声明
致谢
摘要
缩略语及中英文对照
1 引言
2 材料与方法
2.1 主要试剂材料
2.2 主要仪器
2.3 细胞培养、分化、转染
2.4 H19荧光原位杂交
2.5 SAHH免疫荧光染色(8孔板)
2.6 蛋白免疫印迹(Western-blot)分析
2.7 RNA提取
2.8 cDNA合成
2.9 定量实时定量荧光PCR(Quantitative Real time-qPCR)
2.10 DNA提取
2.11 质粒构建(pH19-S1,pH19,pS1)
2.12 亲和纯化含H19的核糖核蛋白复合体以及蛋白鉴定
2.13 RIP+蛋白复合体免疫共沉淀 Protein complex immunoprecipitation(Co-IP)
2.14 甲基化特异性PCR(Methylation-specific PCR,MSP)
2.15 细胞内SAHH活性测定
2.16 染色质免疫共沉淀(Chromatin immunoprecipitation,ChIP)
2.17 全基因组甲基化测序
2.18 RNA-Seq及数据分析
2.19 凝胶电泳迁移率(Electrophoretic mobility shift analysis,EMSA)
2.20 体外rSAHH活性测定(In vitro rSAHH activity assays)
2.21 统计方法
3 技术路线
3.1 IncRNA H19与SAHH的相互作用
3.2 H19/SAHH/DNMT3B信号通路影响甲基化
4 结果
4.1 含H19的核糖核蛋白复合体内检测到SAHH
4.2 敲低H19上调SAHH的活性和DNMT3B介导的CME甲基化
4.3 CME甲基化升高可促进Nctc1的转录
4.4 SAHH介导H19依赖的CME甲基化
4.5 H19富含U的区域能与SAHH结合并抑制其水解活性
4.6 H19依赖的SAHH活性抑制引起全基因组水平的甲基化水平改变
5 讨论
6 结论
参考文献
综述 长链非编码RNA在肿瘤中的作用机制研究进展及相关数据库介绍
作者简历及在学习期间所取得的科研成果
浙江大学;