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五种检疫性线虫传多面体病毒多重检测用引物及其应用

摘要

本发明提供了一种五种检疫性线虫传多面体病毒(南芥菜花叶病毒、桃丛簇花叶病毒、番茄环斑病毒、番茄黑环病毒、烟草环斑病毒)多重RT-PCR检测用引物及其应用,所述引物的核苷酸序列如序列表SEQ ID NO:1~6所示。本发明还进一步提供了检测五种检疫性线虫传多面体病毒的方法,该方法以样品总RNA为模板,利用本发明特异性引物进行RT-PCR扩增,反应结束后凝胶电泳检测扩增产物,根据特异性扩增DNA片段的位置判定结果。本发明引物特异性好,检测方法快速准确,为进出口安全提供了保证。

著录项

法律信息

  • 法律状态公告日

    法律状态信息

    法律状态

  • 2015-10-14

    未缴年费专利权终止 IPC(主分类):C12Q1/70 授权公告日:20130403 终止日期:20140816 申请日:20110816

    专利权的终止

  • 2013-04-03

    授权

    授权

  • 2012-02-01

    实质审查的生效 IPC(主分类):C12Q1/70 申请日:20110816

    实质审查的生效

  • 2011-12-14

    公开

    公开

说明书

技术领域

本发明涉及生物检测技术,具体地说涉及五种检疫性线虫传多 面体病毒(Nepovirus)多重RT-PCR检测用引物及其应用。

背景技术

线虫传多面体病毒属(Nepovirus)是类小RNA病毒目 (Picornavirales)、伴生豇豆病毒科(Secoviridae)、豇豆花叶病毒亚 科(Comovirinae)中的一个病毒属,包含亚组A、B和C等3个亚 组,至少有34种病毒。线虫传多面体病毒广泛分布于温带地区,有 些病毒种类具有非常广泛的自然寄主,对农业安全生产造成重大威 胁。12种病毒通过长针线虫(剑线虫属Xiphinema、长针线虫属 Longidorus、或拟长针线虫属Paralongidorus spp)持久性传播、3种 通过花粉传播,一种通过螨类传播,其他种类还没有发现传播介体。 在线虫传多面体病毒中,种子和/或花粉传播非常普遍,已报道21 种病毒可以通过种子传播。根据2007年公布的《中华人民共和国进 境植物检疫性有害生物名录》,该病毒属中被列为检疫性病毒的种类 有:南芥菜花叶病毒(Arabis mosaic virus,ArMV)、桃丛簇花叶病毒 (Peach rosette mosaic virus,PRMV)、烟草环斑病毒(Tobacco ringspot  virus,TRSV)、番茄黑环病毒(Tomato black ring virus,TBRV)、番茄 环斑病毒(Tomato ringspot virus,ToRSV),共5种。目前,已建立了 针对南芥菜花叶病毒、桃丛簇花叶病毒、烟草环斑病毒、番茄黑环 病毒、番茄环斑病毒等单个病毒的RT-PCR检测方法,以及同时检 测ToRSV和TRSV等2种病毒的多重RT-PCR检测方法(薛杨等, 2005;吴兴海等,2006),Digiaro等(2007)建立了亚组A的TRSV、 GFLV、ArMV、GDefV等4种病毒的多重RT-PCR,亚组B的GCMV、 AILV、GARSV和TBRV等4种病毒的多重RT-PCR,但还未见报道 针对我国5种检疫性线虫传多面体病毒的多重RT-PCR检测方法。 本申请发明人根据5种检疫性线虫传多面体病毒RNA1编码的依赖 于RNA的RNA聚合酶基因(RNA-dependent RNA polymerase gene, RdRp)序列设计5条特异性引物,并在其下游区域的保守区域设计 一条可用于5种检疫性线虫传多面体病毒的简并引物,通过反转录 (reverse transcription,RT)和聚合酶链式反应技术(polymerase chain  reaction,PCR)建立了ArMV、PRMV、TBRV、ToRSV、TRSV的多 重RT-PCR检测方法,反应结束后根据特异性扩增DNA片段的位置 判定结果。本发明所建立的多重RT-PCR方法可以同时检测5种检 疫性线虫传多面体病毒,极大提高检测效率,降低检测成本,满足 多目标检测要求。

