MFIB)的比值,即LQRR=MFIS/MFIB。如果LQRR≥3,判定 为阳性样本;如果2≤LQRR<3,则判定为可疑;如果LQRR<2,则判定为阴性。

实施例1本发明的马动脉炎病毒液相芯片引物探针和检测方法的特异性分析

1、材料为马动脉炎病毒(EAV)、马鼻肺炎病毒(EHV)、马流感病毒H3N8 亚型、马流感病毒H7N7亚型和马焦虫;其中马动脉炎病毒作为阳性检测样品。

2、马动脉炎病毒液相芯片检测方法的特异性试验

利用本研究建立的液相芯片检测马动脉炎病毒的方法,提取马动脉炎病毒、 马鼻肺炎病毒、马流感病毒H3N8亚型、马流感病毒H7N7亚型和马焦虫等的 RNA或DNA,并进行扩增。将RT-PCR产物或PCR产物,用液相芯片检测体 系进行检测。判断整个液相芯片检测体系对非目标物有无检测信号。

3、结果

分别以马动脉炎病毒(EAV)、马鼻肺炎病毒(EHV)、马流感病毒H3N8亚 型(H3N8)、马流感病毒H7N7亚型(H7N7)和马焦虫等的RT-PCR产物或PCR产 物模板,进行液相芯片检测。结果(见表2)表明,对阳性样品马动脉炎病毒 EAV的检测结果为阳性,而对非目标物扩增产物的检测值均为阴性,表明本发 明的引物和探针在检测的时候不会产生假阳性或假阴性。

表2液相芯片检测体系特异性验证

实施例2、本发明的马动脉炎病毒液相芯片检测方法的灵敏性试验

1、材料选用马动脉炎病毒EAV。

2、马动脉炎病毒液相芯片检测方法的灵敏性试验

将EAV RT-PCR产物进行10倍系列稀释,得到108、107、106、105、104、 103、102、10等不同拷贝数的稀释液,用已经建立的液相芯片检测体系进行检测, 用于考察整个检测体系的灵敏度。

3、结果

将EAV RT-PCR产物进行10倍系列稀释,得到108、107、106、105、104、 103、102、10等不同拷贝数的稀释液,用已经建立的液相芯片检测体系进行检测, 灵敏度检测结果如表3,检测EAV RT-PCR产物的灵敏度为105个拷贝,已完全 能够满足实际检测上的需求。

表3液相芯片检测体系灵敏度验证

为了更好的验证本发明的引物、探针的实际应用效果,本发明用马动脉炎病 毒感染过的样品和用ELISA方法检测确定没有被马动脉炎病毒感染过的样品同 时进行检测。检测结果表明,被感染的样品检测结果为阳性,而没有被马动脉 炎病毒感染过的样品为阴性,从而证明本发明的方法能够有效的检测出待检样 品是否存在马动脉炎病毒。

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