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基因编辑技术介导的基因删除与替换

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摘要

1 文献综述

1.1 基因编辑技术研究进展

1.1.1 归巢核酸酶技术

1.1.2 锌指核酸酶技术

1.1.3 类转录激活效应因子核酸酶技术

1.1.4 CRISPR/Cas9技术

1.1.5 基因组编辑技术创制突变类型

1.2 miRNA作用机制

1.2.1 AtMIR169a简介

2 引言

2.1 研究目的及意义

2.2 技术路线

3 材料与方法

3.1 实验材料

3.1.1 材料背景

3.1.2 菌种与载体

3.1.3 试剂

3.1.4 仪器设备

3.2 CRISPR/Cas9识别靶位点分析

3.2.1 基因删除系统靶位点选择

3.3.1 基因删除载体构建

3.3.2 质粒转化农杆菌

3.3.3 拟南芥的种植与遗传转化

3.3.4 转基因植株基因组提取

3.3.5 删除突变体筛选及其遗传鉴定

3.3.6 mir169a删除纯合突变体Northern blot实验

3.3.7 mir169a删除纯合突变体干旱胁迫处理与表型鉴定

3.4.1 基因替换系统删除载体构建

3.4.2 基因替换系统修复模板载体构建

3.4.3 载体共转农杆菌

3.4.4 基因替换突变体筛选与鉴定

3.4.5 基因替换突变体eGFP表达鉴定

4 结果分析

4.2 AtMIR169a和AtMIR827a基因删除体系建立与验证

4.2.1 AtMIR169a和AtMIR827a基因删除效率与稳定遗传分析

4.2.2 AtMIR169a和AtMIR827a基因删除突变体基因型分析

4.2.3 mir169a纯合删除突变体Northern blot分析

4.2.4 mir169a纯合删除突变体受干旱胁迫处理及表型鉴定

4.3 AtTFL1基因特定区域替换系统的建立与验证

4.3.1 基因替换突变体的检测

4.3.2 基因替换突变体的筛选

4.3.3 基因替换突变体eGFP表达鉴定

5 讨论

5.1 基因编辑技术在作物育种中的意义

5.2 基于双sgRNA向导的CRISPR/Cas9系统的基因删除体系对于植物miRNA研究的意义

5.3 基于同源重组修复策略的基因替换体系对于基因工程发展的意义

6 结论

参考文献

作者简介

硕士期间发表的研究成果

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摘要

基因编辑是一项旨在对基因组进行定点修饰的新技术,通过人工构建工程化的核酸酶,对基因组目标区间序列特异性识别与切割,定点切割产生DNA双链断裂(double-stranded breaks,DSBs)并通过细胞内源的同源重组(homologous recombination,HR)或非同源末端连接(nonhomologous end-joining,NHEJ)DNA损伤修复机制,可以在细胞活体基因组DNA序列中产生碱基缺失、插入、替换等修饰的技术。基因编辑技术具有定向突变、效率高、操作简便、特异性强等特点,使其在基因功能鉴定和遗传改良应用上有着重要的意义。基因删除是指引入两个DSBs,基于NHEJ修复将两个分开的DSBs连接起来,实现DSBs之间基因片段的删除。基因替换是在基因删除的基础上,提供修复模板,基于HR途径可以实现任何设计的DNA序列的引入。microRNA(miRNA)是由具有发卡结构的pri-miRNA加工而来的一类小分子RNA,参与生物体转录和转录后水平基因的调控。基因删除可被用于创制miRNA无义突变体以研究其基因功能。本研究基于成簇的规律间隔的短回文重复序列(clustered regularly interspaced short palindromic repeats,CRISPR)的基因编辑技术在植物中实现基因删除和基因替换,主要研究结果如下:
  1.基因删除技术体系的建立。以AtMIR169a、AtMIR827a基因座pri-miR169a和pri-miR827a两端序列为目标区域,选取靶位点,构建基于双元向导RNA(single-guide RNA,sgRNA)介导的CRISPR/Cas9编辑载体。
  2.基因删除突变体筛选、鉴定与表型分析。通过PCR技术检测筛选基因删除突变体,得出AtMIR169a、AtMIR827a基因座pri-miRNA区域删除效率分别为24%和20%,测序确定其基因型,筛选出纯合删除突变体mir169a和mir827a。Northern blot实验结果表明,纯合删除突变体mir169a中miR169的表达量明显减弱。干旱胁迫处理实验表明,纯合删除突变体mir169a表现为更强的耐旱性。
  3.基因替换技术体系的设计与建立。基于基因删除技术体系,选取AtTFL1基因部分片段为替换目标区域,选取靶位点,构建基因删除编辑载体。基于HR修复原理,设计两段800bp左右与AtTFL1基因替换目标区域外侧序列一致的同源臂,分别连接到核定位表达盒35S:eGFP:NOS的两端,在两端分别设计和替换目标区域一致的靶位点,构建修复模板载体。
  4.基因替换突变体筛选、鉴定与表型分析。通过特异性引物对转基因阳性植株进行扩增,筛选出AtTFL1基因部分片段替换突变体,统计得到替换效率为0.8%。筛选出AtTFL1基因部分片段发生替换并且修复模板发生删除的突变体,观察eGFP表达。实验表明,eGFP在拟南芥叶和根中能稳定表达。
  5.基因删除、基因替换编辑目标突变的遗传。筛选出基因删除杂合植株和基因替换植株,对后代进行鉴定。结果表明,后代植株突变类型符合孟德尔分离定律,基因删除、基因替换编辑目标突变能够稳定遗传。
  本研究基于CRISPR/Cas9基因编辑技术,可以高效的实现植物基因删除并有效的创制出miRNA无义突变体。本研究在基因删除的基础上,基于HR修复原理实现了对AtTFL1特定区域的定点替换。本研究为植物miRNA功能研究和DNA序列替换及修饰提供了新的策略。

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