发明内容

本发明目的在于提供用于ArMV、PRMV、TBRV、ToRSV和 TRSV等五种检疫性线虫传多面体病毒多重RT-PCR检测的引物序 列及其应用。

本发明通过分析已报道的ArMV、PRMV、TBRV、ToRSV和 TRSV等5种检疫性线虫传多面体病毒RNA1上的RdRp基因序列设 计5条特异性引物,并在其下游区域的保守区域设计一条可用于5 种检疫性线虫传多面体病毒的简并引物。所述的引物对由5条正向 引物和1条反向引物组成,其5条正向引物序列为ArMV-342:如 SEQ ID NO:1所示,即为5’-TCC TGT GAG TAA TCA GCA GC-3’、 PRMV-293:如SEQ ID NO:2所示,即为5’-CGC CGC TCTATT TGT  GGT-3’、TBRV-256:如SEQ ID NO:3所示,即为5’-TTG TGG TTT  GCC CTC TGG A-3’、ToRSV-472:如SEQ ID NO:4所示,即为5’- GGA CGG ACA TTT ATC AGC G-3’、TRSV-695:如SEQ ID NO:5 所示,即为5’-GAT GAA TTG CTT GTG GAA CGT-3’;1条反向引 物序列为Nep-21R:如SEQ ID NO:1所示,即为5’-YTT RTC MBT  VCC ATC MGT AAT-3’,其中,Y=C/T,V=G/A/C,R=A/G,B=G/T/C, M=A/C。

本发明还进一步给出了应用上述引物的多重RT-PCR检测方法, 其以样品总RNA为模板,进行多重RT-PCR扩增,反应结束后根据 特异性扩增的DNA片段判定结果。

较佳地,RT-PCR的反应过程中反转录反应的温度为42℃,PCR 扩增的退火温度为52℃,延伸温度为72℃。

其中,ArMV扩增的DNA片段大小为342bp、PRMV为293bp、 TBRV为256bp、ToRSV为472bp和TRSV为695bp。

具体地说本发明以样品总RNA为模板,进行RT-PCR反应。 RT-PCR反应包括反转录和PCR扩增两个过程。

首先在25μL反应体系进行反转录反应,即在0.6mL的反应管 中加入4.0μL RNA,2μL Nep-21R(10μmol/L),5.0μL DEPC处理 水,70℃水浴5min,立即冰浴5min后,加入5μL 5×M-MLV  buffer,1μL M-MLV Reverse Transcriptase,1μL dNTP(各10 mmol/L),0.5μL RibolockTM RNase Inhibitor,补充DEPC处理水至 25μL,轻轻混匀后42℃水浴1h,70℃灭活10min,合成第一链 cDNA,-20℃保存备用。

PCR反应体系为25μL,即在0.2mL的PCR反应管中加入2.0μL cDNA,1.0μL上游引物(10μmol/L),1.0μL下游引物(10μmol/L), 0.2μL DreamTaqTM DNA Polymerase,2.5μL 10×DreamTaqTM PCR  buffer,0.5μL dNTP Mixture(各10mmol/L),17.80μL灭菌水。反 应条件如下:95℃ 3min;94℃ 45s,52℃ 45s,72℃ 1min, 35个循环;最后72℃延伸10min。取5μL的PCR产物采用2.0% 的琼脂糖凝胶电泳电泳检测。

进一步,还可以将本发明引物及相关试剂组装成试剂盒,以方 便使用。

所述的引物在五种检疫性线虫传多面体病毒多重检测中的应用 不限于以上所述,例如可以加入其它辅助手段进行联合检测。

本发明根据五种检疫性线虫传多面体病毒RNA1上RdRp基因 序列设计引物,该组引物可用于ArMV、PRMV、TBRV、ToRSV、 TRSV等五种检疫性线虫传多面体病毒多重RT-PCR检测。本发明检 测方法能够快速准确地判断样品是否有检疫性线虫传多面体病毒 (ArMV、PRMV、TBRV、ToRSV、TRSV),为进出口安全提供了 保证。

附图说明

图1是ArMV、PRMV、TBRV、ToRSV、TRSV等五种检疫性 线虫传多面体病毒单重及多重RT-PCR方法检测结果。1为空白对照, 2-6分别为TBRV、PRMV、ArMV、ToRSV和TRSV的单重RT-PCR 扩增结果,7为五种检疫性线虫传多面体病毒的多重RT-PCR检测结 果。

图2是ArMV、PRMV、TBRV、ToRSV、TRSV等五种检疫性 线虫传多面体病毒多重RT-PCR方法的特异性试验结果。1为阳性对 照,2-11分别为同属病毒蓝莓叶斑驳病毒(BLMoV)、樱桃卷叶病 毒(CLRV)、葡萄扇叶病毒(GFLV)、悬钩子环斑病毒(RpRSV) 以及葡萄、黄瓜、桃子、菜豆、普通烟、苋色藜等健康寄主叶片。

图3是ArMV、PRMV、TBRV、ToRSV、TRSV等五种检疫性 线虫传多面体病毒多重RT-PCR方法的灵敏度试验结果。M:100bp  DNA Marker;1:50倍稀释;2:5-1倍稀释;3:5-2倍稀释;4:5-3倍稀释;5:5-4倍稀释;6:5-5倍稀释;7:5-6倍稀释;8:空白对照。

具体实施方式

下面实施例用于对本发明的进一步说明,但不用来限制本发明 的范围。

实施例15种检疫性线虫传多面体病毒多重RT-PCR方法的建立

1.引物设计和合成

根据5种检疫性线虫传多面体病毒RNA1上的RdRp基因序列 保守区域设计5条特异性引物,并在其下游区域的保守区域设计一条 可用于5种检疫性线虫传多面体病毒的简并引物。

