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【6h】

雷帕霉素经JAK2/STAT3通路诱导HGF处理的人晶状体上皮细胞凋亡的研究

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目录

声明

摘要

缩略语/符号说明

前言

研究现状、成果

研究目的、方法

实验材料和方法

1.实验材料

1.1 实验细胞

1.2 主要试剂及溶液配制

1.3 主要实验器材及仪器

2.实验方法

2.1 人晶状体上皮细胞株HLE-B3的培养

2.2 制作HLE-B3细胞爬片

2.3 实验分组

2.4 细胞增殖活力检测

2.5 HLE-B3细胞病理形态学观察

2.6 LIVE/DEAD细胞活性检测

2.7 Annexin V-FITC/PI双染法流式细胞术

2.8 RNA干扰和瞬时转染

2.9 蛋白印迹分析

2.10 细胞凋亡ELISA检测

3.统计学方法

结果

1.RAPA对HGF(+)LECs细胞增殖的影响

1.1 细胞增殖活力检测

1.2 HLE-B3细胞病理形态学观察

2.RAPA对NSF(+)LECs细胞凋亡的影响

2.1 LIVE/DEAD细胞活性检测

2.2 Annexin V-FITC/PI双染法流式细胞术细胞调亡检测

3.JAK2/STAT3信号通路在RAPA对HGF(+)LECs细胞凋亡中的作用

3.1 Western blot

3.2 细胞凋亡ELISA检测

讨论

1.RAPA对HGF(+)LECs细胞增生的影响

2.RAPA对HGF(+)LECs细胞凋亡的影响

3.JAK2/STAT3信号通路在RAPA诱导HGF(+)LECs细胞凋亡中的作用

结论

参考文献

发表论文和参加科研情况说明

综述 RAPA在眼科领域的研究进展

致谢

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摘要

目的:通过人肝细胞生长因子(hepatocyte growth gactor,HGF)处理人晶状体上皮细胞株HLE-B3,体外模拟后发性白内障(posterior capsule opacity,PCO)发生时晶状体上皮细胞(lens epithelial cells,LECs)所处的微环境,并用不同浓度的雷帕霉素(Rapamycin,RAPA)刺激HLE-B3,观察RAPA对HLE-B3增生、凋亡的影响,探讨RAPA影响HLE-B3的生长作用的分子机制。
  方法:
  1.培养HLE-B3:用含有10% FBS、100U/ml青霉素和100U/ml链霉素的低糖DMEM体外培养HLE-B3,并进行传代。
  2.实验分组:常规培养HLE-B3细胞系,生长至80%融合后,换用无血清DMEM培养基,分组如下:
  空白对照组:仅加入单纯DMEM,不加入RAPA或人HGF处理;
  阴性对照组(HGF组):加入终浓度为10ng/ml的人HGF;
  HGF+RAPA组:用终浓度为10ng/ml的HGF处理LECs12h后,加入不同浓度的RAPA(A组:0.1 ng/ml、B组:1ng/ml、C组:5ng/ml、D组10 ng/ml、E组20 ng/ml)干预24、48、72小时。
  3.通过CCK-8法检测RAPA对人HGF预处理的LECs(HGF(+)LECs)细胞增殖活力的影响。
  4.运用苏木精—伊红染色观察RAPA对HGF(+)LECs细胞形态结构的影响。
  5.RAPA处理细胞48h后,采用LIVE/DEAD细胞活性实验及AnnexinⅤ/PI双染色流式法检测RAPA对HGF(+)LECs细胞凋亡的作用。
  6.运用蛋白印迹(Western blot)分析检测研究0ng/ml、5ng/ml RAPA处理HGF(+)LECs48h后,RAPA对HLE-B3细胞的酪氨酸激酶JAK2(Januskinase-2)、信号转导和转录活化因子3(Signal transducer and activator oftranscription-3,STAT3)蛋白磷酸化的作用。
