法律状态公告日
法律状态信息
法律状态
2016-06-15
未缴年费专利权终止 IPC(主分类):A01H4/00 授权公告日:20121212 终止日期:20150425 申请日:20110425
专利权的终止
2012-12-12
授权
授权
2011-12-21
实质审查的生效 IPC(主分类):A01H4/00 申请日:20110425
实质审查的生效
2011-11-09
公开
公开
技术领域
本发明涉及植物组织培养领域,尤其是一种用组织培养快速提高大水榕、小水榕、尖叶榕、燕尾榕快速繁殖的方法。
背景技术
水榕是非常典型的观赏水草,品种有大水榕、小水榕、尖叶榕、燕尾榕等;大水榕叶片呈倒卵形,株高能达30cm。小水榕叶片呈卵圆形,植株最高只有10cm。燕尾榕叶片较狭长,株高能达20cm。尖叶榕植株比较细小,叶片也较狭长,株高约10-15cm。水榕形状优美,由于叶片坚硬,食草鱼类不会啃食,作为前景水草效果颇佳;水榕还适合在陆生动物饲养箱内种植,例如龟类等。但是多数水榕品种因其雌雄异株且籽株胎生,很难获得正常繁育的种子,常以无性繁殖为主,通过根茎侧芽分蘖而形成新的植株,繁殖速率极低,且受环境和季节限制。这就导致我国的高档观赏水草种苗稀缺,依赖于进口,其价格极高,制约了市场的发展。
发明内容
本发明的目的是提供一种能大幅提高大水榕、小水榕、尖叶榕、燕尾榕的繁殖速度,且不受环境和季节的影响,易于推广的四种水榕离体快速繁殖体系构建方法。
实现发明目的技术方案如下:
大水榕、小水榕、尖叶榕、燕尾榕快繁体系的构建方法,包括如下步骤:外植体的选择与消毒,不定芽的诱导,继代增殖,生根培养、试管苗移栽。
所述外植体的选择与消毒:选取健壮的上述四种水榕腋芽或者由腋芽新生出来的侧芽为外植体,在无菌条件下进行消毒;
所述的大水榕、小水榕外植体依序经过不定芽诱导培养、继代培养后获得试管苗;所述的燕尾榕、尖叶榕外植体依序经过不定芽诱导培养、继代培养及生根培养后获得试管苗,所述诱导培养、继代培养及生根培养均在温度为25±1℃,光照时间为12-14h/d,光照强度为20μmol/(m2·s),湿度为60±10%的条件下进行。
本发明快繁体系的构建方法中所所涉及到的各种培养基的配制如下:
不定芽的诱导培养基为:
①大水榕:MS+6-BA 5mg·L-1+NAA 1mg·L-1;
②小水榕:MS+6-BA 3mg·L-1+NAA 1mg·L-1;
③尖叶榕:MS+6-BA 4.5mg·L-1+NAA 1.5mg·L-1;
④燕尾榕:MS+6-BA 4.5mg·L-1+NAA 1.5mg·L-1
继代培养基为:
①大水榕、尖叶榕、燕尾榕:MS+6-BA 2mg·L-1+NAA 0.2mg·L-1
②小水榕:MS+6-BA 3mg·L-1+NAA 0.3mg·L-1
尖叶榕生根培养基为:MS培养基
燕尾榕生根培养基为:MS+6-BA 0.1mg·L-1+NAA 1.0mg·L-1。
以上每升MS培养基中均含有6-8g的琼脂,20g的蔗糖,并且用1mol/L NaOH或1mol/LHCl调pH至6.0,培养基经高压蒸汽灭菌锅121℃灭菌20分钟。
本发明与已有技术相比,其有益效果体现在:
(1)本发明提高了大水榕、小水榕、尖叶榕、燕尾榕的繁殖系数,缩短了培养时间,且能提高四种水榕试管苗的质量;
(2)本发明不受季节和环境的影响,适合于全年繁殖,可大批供应种苗;
(3)本发明大水榕、小水榕试管苗的培养过程中,能自然生根,不需要转接到生根培养基中;尖叶榕和燕尾榕在继代增殖的过程中生根率较低,但转移到生根培养基中后生根率达91.23%及以上;
(4)本发明在试管苗移栽时,不需要炼苗,采用直接出瓶的方法,将试管苗移栽入土,简化了程序,降低了成本。
具体实施方式
现通过下述优选的实施方式对本发明做进一步的说明。
(1)选取健壮的大水榕、小水榕、尖叶榕、燕尾榕健壮的腋芽或者由腋芽新生出来的侧芽为外植体,洗衣粉洗净表面后经流水冲洗,在超净工作台上先用75%的酒精消毒15-30秒后再用0.1%的HgCl2消毒5-8分钟,再用无菌水冲洗5-6次。
(2)将消毒后的大水榕、小水榕、尖叶榕、燕尾榕外植体分别接种到不定芽的诱导培养基中培养,培养基如下:
①大水榕:MS+6-BA 5mg·L-1+NAA 1mg·L-1;
②小水榕:MS+6-BA 3mg·L-1+NAA 1mg·L-1;
③尖叶榕:MS+6-BA 4.5mg·L-1+NAA 1.5mg·L-1;
④燕尾榕:MS+6-BA 4.5mg·L-1+NAA 1.5mg·L-。
诱导约4-6周后即可出现不定芽。
