一种在液相中原位制备脂双分子层膜的方法与装置

摘要

本发明属于膜制备技术领域，具体涉及一种在液相中原位制备脂双分子层膜的方法与装置。本发明采用原位高温囊泡融合法，与普通的囊泡融合法的不同点：一是结合原子力显微镜(AFM)液池针架设计进样装置，实现在样品台上原位制备双层膜；二是融合过程都在高于室温的温度下实现，加速了融合过程。形成的双分子层膜可供原子力显微镜(AFM)观测研究。该方法不仅使得膜的形成过程及膜的表面形貌处于原子力显微镜的实时监测之下，还可通过控制进样器，原位改变膜所处的液相环境，从而实现控制膜表面的化学及物理吸附、膜表面的化学反应及膜表面的晶体生长等等。本方法还可用于制备及改性其它两亲性分子膜。

说明书

技术领域

本发明属于膜制备技术领域，具体涉及一种固体表面支撑的脂双分子层膜的制备方法及装置。

背景技术

固体表面支撑的平面脂双分子层膜(Supported Lipid Bilayer，SLB)，是模型生物膜的主要形式之一。^[1，2]通过控制脂双分子层的组成比例以及膜周围的介质性质等影响因素，人们可以借助原子力显微镜(AFM)定性及定量地研究生物膜对外部环境变化的响应及特定生理过程的内在机制。^[2，3]常用的制备平面支持膜的方法有旋涂法^[3]、LB膜转移法^[3，4]和囊泡融合法^[1，3]三大类。旋涂法就是借助旋涂仪在云母表面直接旋涂脂类的有机溶液得到多层脂类干膜。LB膜转移法是借助LB膜仪，将液槽中的单分子层膜镀覆到云母等固体表面得到单层脂类干膜。这两种方法方便快捷，但是制得的脂膜不具备生物流动性，即使长时间浸泡于溶液中也无法得到具有二维流动性的分子层膜，因而应用范围有限。囊泡融合法是最近提出的一种制备脂双分子层膜的方法，利用脂类囊泡能自发在云母等固体表面自发融合调整的特点，促使脂类在固体表面形成规整的单层双分子层脂膜，同时整个制备过程是发生在液相环境中，因而保证了脂膜的二维流动性，极大地促进了对模型膜的研究。但是目前提出的各种囊泡融合法都存在一些缺点：(1)囊泡在固体表面上自发融合成膜所需的时间很长，约4～12小时^[1，3]；(2)得到效果较好双分子层膜的几率也不够高；(3)在冲洗表面多余囊泡的过程中还常常会造成膜的损坏；(4)在具体实施过程中，尤其是在转移到AFM样品台上观测时，膜表面常应接触空气而失去流动性。此外，目前各种制备方法都存在两个共同的问题：在操作及转移过程中难以保持所需的温度，尤其对于多组分体系，可能导致不可消除的分相及相变痕迹；不可能实现对膜表面的任何进一步的修饰或改性，从而不能用于原位改性和相应的动力学研究。

因此，研究一种便捷制备均匀稳定的固体表面支撑脂双分子层膜的方法，并实现用AFM实时监测溶液环境中温度及分子离子种类等对膜结构的影响与作用，是一个能更大促进生物膜研究并具有实际应用价值的课题。

发明内容

本发明的目的在于提出一种固体表面支撑的脂双分子层膜的新制备方法和装置，该方法融合时间短，制备的膜平整性和流动性好，并便于在液相环境下研究材料表面的物理化学过程。

本发明通过在原子力显微镜(AFM)的可控温样品台上原位制备脂双分子层膜，借助高温条件加速囊泡融合，实现快速制样。该方法同时还能灵活有效控制双层膜所处的温度、周围液体介质的性质等影响膜形貌的因素。

本发明采用原位高温囊泡融合法，与普通的囊泡融合法的不同点：一是结合原子力显微镜(AFM)液池针架设计进样装置，实现在样品台上原位制备双层膜；二是融合过程都在高于室温的温度下实现，加速了融合过程.