特异引物(正向)序列为:

ArMV-342(SEQ ID NO:1):5’-TCC TGT GAG TAA TCA GCA GC-3’

PRMV-293(SEQ ID NO:2):5’-CGC CGC TCT ATT TGT GGT-3’

TBRV-256(SEQ ID NO:3):5’-TTG TGG TTT GCC CTC TGG A-3’

ToRSV-472(SEQ ID NO:4):5’-GGA CGG ACA TTT ATC AGC G-3’

TRSV-695(SEQ ID NO:5):5’-GAT GAA TTG CTT GTG GAA CGT-3’

简并引物(反向)序列为:

Nep-21R(SEQ ID NO:6):5’-YTT RTC MBT VCC ATC MGT AAT-3’

其中,Y=C/T,V=G/A/C,R=A/G,B=G/T/C,M=A/C。

2.总RNA的提取

1)取0.1g发病叶片,用液氮研磨成粉末状,移入灭菌的1.5ml 离心管中,然后加入1ml的Trizol试剂,剧烈震荡摇匀;

2)室温下保持5min,加入0.2ml氯仿,剧烈振荡15s,然后 在室温下保持10min后,4℃,12000g离心15min;

3)将上层水相转移到新的1.5ml离心管中,加入0.5ml异丙醇, 颠倒混匀,室温下保持10min;

4)4℃,12000g离心10min,RNA就会在管的侧壁和底部形 成沉淀;

5)倒掉上清液,加入1ml 75%的乙醇洗涤沉淀,然后4℃,7500 g离心5min(如沉淀悬浮起来,则用12000g),弃去乙醇;

6)沉淀于室温下充分干燥后,溶于40μL dH2O(DEPC处理) 中,55℃水浴10min后,-20℃保存备用。

3.5种检疫性线虫传多面体病毒多重RT-PCR扩增方法的建立

以总RNA为模板,进行RT-PCR反应。即在0.6mL的反应管 中加入4.0μL RNA,2μL Nep-21R(10μmol/L),5.0μL DEPC处理 水,70℃水浴5min,立即冰浴5min后,加入5μL 5×M-MLV  buffer,1μL M-MLV Reverse Transcriptase,1μL dNTP(各10 mmol/L),0.5μL RibolockTM RNase Inhibitor,补充DEPC处理水至 25μL,轻轻混匀后42℃水浴1h,70℃灭活10min,合成第一链 cDNA,-20℃保存备用。

PCR反应体系为25μL,即在0.2mL的PCR反应管中加入2.0μL  cDNA,2.5μL 10×引物混合物(9.6μM Nep-21R,2.4μM TBRV-256, 2.4μM PRMV-293,1.6μM ArMV-342,1.6μM ToRSV-472和1.6μM  TRSV-695),0.4μL DreamTaqTM DNA Polymerase,2.5μL 10× DreamTaqTM PCR buffer,0.5μL dNTP Mixture(各10mmol/L),17.10 μL灭菌水。反应条件如下:95℃ 3min;94℃ 45s,52℃ 45s, 72℃ 1min,40个循环;最后72℃延伸10min。取5μL的PCR 产物采用2.0%的琼脂糖凝胶电泳电泳检测。

PCR反应结束后根据特异性扩增的DNA片段判定样品中是否 含有检疫性线虫传多面体病毒。其中,ArMV扩增的DNA片段大小 为342bp、PRMV为293bp、TBRV为256bp、ToRSV为472bp和 TRSV为695bp。

实施例25种检疫性线虫传多面体病毒多重RT-PCR方法的特异性 确定

取BLMoV、CLRV、GFLV、RpRSV等同属病毒的阳性样品以 及健康寄主葡萄、黄瓜、桃子、菜豆、普通烟、苋色藜叶片,按实 施例2方法分别提取总RNA,再按实施例3的方法进行RT-PCR扩 增,凝胶电泳检测结果。其中,阳性对照可以特异扩增出预期大小 的目的条带。分别为ArMV为342bp、PRMV为293bp、TBRV为 256bp、ToRSV为472bp和TRSV为695bp,而同属病毒阳性对照 以及健康寄主均未扩增出非特异性条带,检测结果如图2所示。表 明建立的多重RT-PCR方法具有良好的特异性,可用于五种检疫性 线虫传多面体病毒属病毒的检测。

实施例35种检疫性线虫传多面体病毒多重RT-PCR方法的灵敏度 确定

按照实施例2方法分别提取总RNA,再按实施例3的方法进行反转 录,将cDNA模板进行5倍系列稀释,进行多重RT-PCR灵敏性检测。 检测结果如图3所示。表明建立的多重RT-PCR方法的检测灵敏性可以 达到5-3倍,符合检测的要求。

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