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摘要
第一章文献综述
§前言
§1 liposome的组成、结构和种类
§1.1 liposome的组成和结构
§1.2 Liposome种类
§2 Liposome的制备
§2.1磷脂薄膜水合法(thin film method)
§2.2脱水—再水合法
§2.3前脂质体法(Proliposome method)
§2.4逆相蒸发法(reverse phase evaporation techniques)
§2.5硫酸铵梯度法
§2.6超临界反相蒸发法
§2.7注入法
§3 Liposome与细胞的作用机制
§3.1脂质体与细胞之间的融合作用
§3.2细胞对脂质体的胞吞作用
§4.脂质体在体内的稳定性及RES对脂质体的快速清除
§4.1组织的解剖学屏障对脂质体吸收的影响
§4.2脂质体的稳定性及RES对脂质体的快速清除
§5脂质体的靶向性
§5.1被动靶向性
§5.2脂质体粒径对靶向性的影响
§5.3免疫脂质体(immuno-liposomes)
§5.4受体脂质体
§5.5磁性脂质体(magnetic liposomes or magnetoliposomes)
§5.6特殊靶向脂质体
§6长循环脂质体
§6.1长循环脂质体的发展
§6.2长循环脂质体的物理特性(Physical properties)
§6.3长循环脂质体的药物动力学特征
References
第二章 脂质体的制备以及特性分析
§2.1引言
§2.2试验部分
§2.2.1试剂与材料
§2.2.2主要仪器设备
§2.2.3磁流体的制备
§2.2.4逆相蒸发法(reverse phase evaporation techniques)
§2.2.5薄膜水合法(thin film method)
§2.2.6纳米脂质体
§2.2.7前脂质体法(Proliposome method)
§2.2.8脂质体包封率的测定
§2.3结果与分析
§2.3.1纳米磁流体的制备
§2.3.2脂质体的制备
§2.3.3 Cu,ZN-SOD的包封率测试
§2.3.4脂质体的稳定性
§2.3.5磁性脂质体在强磁场作用下的反应
§2.4结论
References
第三章 SOD磁靶向脂质体在细胞中的分布以及对细胞氧化压力的影响
§3.1引言
§3.2试验部分
§3.2.1试剂和材料
§3.2.2主要仪器设备
§3.2.3 FITC标记Cu,ZN-SOD
§3.2.4双荧光标记SOD-MAG-LIP的制备
§3.2.5细胞培养
§3.2.6脂质体载体模型的检验
§3.2.7 SOD-MAG-LIP对HEPG2细胞氧化压力的影响
§3.2.8 SOD-MAG-LIP作用细胞后细胞的活性测定
§3.2.9 SOD-MAG-LIP在体外与细胞作用的效果分析
§3.3结果与分析
§3.3.1 FITC-Rhodamine B标记脂质体孵育SPC-A-1细胞检验脂质体载体模型
§3.3.2 SOD-MAG-LIP对HepG2细胞氧化压力的影响
§3.3.3 SOD-MAG-LIP的抗肿瘤细胞能力分析
§3.3.4 SOD磁靶向脂质体在磁场中对细胞作用的效果分析
§3.4结论
References
第四章SOD磁靶向脂质体活体靶向性分析
§4.1引言
§4.2试验部分
§4.2.1试剂和材料
§4.2.2主要仪器设备
§4.2.3 FITC-Rh B-MGA-LIP的制备
§4.2.4强磁场诱导下磁性脂质体在小鼠两肾脏中的分布不平衡性
§4.3结果与分析
§4.4结论
References
第五章 结语与展望
References
致谢
