声明
摘要
缩略词表
第一章 前言
1.1 ATP依赖的染色质重塑体
1.2 CHD家族结构域
1.2.1 CHD家族亚族分类及功能
1.2.2 CHD2的功能
1.2.3 神经元产生机制
1.3 研究目的意义
第二章 材料方法
2.1 材料
2.1.1 细胞株
2.1.2 实验动物
2.1.3 质粒
2.2 实验试剂和仪器设备
2.2.1 实验试剂
2.2.2 实验试剂、培养基的配制
2.2.3 其他常用试剂的配制
2.2.4 主要抗体
2.2.5 主要实验仪器和材料
2.3 实验方法步骤
2.3.1 质粒提取
2.3.2 大肠杆菌感受态的制备
2.3.3 转化
2.3.4 293FT、N2A细胞复苏
2.3.5 293FT、N2A细胞冻存
2.3.6 293FT或N2A细胞培养
2.3.7 E12.5的胚胎大脑皮层NSC细胞分离与培养
2.3.8 DNA琼脂糖凝胶回收
2.3.9 Trizol法提取鼠脑组织总mRNA
2.3.10 CHD2基因目的片段的获得
2.3.11 菌落PCR反应
2.3.12 二步法RT-PCR操作
2.3.13 载体双酶切反应
2.3.14 反转录反应(采用天根Quant cDNA第一链合成试剂盒)
2.3.15 细胞免疫组化染色(immunohistochemical staining)
2.3.16 蛋白质印迹实验(western blot)
2.3.17 胚胎脑组织固定、脱水
2.3.18 冰冻切片
2.3.19 胚胎电转
2.3.20 Brdu标记
2.3.21 慢病毒的包装
2.3.22 病毒滴度的测定
2.3.23 病毒感染细胞
2.3.24 脑片Brdu染色
2.3.25 shRNA质粒的构建
第三章 结果
3.1 构建CHD2敲降质粒
3.2 构建CHD2过表达质粒
3.3 包装病毒及病毒滴度的测定
3.4 Western blotting检测CHD2-shRNA的敲降效率
3.5 RT-PCR检测CHD2过表达效率
3.6 内源性CHD2在神经干细胞/前体细胞的表达
3.7 体外敲降CHD2抑制神经干细胞增殖并促进神经元分化
3.8 利用胚胎电转技术研究CHD2在胚胎脑发育中的作用
3.9 体内敲降CHD2促进神经元分化
3.10 体内敲降CHD2抑制神经干细胞/前体细胞的增殖
3.11 体内过表达CHD2促进神经前体细胞增殖
3.12 CHD2结合REST启动子区调控REST,促进神经前体细胞增殖
第四章 讨论
4.1 CHD2维持神经前体细胞的自我更新
4.2 CHD2结合到REST的启动子上直接调控REST的转录
4.3 尚需解决的问题
第五章 结论
参考文献
致谢
硕士期间发表论文