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基于环介导等温扩增技术的金黄色葡萄球菌基因快速诊断试剂盒及其检测方法

摘要

本发明公开了金黄色葡萄球菌基因快速诊断试剂盒及其检测方法,该试剂盒由两对引物、DNA聚合酶、反应液、样品预处理液、显色液和阳性对照液组成,以上六种液体分别置于容器中。本发明的基因快速诊断试剂盒应用六个区段,四条引物,根据是否扩增就能判断靶标物质的存在与否,因此具有高特异性。本发明的基因快速诊断试剂盒快速、高效、灵敏度高,只需一个恒定温度就能扩增反应,不需要特殊试剂与设备,检测成本低。本发明的基因快速诊断试剂盒鉴定简便,从dNTP析出的焦磷酸根离子与反应溶液中的Mg

著录项

法律信息

  • 法律状态公告日

    法律状态信息

    法律状态

  • 2012-07-18

    授权

    授权

  • 2009-12-23

    实质审查的生效

    实质审查的生效

  • 2009-10-28

    公开

    公开

说明书

技术领域

本发明涉及生物检测试剂,具体涉及一种金黄色葡萄球菌基因快速诊断试剂盒及其检测方法。

背景技术

目前对金黄色葡萄球菌有多种检测方法,从以病原微生物分离鉴定、形态学鉴定和自动生化鉴定为主的国家标准(GB/T4789.7-2003),到特异蛋白的免疫学检测技术、核酸探针、聚合酶链式反应(PCR)技术等分子生物学检测方法[食品安全检测与现代生物技术,化学工业出版社,2004年]。其中病原核酸检测在快速性、安全性、准确性和灵敏性等方面都有很大的提高,这些新技术试图突破传统的形态学、生化反应等微生物学检测旧模式,不需要对微生物进行分离提纯,而直接用样品或样品的增菌液对其基因及基因产物进行快速检测,并且与分子生物学技术及生物信息学手段相结合,向准确、快速、灵敏和自动化的方向发展。

以聚合酶链式反应(PCR)技术为代表的病原核酸检测技术在实际应用中也存在一些问题,如普通聚合酶链式反应(PCR)技术需要专门的仪器,而且存在容易交叉污染和操作过程烦琐的缺点。而荧光实时定量聚合酶链式反应(real time PCR)技术虽然较好地解决了交叉污染的问题,并简化了操作过程,但却需要更复杂的定量测定仪器,因此不适用于现场快速检测。而且实时定量聚合酶链式反应PCR技术中荧光探针的成本较高,加大了推广应用的难度。免疫学检测技术快速简便成本低廉,但要求高质量高稳定性的单克隆抗体,否则因准确性不够,目前只能是辅助检测手段。所以及时运用生物技术发展的最新成果对满足病原微生物检测要求的不断提高具有重要意义。其中等温扩增(Isothermal Amplification)核酸快速检测技术是病原核酸检测技术上的长足进步,现已建立起来的环介导等温扩增技术(loop-mediated isothermal amplication of DNA,简称LAMP)具有很多的优越性,且目前也未见有用环介导等温扩增技术检测金黄色葡萄球菌的基因快速诊断试剂盒。

发明内容

本发明的目的是针对现有技术存在的不足,提供一种检测成本低、使用方便、检测速度快、特异性高的基于环介导等温扩增技术的金黄色葡萄球菌基因快速诊断试剂盒。

本发明的另一个目的是提供上述金黄色葡萄球菌基因快速诊断试剂盒的检测方法。

本发明的上述目的是通过如下技术方案予以实现的:

一、本发明的金黄色葡萄球菌基因快速诊断试剂盒,是由两对引物、Bst DNA聚合酶、反应液、稳定液、样品预处理液、显色液和阳性对照液组成,以上六种液体分别置于容器中,其中:

所述的两对引物为:

外引物F3:TTTTCATAATCRATCACTGGAC,如SEQ ID NO:1所示;

外引物B3:TTTAACAGCTAAAGAGTTTGGT,如SEQ ID NO:2所示;

内引物FIP:ACAATAATAACGAGGTYATTGCAGCTTTTCTTG

AACACTTTCATAACAGGTAC,如SEQ ID NO:3所示;

内引物BIP:CCTTCAGCAAGCTTTAACTCATAGTTTTTCAGATAGCATGCCATACAGTC,如SEQ ID NO:4所示;