为了获得稳定的平整的固体支撑膜，目前的囊泡融合方法大多是在常温下先用大量的囊泡溶液(1-10毫升)将固体表面完全过量润湿，进行4-12小时不等的融合得到较平整的支撑膜。由于脂类囊泡是由一种或多种脂类形成的，每种脂类都有自己的特定的相变温度；当处于该温度之上时，脂类处于相对柔软的液相。因此，本发明通过加温囊泡溶液，使得所有脂类处于高于相变点的温度环境中，使得脂类囊泡相对柔软，刚性较小。这些柔软的囊泡在接触到固体表面后易于融合。同时高温环境下，溶液中的囊泡与固体表面碰撞机率增加。这两种效应必然会加速固体表面脂双分子支撑膜的形成。

本发明中使用的装置如图1图2所示，具体描述如下：

整体装置置于原子力显微镜的可控温样品台0上：其中商用原子力显微镜的液池针架1底部用于安装原子力显微镜的探针，侧面有三个连接口，便于外部溶液进入液池内腔2，或连接外部器件探测内腔2中温度，此外内腔2周围有O圈保护，能减少水分挥发和流动。在本装置中，液池针架1的右侧连接口连接液体进样器3，中间连接口连接温度计4，左侧连接口连接普通软管5作为废液通道。液体进样器3同样有三个通道6-8连接不同种类的液体或溶液，常用的有Milli-Q水，各种缓冲溶液，生物小分子水溶液以及大分子水溶液等，并可以通过液体进样器3的阀门控制溶液的选择、进样速度以及进样量。进样装置、温度计以及软管都可自由装卸。

一种在液相中原位制备脂双分子层膜的方法，采用上述装置在高温条件下制备双分子层脂膜供原子力显微镜观测，包括以下具体步骤：

(1)原位注入囊泡溶液：在连接进样装置前，将有光滑表面的云母或盖玻片等固体置于原子力显微镜的可控温样品台上，将液池针架置于固体表面上，在液池内腔中注入60-100μL的脂类囊泡溶液。其中脂类囊泡溶液的脂浓度为0.5-2.0mg/mL，囊泡尺寸小于300nm。

(2)安装进样装置：将进样装置与液池针架连接，关闭进样器总阀，进样器的三个通道中6-8连接装有20-100mL实验所需溶液的注射器。同时安装好温度计4和软管5。

(3)高温融合：打开样品台温控电源，设定温度，其中温度范围为30-60℃，具体温度设定取决于体系中所用脂类。以温度计4读数达到设定温度时，开始计时，持续加热囊泡溶液30-60分钟，在云母或盖玻片表面，囊泡彼此融合形成双分子膜。

(4)原位去除多余囊泡，获得平整的双分子膜。关闭样品台温控电源，冷却至室温。打开进样器总阀和溶液通道，10-20mL的溶液通过液池内腔，带走内腔未融合的囊泡，废液由软管导出液池内腔。云母或盖玻片表面形成平整的双分子层膜。

本发明中，脂双分子膜的脂类组分不限，与其他方法制备脂双分子膜的脂类组分是一致的，主要是制备过程和条件不同。

本发明的优点是：采用本发明公开的制备方法，与常用的融合方法相比，融合时间短，低于2小时；在融合和除去多余囊泡的过程中彻底排除了空气，保证了膜的平整性和流动性；并且该方法具有更强的灵活性和应用前景，在形成双分子层膜后，还可通过进样器的其它通道改变液池内腔的溶液种类和溶质质量，进一步观测各种分子对脂双分子层膜的影响。

也可用于制备及改性其它两亲性分子膜，如高分子膜，并同样可以控制膜所处介质性质.因此，这种方法也为液相环境下研究材料表面的各种物理化学过程提供了一条可行可靠的途径，具有非常重要的研究和应用价值.