  7.用Lipofectamine2000作为转染试剂,将STAT3 siRNA或者阴性对照siRNA转染到HLE-B3中,然后用终浓度浓度为10ng/ml的人HGF处理12h,再加入终浓度为5ng/ml的RAPA处理12h。用Western blot和细胞凋亡ELISA法,观察STAT3表达抑制在RAPA对HGF(+)LECs细胞凋亡中的作用。细胞分组为:A组:阴性siRNA转染组、HGF10ng/ml处理组;B组:阴性siRNA转染组、HGF10ng/ml和RAPA5ng/ml处理组;C组为:STAT3 siRNA转染、HGF10ng/m处理组;D组:STAT3 siRNA转染、HGF10ng/ml和RAPA5ng/ml处理组。
  结果:
  1.RAPA对HGF(+) LECs细胞增殖的影响
  CCK-8:测得的HGF组增生值(A),与相应时段的对照组相比,差异均有统计学意义(P1=0.022,P2=0.00,P3=0.00),提示10ng/ml人HGF能有效促进LECs增殖。在HGF+RAPA组中,运用Probit回归分析法得出:24hIC50=30.38ng/ml,48h IC50=15.820ng/ml,72h IC50=6.247ng/ml。随着RAPA药物浓度的升高,刺激时间的延长,A值逐渐降低,同时细胞生长抑制率逐渐升高。
  HE显示:HGF组(RAPA0ng/ml),其细胞体积较大、而且饱满,细胞质染色均匀,细胞核呈圆形。HGF+RAPA组细胞表现出体积变小,染色质边集,核深染、固缩等特征性调亡改变,且随着浓度的增加,及培养时间的增长,细胞这种形态变化越明显,且细胞数越少。
  2.RAPA对HGF(+) LECs细胞凋亡的影响
  Live/Dead荧光双染色法显示:HGF+RAPA组(5ng/ml、10ng/ml)细胞死亡率分别为(18.89±2.89)%、(32.61±2.41)%,与HGF组(2.50±0.90)%相比,差异均具有统计学意义(P=0.001、0.00)。
  AnnexinⅤ-FITC/PI双染法流式细胞术显示:细胞凋亡的比率随RAPA浓度的增加而增高,细胞总凋亡率(Q2+Q3)分别为(25.03±1.68)%、(63.27±4.78)%、(72.17±3.97)%(HGF+RAPA1ng/m、5ng/m、10ng/m组),与HGF组(2.48±0.45)%相比,差异具有统计学意义(P<0.05)。这些数据表明,RAPA不仅抑制HGF(+)LECs的增殖,而且还诱导了LECs的凋亡。
  3.JAK2/STAT3信号通路在RAPA对HGF(+) LECs细胞凋亡中的作用
  RAPA处理后,p-JAK2、p-STAT3Tyr705及p-STAT3Ser727蛋白相对表达量显著下降(P=0.001,0.00,0.00<0.05),分别是相应对照组的0.28、0.14、0.13倍。
  用siRNA沉默HLE-B3细胞STAT3基因后,与转染阴性组相比,STAT3 siRNA转染到LECs细胞导致STAT3蛋白表达显著下降。与A组(0.28±0.05)相比,B组(1.64±0.06)、C组(2.09±0.07)、D组(2.57±0.08)凋亡增加,差异具有统计学意义(P<0.05)。
  结论:
  1.人HGF能有效促进HLE-B3增生,可以体外模拟PCO发生的微环境。
  2.RAPA不仅抑制HGF(+)LECs的增殖,还诱导了LECs的凋亡,这种作用且呈时间及浓度依赖性。
  3.RAPA可以显著降低HGF(+)LECs细胞中JAK2及其下游基因STAT3的磷酸化。沉默STAT3加速了HGF(+)LECs的凋亡,表明STAT3基因在LECs细胞凋亡中发挥重要作用;此外,相较于单独转染STAT3 siRNA处理细胞,与RAPA联合处理可以增加HGF(+) LECs的凋亡。
  综上,RAPA可以通过下调JAK2/STAT3信号通路抑制HGF(+) LECs的增殖以及诱导HGF(+)LECs凋亡。

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