上述反应液含有1.6~2mmol/L dNTP、20~25mmol/L Tris-HCl、10~12.5mmol/L氯化钾、10~12.5mmol/L硫酸铵、8~10mmol/L硫酸镁、0.1~0.125%TritonX-100、0.8~1mol/L甜菜碱、内引物FIP/BIP各1.6~2mol/L和外引物F3/B3各0.2~0.25mol/L。优选的比例是反应液含有2mmol/LdNTP、25mmol/L Tris-HCl、12.5mmol/L氯化钾、12.5mmol/L硫酸铵、10mmol/L硫酸镁、0.125%TritonX-100、1mol/L甜菜碱、内引物FIP/BIP各2mol/L和外引物F3/B3各0.25mol/L。(0.1~0.125%TritonX-100是指:Triton X-100占样品预处理液的体积百分比为0.1~0.125%)

上述样品预处理液含有10~20mmol/L pH 8.0的Tris-HCl、1~2mmol/L EDTA和1~1.2%Triton X-100。优选的比例是样品预处理液含有20mmol/L Tris-HCl(pH 8.0)、2mmol/L EDTA和1.2%Triton X-100。(1~1.2%Triton X-100是:Triton X-100占样品预处理液的体积百分比为1~1.2%)

上述显色液优选为荧光染料SYBR Green I;

上述稳定液优选为石蜡油。

上述阳性对照为金黄色葡萄球菌基因组DNA。

二、本发明基因快速诊断试剂盒的生产工艺

1、将内引物FIP/BIP和外引物F3/B3合成纯化后,定量配制,浓度检测,抽样质检;

2、将反应液无菌分装,并按照实验用进行浓度确定,抽样质检;

3、将稳定液无菌分装,抽样质检;

4、将阳性对照标本制备,分装,抽样质检;

5、组装试剂盒。

三、本发明基因快速诊断试剂盒的检测方法

1、样品处理

将待测样品于离心管中离心,去上清,沉淀中加入样品预处理液并混合均匀,沸水浴灭活后冰上冷却,高速离心后,上清即为待用的样品模板DNA;

2、环介导等温扩增技术反应过程

在反应管中加入反应液38~40体积%,Bst DNA聚合酶大片段0.9~1.8体积%,稳定液52~54.5体积%,样品模板DNA 4.5~9体积%,63~65℃恒温反应45~90min。所述体积百分比是指占四个组分总体积的体积百分比。

3、反应后处理

在上述反应管和阳性对照组中分别加入显色液,混匀,样品组显色与对照组相同则为阳性,否则为阴性。

本发明的原理是利用Bst DNA聚合酶和根据靶基因序列设计的两对特殊的内、外引物(即内引物FIP/BIP和外引物F3/B3),特异性识别靶序列上的六个独立区域,启动循环链置换反应,在靶标DNA区启动互补链合成,结果在同一链上互补序列周而复始形成有很多环的花椰菜结构的茎-环DNA混合物。LAMP反应过程中,从dNTP析出的焦磷酸根离子与反应溶液中的Mg2+结合,产生副产物——焦磷酸镁乳白色沉淀,即可通过肉眼观察判定结果。LAMP反应是在恒温(63~65℃)条件下45~90分钟内完成。这种比较温和的温度条件以及没有温度循环使所需仪器简单化,克服了传统PCR固有的检测时间长、容易污染及检测成本高等缺点。此外,这种检测方法对检测人员的技术素质要求较低,实际操作极为简便,不需要特殊的试剂和仪器设备,有利于建立成本低廉的快速筛选体系。LAMP法是一种简便、快速、高度特异性的基因扩增法。将恒温基因扩增技术与PCR技术(包括荧光实时定量PCR技术)进行比较,可以发现该技术在灵敏度、特异性和检测范围等方法学指标上相当于或优于PCR技术,且不依赖任何专门的仪器设备即可实现现场高通量快速检测,而且检测成本远低于荧光定量PCR技术。国内目前尚未有这方面的试剂盒出售。目前国家标准中以微生物分离培养和形态学鉴定为主、结合生化分析和血清学分型鉴定的通行方法,初步鉴定需2~3天,完成鉴定报告需10~15天;采用本发明的基因快速诊断试剂盒仅需2小时。并且,本发明的反应液中加入了显色液,鉴定结果更为直观清晰。

与现有技术相比,本发明具有如下有益效果:

1.本发明的基因快速诊断试剂盒只需一个恒定温度就能扩增反应,不需要特殊试剂与设备,检测成本低;2.本发明的基因快速诊断试剂盒应用六个区段,四条引物,根据是否扩增就能判断靶标物质的存在与否,因此具有高特异性;3.本发明的基因快速诊断试剂盒扩增快速且高效,在不到1小时即可完成扩增,且产率高;4.本发明的基因快速诊断试剂盒灵敏度高,扩增模板仅需100拷贝或更少;5.本发明的基因快速诊断试剂盒鉴定简便,从dNTP析出的焦磷酸根离子与反应溶液中的Mg2+结合,产生副产物-焦磷酸镁沉淀,可通过肉眼观察鉴定,并且加入显色液后,阴阳性结果显色差异显著,验证率高,更加明显可靠。

附图说明

图1为22株菌及细菌DNA混合液LAMP结果图;

图1中,1为阳性对照,2为阴性对照,3~19为非金黄色葡萄球菌,20-23为金黄色葡萄球菌临床分离株,24为ATCC6538,25为细菌DNA混合。

图2为金黄色葡萄球菌不同稀释浓度LAMP检测结果;

图2中,P为阳性对照,N为阴性对照,0为细菌原液,1~10分别为101~1010稀释倍数。

图3为金黄色葡萄球菌不同稀释倍数LAMP检测结果;

图3中,M为Marker,P为阳性对照,N为阴性对照,0为细菌原液,1~10分别为101~1010稀释倍数。

具体实施方式

实施例1试剂盒的制备

(1)按以下序列经DNA合成仪合成寡聚脱氧核酸引物:

外引物F3:TTTTCATAATCRATCACTGGAC,如SEQ ID NO:1所示;

外引物B3:TTTAACAGCTAAAGAGTTTGGT,如SEQ ID NO:2所示;

内引物FIP:ACAATAATAACGAGGTYATTGCAGCTTTTCTTGAACACTTTCATAACAGGTAC,如SEQ ID NO:3所示;

内引物BIP:CCTTCAGCAAGCTTTAACTCATAGTTTTTCAGATAGCATGCCATACAGTC,如SEQ ID NO:4所示;

(2)购置DNA聚合酶:Bst DNA polymerase(Large Fragment)。置于容器。

(3)配制反应液:反应液含有2mmol/LdNTP、25mmol/L Tris-Cl、12.5mmol/L氯化钾、12.5mmol/L硫酸铵、10mmol/L硫酸镁、0.125%TritonX-100、1mol/L甜菜碱、内引物FIP/BIP各2mol/L和外引物F3/B3各0.25mol/L,置于容器。

(4)配制样品预处理液:样品预处理液含有20mmol/L Tris-HCl(pH 8.0)、2mmol/L EDTA和1.2%Triton X-100,置于容器。

(5)购置稳定液:石蜡油,置于容器;

(6)购置显色液:SYBR Green I,置于容器。

(7)提取阳性对照:金黄色葡萄球菌基因组DNA,置于容器。

(8)将上述7个容器装成试剂盒,封装。

制备工艺简述如下:

1、将内引物FIP/BIP和外引物F3/B3合成纯化后,定量配制,浓度检测,抽样质检;

2、将反应液无菌分装,并按照实验用进行浓度确定,抽样质检;

3、将稳定液分装,抽样质检;

4、将阳性对照标本制备,分装,抽样质检;

5、组装试剂盒。

实施例2试剂盒的制备

反应液的配方为:反应液含有1.8mmol/L dNTP、20mmol/L Tris-HCl、10mmol/L氯化钾、10mmol/L硫酸铵、8mmol/L硫酸镁、0.1%TritonX-100、0.8mol/L甜菜碱、内引物FIP/BIP各1.6mol/L和外引物F3/B3各0.2mol/L;

样品预处理液的配方为:样品预处理液含有10mmol/L pH 8.0的Tris-HCl、1mmol/L EDTA和1%Triton X-100。

其他同实施例1。

实施例3金黄色葡萄球菌基因快速诊断试剂盒的应用

1材料与方法

1.1材料

1.1.1菌株

本公司用菌株有22株,主要来源于美国标准生物品收藏中心、

中国药品生物制品检定所及临床分离。详见表1。

表1菌株名称及来源

  菌株来源  菌株及编号  美国标准生物品收藏  中心(ATCC)  金黄色葡萄球菌(6538)、沙门氏菌(14028、13076、  13311)、李斯特菌(7466、25401);  医学微生物菌种保藏  管理中心(CMCC)  沙门氏菌(50115);  临床分离株  金黄色葡萄球菌、副溶血弧菌、志贺氏菌、小肠结肠炎  耶尔森氏菌、猪霍乱沙门、肠炎沙门氏菌、鼠伤寒沙门  氏菌;  其它环境分离株  金黄色葡萄球菌、副溶血弧菌、志贺氏菌、小肠结肠炎  耶尔森氏菌、沙门氏菌。