下面结合附图和实施例对本发明作进一步说明。

附图说明

图1为本发明中使用到的装置侧视图。

图2为本发明中使用到的装置俯视图。

图3为实施例1制得的三组分脂类(DOPC/ESM/Chol)膜的AFM形貌图。其中相貌尺寸为8μm×8μm；图的高度标尺为20nm。

图4为实施例2制得的三组分脂类(DOPC/ESM/Chol)膜的AFM形貌图。其中相貌尺寸为8μm×8μm；图的高度标尺为10nm。

图5为实施例3制得的三组分脂类(DOPC/ESM/Chol)双分子层膜的AFM形貌图。其中相貌尺寸为8μm×8μm；图的高度标尺为10nm。

图6为实施例4制得的三组分脂类(DOPC/ESM/Chol)双分子层膜的AFM形貌图。其中相貌尺寸为10μm×10μm；图的高度标尺为10nm。

图7为实施例5制得的两组分脂类(POPC/BSM)双分子层膜的AFM形貌图。其中相貌尺寸为10μm×10μm；图的高度标尺为10nm。

图8为实施例6制得的两组分脂类(DOPC/GM1)双分子层膜的AFM形貌图。其中相貌尺寸为10μm×10μm；图的高度标尺为10nm。

图9为实施例7制得的双分子层膜的AFM形貌图。其中相貌尺寸为10μm×10μm；图的高度标尺为10nm。

图中标号：1为液池针架；2为液池内腔；3为液体进样器；4为温度计，测量2中温度；5为软管；6-8：为进样器通道，可连接不同液体。

具体实施方式

实施例1旋涂法制备三组分脂类(DOPC/ESM/Chol)的固体表面支撑脂膜。

二油酰磷脂酰胆碱(DOPC)、蛋鞘脂(ESM)以及胆固醇(Chol)三种磷脂的氯仿溶液按2∶2∶1的摩尔比混合得到脂类原液，其中脂类原液的浓度为1.0mg(脂类)/mL(氯仿)溶液。用旋涂仪在云母表面以原液镀膜，室温置于AFM下观察，得图3。旋涂仪的参数为：转速1000rpm，旋涂时间20s，在AFM扫描之前，样品保持在45℃的真空烘箱中。从图3中可以看出，通过旋涂法得到的支持膜表面不平整，膜内部分为数层，不利于观测分析膜的形貌和内部分相。

实施例2用水浸泡旋涂法制得的三组分脂类(DOPC/ESM/Chol)的固体表面支撑脂膜。

将上述实施例1中制得到的脂膜浸泡在Milli-Q水中12小时。用Milli-Q水冲洗后，置于AFM液池中在室温下扫描得图4。可以看出，干膜即使在水中充分溶胀后，也无法得到平整的表面。

实施例3普通囊泡融合法制备三组分脂类(DOPC/ESM/Chol)的固体表面支撑脂膜。

取2mL实施例1中的原液，将其制备成1.0mg(脂类)/mL(Milli-Q水)的囊泡悬浮溶液。其中囊泡的平均尺寸小于200nm。取1mL该囊泡悬浮液置于新鲜剥离的云母表面，在30℃的烘箱中保温4小时，然后小心地用Milli-Q水，冲去剩余的溶液，并反复冲洗10次，期间尽量保持表面处于水相中。将冲洗后得到的支撑膜置于AFM液池中成像，得到图5。可以看出，相对实施例1，2中得到的支撑膜，用普通囊泡融合法制得的膜平整，相区边界明显。但是，该方法花费的融合时间长，同时有序相区(图中明亮色块)形状不规整。