(3)将诱导出来的不定芽转接到继代培养基中培养,培养基如下:
①大水榕、尖叶榕、燕尾榕:MS+6-BA 2mg·L-1+NAA 0.2mg·L-1
②小水榕:MS+6-BA 3mg·L-1+NAA 0.3mg·L-1
(4)大水榕、小水榕在诱导培养基上培养两个月即可成苗,尖叶榕需转接到不添加激素的MS培养基中培养约30天左右即可成苗,燕尾榕培养两个月后需转接到MS+6-BA 0.1mg·L-1+NAA 1.0mg·L-1的生根培养基中培养约30天左右即可成苗。
以上每升MS培养基中均含有6-8g的琼脂,20g的蔗糖,并且用1mol/L NaOH或1mol/LHCl调pH至6.0。培养基经高压蒸汽灭菌锅121℃灭菌20分钟。
上述快繁体系构建过程中的不定芽的诱导、继代增殖和生根培养过程中的试管苗均培养在温度为25±1℃,光照强度12-14h/d,光照强度为20μmol/(m2·s),RH为60±10%的培养室中。
(5)试管苗移栽:①当大水榕试管苗根条数达到3-10条,根长达到3.20cm及以上,株高达到2.94cm及以上时,即可直接将试管苗移栽入土。②当小水榕试管苗根条数达到3-7条,根长达到1.25cm及以上,株高达到2.32cm及以上时,即可直接将试管苗移栽入土。③当尖叶榕试管苗根条数达到6-7条,根长达到1.87cm及以上,株高达到2.15cm及以上时,即可直接将试管苗移栽入土。④当燕尾榕榕试管苗根条数达到3-5条,根长达到3.32cm及以上,株高达到3.92cm及以上时,即可直接将试管苗移栽入土,要求保持土壤湿润。
实施例:
(1)选取健壮的的大水榕、小水榕、尖叶榕、燕尾榕健壮的腋芽或者由腋芽新生出来的侧芽为外植体,洗衣粉洗净表面后经流水冲洗,在超净工作台上先用体积浓度75%的酒精消毒15-30秒后再用体积浓度0.1%的HgCl2消毒5-8分钟,再用无菌水冲洗5-6次。
(2)将消毒后的大水榕、小水榕、尖叶榕、燕尾榕外植体分别接种到不定芽的诱导培养基中培养,培养基如下:
①大水榕:MS+6-BA 5mg·L-1+NAA 1mg·L-1;
②小水榕:MS+6-BA 3mg·L-1+NAA 1mg·L-1;
③尖叶榕:MS+6-BA 4.5mg·L-1+NAA 1.5mg·L-1;
④燕尾榕:MS+6-BA 4.5mg·L-1+NAA 1.5mg·L-。
诱导约4-6周后即可出现不定芽。6周后统计试验数据,大水榕、小水榕、尖叶榕、燕 尾榕的出芽率分别为:31.58%、16.22%、34.85%、18.23%。
(3)将诱导出来的不定芽转接到继代培养基中培养,培养基如下:
①大水榕、尖叶榕、燕尾榕:MS+6-BA 2mg·L-1+NAA 0.2mg·L-1
②小水榕:MS+6-BA 3mg·L-1+NAA 0.3mg·L-1
(4)大水榕、小水榕、尖叶榕在诱导培养基上培养两个月即可成苗,尖叶榕培养两个月后需转接到MS培养基上培养约30天左右,燕尾榕培养两个月后需转接到MS+6-BA 0.1mg·L-1+NAA 1.0mg·L-1的生根培养基中培养约30天左右即可成苗。
以上每升MS培养基中均含有6-8g的琼脂,20g的蔗糖,并且用1mol/L NaOH或1mol/LHCl调pH至6.0。培养基经高压蒸汽灭菌锅121℃灭菌20分钟。
上述快繁体系构建过程中的不定芽的诱导、继代增殖和生根培养过程中的试管苗均培养在温度为25±1℃,光照强度12-14h/d,光照强度为20μmol/(m2·s),RH为60±10%的培养室中。
(5)试管苗移栽:①当大水榕试管苗根条数达到3-10条,根长达到3.20cm及以上,株高达到2.94cm及以上时,即可直接将试管苗移栽入土。②当小水榕试管苗根条数达到3-7条,根长达到1.25cm及以上,株高达到2.32cm及以上时,即可直接将试管苗移栽入土。③当尖叶榕试管苗根条数达到6-7条,根长达到1.87cm及以上,株高达到2.15cm及以上时,即可直接将试管苗移栽入土。④当燕尾榕榕试管苗根条数达到3-5条,根长达到3.32cm及以上,株高达到3.92cm及以上时,即可直接将试管苗移栽入土,移栽时要求保持土壤湿润,且温度不能太低,冬季移栽成活率很低,春、夏、秋季移栽,成活率均达97%及以上。
机译: 榕榕的培养细胞。 (=榕树(Ficus thunbergii))和培养无花果榕的组织的方法。通过使用所述培养的细胞
机译: 榕榕的培养细胞。 (=榕树(Ficus thunbergii))和培养无花果榕的组织的方法。通过使用所述培养的细胞
机译: 来自榕属嫩叶汁的成分,包括榕属血清的一部分;制备榕属细胞乳清成分的过程。