1.1.2主要仪器和试剂

1.2分离菌株的鉴定

1.2.1金黄色葡萄球菌的培养  金黄色葡萄球菌标准菌株用LB培养基,37℃,培养18-24小时。于普通营养琼脂平板25℃培养24小时分离出单菌落。

1.2.2临床分离株的分离鉴定  临床分离株增菌后,分别于相应的筛选平板上分离出单菌落,挑可疑单菌落作生化鉴定。

1.3样品处理

(1)取1ml增菌液10000rpm离心2分钟,去尽上清,获取菌体沉淀;若为平板菌落,则可以直接挑取单菌落,在核酸提取液中涮洗一下;

(2)在上述菌体沉淀中加入80μL核酸提取液混合均匀,沸水中煮20分钟后立即置于冰上冷却10分钟,10000rpm离心2分钟,上清即为样品模板DNA。

1.4环介导等温扩增技术的反应过程

(1)在200μL反应管配制反应体系:反应液22μL,Bst DNA聚合酶0.5μL(4U),稳定液30μL,模板DNA 2.5μL。

(2)将配制好的反应管于65℃恒温反应1小时。

1.5反应后处理

向上述反应产物中加入2μL SYBR Green I,混匀,若反应管与阳性对照管一样显现绿色则为阳性,若反应管显现橙色则为阴性。

1.6电泳

配制0.1%琼脂糖凝胶,直接加入显色后的反应产物进行凝胶电泳。

1.7特异性试验

1.7.1纯菌株LAMP检测用LAMP方法对22株细菌进行扩增,根据显色反应观察结果,绿色为阳性,橙色阴性,验证该方法的特异性。

1.7.2几种菌株混合DNA检测用LAMP对金黄色葡萄球菌及副溶血弧菌、志贺氏菌、小肠结肠炎耶尔森氏菌、猪霍乱沙门氏菌、肠炎沙门氏菌、鼠伤寒沙门氏菌等几种菌DNA等体积混合液取2.5μL作LAMP检测。

1.8灵敏度试验将ATCC6538菌接种于相应的培养基中培养,待液体培养基出现浑浊时测其吸光度,当吸光度值在0.35-0.45之间时,用0.85%的生理盐水梯度稀释。每次稀释十倍,制成10-1-10-10一系列稀释菌液。采用10-6、10-7、10-8、稀释度进行平板计数,每个稀释度分别作3个平板,37℃培养24h,取菌落数在30~300之间的平板作平板计数,该浓度级的3个平板的菌落数的均数推算细菌浓度,为菌落平均数×稀释倍数×10;同时,各浓度级取1mL,提取DNA,作LAMP检测。

1.9重复性试验特异性试验和灵敏度试验分别重复2次。

2结果

2.1金黄色葡萄球菌LAMP检测方法的建立

2.2特异性试验ATCC6538检测结果阳性,4株临床分离金黄色葡萄球菌检测结果阳性,17株非金黄色葡萄球菌均阴性,金黄色葡萄球菌及副溶血弧菌、志贺氏菌、小肠结肠炎耶尔森氏菌、猪霍乱沙门、肠炎沙门氏菌、鼠伤寒沙门氏菌等几种细菌DNA混合液为阳性,如图1。说明特异性强。

2.3灵敏度试验经菌落平板计数,选择第6、7、8个稀释倍数进行读数,推算得LAMP方法最低可检测3.7×104cfu/mL。如图2、3。

2.4重复性试验特异性试验重复两次,结果一致。灵敏度试验重复两次,结果一致。

基于环介导等温扩增技术的金黄色葡萄球菌基因快速诊断试剂盒及其检测方法序列表

SEQUENCE LISTING

<110>广州华峰生物科技有限公司

<120>基于环介导等温扩增技术的金黄色葡萄球菌基因快速诊断试剂盒及其检测方法

<130>

<160>4

<170>Patent In version 3.2

<210>1

<211>22

<212>DNA

<213>人工序列

<400>1

外引物F3:TTTTCATAATCRATCACTGGAC

<210>2

<211>22

<212>DNA

<213>人工序列

<400>2

外引物B3:TTTAACAGCTAAAGAGTTTGGT

<210>3

<211>53

<212>DNA

<213>人工序列

<400>3

内引物FIP:ACAATAATAACGAGGTYATTGCAGCTTTTCTTGAACACTTTCATAACAGGTAC

<210>4

<211>50

<212>DNA

<213>人工序列

<400>4

内引物BIP:CCTTCAGCAAGCTTTAACTCATAGTTTTTCAGATAGCATGCCATACAGTC

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