实施例4用本方法制备三组分脂类(DOPC/ESM/Chol)的固体表面支撑脂膜。

取60μL实施例3中制得的囊泡悬浮溶液注入液池内腔，装上进样器，其中进样器第一通道连接50mL Milli-Q水。将样品台温度设为为45℃，保温30分钟后用Milli-Q水冲洗，然后降温至30℃，静置10分钟。用原子力显微镜扫描得到图6所示的形貌图。可以看出，用本发明制得的支撑膜表面平整，相区清晰可辩。同时，在图6中的有序相区都呈现圆形和椭圆形，符合DOPC/ESM/Chol三组分在膜内分相后的有序相区的形貌特征。

实施例5用本方法制备两组分脂类(POPC/BSM)的固体表面支撑脂膜

取油酰磷脂酰胆碱(POPC)和脑鞘脂(BSM)囊泡PBS溶液100μL注入液池内腔，装上进样器，其中进样器一通道连接100mLPBS缓冲液，POPC和BSM的摩尔比为1∶1，囊泡水溶液的浓度为1.0mg(脂类)/mL(PBS)溶液，囊泡尺寸小于150nm。将样品台温度设定为50℃，保温40分钟后用PBS缓冲液，然后降温至室温(25-28℃)，静置20分钟。用原子力显微镜扫描得到图7所示的形貌图。可以看出，用本发明制得的两组分支撑膜同样表面平整，相区边界明显，相区边界不规则，有序相区彼此相连且尺寸较大，符合POPC/BSM两组分在膜内分相后的形貌特征。

实施例6用本方法制备两组分脂类(DOPC/GM1)的固体表面支撑脂膜

取DOPC和神经节苷脂(GM1)囊泡水溶液80μL注入液池内腔，装上进样器，其中进样器第一通道连接100mL Milli-Q水，DOPC和GM1的摩尔比为4∶1，囊泡水溶液的浓度为2.0mg(脂类)/mL(Milli-Q水)溶液，囊泡尺寸小于200nm。将样品台温度设为为55℃，保温35分钟后用Milli-Q水冲洗，然后降温至30℃，静置15分钟。用原子力显微镜扫描得到图8所示的形貌图。可以看出，用本发明制得的两组分支撑膜同样表面较平整，相区边界明显。相区边界不规则，相区内部表面平整度低于周围相区，但相区高度高(体现为相区颜色更明亮)，符合DOPC/GM1两组分在膜内分相后的形貌特征。

实施例7液相中GM1在三组分类脂(DOPC/ESM/Chol)支撑膜上的插入与分布

在上述实施例5中的制得的支撑膜的基础上，在进样器的第三通道连接浓度为0.1μg/mL的GM1水溶液10mL，打开通道阀和总阀，注入GM1水溶液，使得液池内腔中的Milli-Q水被置换出内腔，关闭GM1水溶液通道阀和总阀。静置，让注入的GM1水溶液与三组分类脂(DOPC/ESM/Chol)支撑膜作用。30分钟后，打开Milli-Q水的通道阀和总阀，向内腔注入Milli-Q水，置换出在内腔中的GM1水溶液。然后再次扫描，AFM形貌图见图9。

本实施例旨在说明本发明的灵活性和更广泛的应用前景：

(1)由于整个操作不涉及到AFM仪器和针尖的位移，因此图7和图5对应的是同一区域，即通过本发明中的进样装置，我们实现了原位观测，这对于膜形貌的动力学研究具有十分重要的意义。而普通囊泡融合法是无法实现在原位观察膜的变化及其过程的。

(2)图7中多处有亮色突起(如箭头所示)，表明GM1分子进入了支持膜.这是由于GM1分子较大，一旦插入支持膜后，将高于周围的基膜表面.进一步对比，可发现这些突起主要集中在相区边界，表明了GM1分子在多组分膜内的分布情况.即通过本发明我们可以实现原位改变支持膜所处的物理环境，从而改变了支持膜的形貌；在不需重新制样的前提下，增加了支持膜的组分，并观测到新组分所在区域.普通囊泡融合法则要求从制备囊泡溶液就重新制样，花费大量时间.

参考文献

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