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Mechanical force-driven TNFα endocytosis governs stem cell homeostasis

机译:机械力驱动的TNFα内吞作用治理干细胞稳态

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摘要

MSCs produce and release TNFα for functional maintenance. a–c Examination of mRNA expression levels, protein expression levels, and secreted concentrations of TNFα in different cell types. N = 3. For quantification of Western blotting, two-tailed Student’s t test was used for comparisons between different cell types and MSCs. d Calcein labeling for bone formation analysis in WT and TNFα−/− mice (N = 5). Scale bar = 50 μm. e Oli red O staining for bone marrow adiposity in WT and TNFα−/− mice (N = 5). Scale bar = 150 μm. f–i Functional analyses of MSCs according to CFU, BrdU labeling, osteogenic, and adipogenic differentiation. TNFα and RANKL were added at 1 ng·mL−1. N = 5. Scale bars = 100 μm. j Examination of protein expression levels and secreted concentrations of TNFα. N = 3. TAPI-2 was used to inhibit TACE at 120 nmol·L−1. k–n Functional analyses of MSCs according to CFU, BrdU labeling, and osteogenic and adipogenic differentiation. N = 3. Scale bars = 100 μm. o Diagram showing the production and release of TNFα for the functional maintenance of MSCs. For quantification of Western blotting, a two-tailed Student’s t test was used for the comparison between the treatment and WT groups. *P < 0.05. N.S. not significant. Data represent the mean ± SD
机译:MSCS为功能维护产生和释放TNFα。 A-C在不同细胞类型中检测mRNA表达水平,蛋白质表达水平和TNFα的分泌浓度。 n = 3.对于蛋白质印迹的量化,双尾学生的T检验用于不同细胞类型和MSC之间的比较。 D Calcein标记WT和TNFα - / - 小鼠骨形成分析(n = 5)。秤条=50μm。 E Oli Red O染色WT和TNFα - / - 小鼠(n = 5)。秤杆=150μm。根据CFU,BRDU标记,骨质发生和脂肪切分化,F-I功能分析MSCs。在1ng·mL-1时加入TNFα和RANK1。 n = 5.缩放条=100μm。 J检测蛋白质表达水平和分泌浓度的TNFα。 n = 3. Tapi-2用于抑制120nmol·L-1的TACE。根据CFU,BRDU标记和骨质发生和脂肪发生分化的K-N功能分析。 n = 3.缩放条=100μm。 O图显示了TNFα的生产和释放,用于MSC的功能维护。对于蛋白质印迹的定量,双尾学生的T试验用于治疗和WT组之间的比较。 * P <0.05。 N.S.不重要。数据表示平均值±SD

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