声明
摘要
第一章 引言
第一节 胚胎干细胞的研究进展
1.1.1 胚胎干细胞的建系与定义
1.1.2 胚胎干细胞的应用前景、遇到的问题及解决办法
1.1.3 胚胎干细胞多能性的维持及分子调控机制
1.1.4 胚胎干细胞的异质性
第二节 端粒
1.2.1 端粒结构与功能
1.2.2 端粒酶
1.2.3 端粒异常与疾病
1.2.4 端粒长度的调控机制
1.2.5 端粒与胚胎干细胞
1.2.6 端粒与肿瘤
第三节 本研究的目的和意义
第二章 Rif1维持胚胎干细胞中端粒长度稳定、多能性和自我更新能力
第一节 导言
第二节 实验材料与方法
2.2.1 实验材料
2.2.2 载体构建
2.2.3 实验细胞系的建立
2.2.4 短期及长期Rif1干扰细胞的基因表达谱分析
2.2.5 实时定量荧光PCR检测基因表达
2.2.6 Western blot
2.2.7 免疫荧光实验
2.2.8 端粒定量荧光原位杂交(Q-FISH)检测端粒长度
2.2.9 定量PCR方法检测不同细胞的端粒长度(T/S ratio)
2.2.10 染色单体定向荧光原位杂交(CO-FISH)
2.2.11 端粒酶活性分析
2.2.12 端粒与损伤基因共定位
2.2.13 细胞周期检测
2.2.14 细胞衰老检测
2.2.15 细胞增殖检测
2.2.16 细胞分化检测细胞的多能性
2.2.17 嵌合体老鼠及胚胎注射实验检测E12.5胚胎的荧光(EGFP)
2.2.18 数据分析
第三节 实验结果
2.3.1 Rif1在ESC及睾丸中高表达
2.3.2 稳定干扰Rif1后影响ES细胞的增殖、分化能力及多能性
2.3.3 Rif1负向调节Zscan4等2细胞基因及Zscan4+细胞比例
2.3.4 稳定干扰Rif1引起端粒长度延长、端粒融合及端粒重组频率升高
2.3.5 稳定干扰Rif1不引起ES细胞中端粒的损伤
2.3.6 在稳定干扰Rif1的细胞中再次干扰Zscan4后能部分恢复细胞增殖能力、异常延长的端粒及高频率的T-SCE
2.3.7 Zscan4 KD能够部分恢复Rif1 KD引起的早期胚胎发育缺陷
第四节 讨论
第三章 Rif1通过维持异染色质沉默来调节Zscan4及端粒长度
第一节 导言
第二节 实验材料及方法
3.2.1 实验材料
3.2.2 载体构建
3.2.3 启动子活性分析
3.2.4 流式细胞仪检测Zscan4+比例
3.2.5 Western blot
3.2.6 免疫荧光
3.2.7 ChIP-qPCR及数据分析
3.2.8 ChIP-seq及数据分析
3.2.9 免疫共沉淀(Co-IP)
第三节 实验结果
3.3.1 Rif1干扰后激活Zscan4启动子活性及Zscan4通过自身的SCAN结构域激活自身的启动子活性
3.3.2 Rif1结合于端粒亚端粒区域
3.3.3 Rif1干扰后H3K9me3的蛋白水平下降及在Zscan4启动子处结合量下降
3.3.4 Rif1干扰后H3K9me3在基因组水平的结合大大降低
3.3.5 Rif1通过稳定亚端粒异染色质区域H3K9甲基化水平来调控Zscan4的表达及端粒长度
3.3.6 Rif1通过表观遗传调节Zscan4及端粒的模式图
第四节 讨论
第四章 Tbx3通过表观遗传途径调节小鼠胚胎干细胞中的端粒长度
第一节 导言
第二节 实验材料与方法
4.2.1 实验材料
4.2.2 载体构建
4.2.3 细胞系的构建
4.2.4 实时定量荧光PCR检测基因表达
4.2.5 Western blot
4.2.6 免疫荧光实验
4.2.7 体外三胚层分化实验
4.2.8 流式细胞仪检测Zscan4+的比例
4.2.9 Zscan4启动子活性实验
4.2.10 端粒定量荧光原位杂交(Q-FISH)检测端粒长度
4.2.11 定量PCR方法检测不同细胞的端粒长度(T/S ratio)
4.2.12 细胞周期检测
4.2.13 流式细胞仪检测基因组甲基化水平
4.2.14 ChIP-qPCR及数据分析
第三节 实验结果
4.3.1 Tbx3是一个新的ES 2细胞状态调节因子
4.3.2 Tbx3 OE稳定细胞系的构建
4.3.3 Tbx3 OE不影响ES细胞的多能性及体外分化能力
4.3.4 Tbx3 OE延长端粒长度
4.3.5 Tbx3 OE激活Zscan4的表达及启动子活性
4.3.6 Tbx3不直接结合于Zscan4基因的启动子
4.3.7 Tbx3通过调节基因组DNA甲基化水平来调节Zscan4的表达
第四节 讨论
第五章 组蛋白乙酰化水平调节小鼠胚胎干细胞的端粒长度
第一节 导言
第二节 实验材料与方法
5.2.1 实验材料
5.2.2 实时定量荧光PCR检测基因表达
5.2.3 Western blot
5.2.4 流式细胞仪检测Zscan4+的比例
5.2.5 Zscan4启动子活性实验
5.2.6 端粒定量荧光原位杂交(Q-FISH)检测端粒长度
第三节 实验结果
5.3.1 组蛋白乙酰化水平调控端粒长度的变化
5.3.2 在Terc-/- G1 ESC中组蛋白乙酰化水平也调控端粒长度的变化
5.3.3 组蛋白乙酰化水平通过调节Zscan4等2细胞基因的表达调节端粒长度
第四节 讨论
第六章 端粒酶缺失的小鼠胚胎干细胞及人肿瘤细胞中维持端粒长度稳定的分子机制
第一节 导言
第二节 实验材料与方法
6.2.1 实验材料
6.2.2 载体构建
6.2.3 实验用细胞系的构建
6.2.4 实时定量荧光PCR检测基因表达
6.2.5 Western blot
6.2.6 免疫荧光实验及数据统计分析
6.2.7 细胞周期检测
6.2.8 细胞增殖能力检测
6.2.9 Zscan4启动子活性实验
6.2.10 端粒定量荧光原位杂交(Q-FISH)检测端粒长度
6.2.11 定量PCR方法检测不同细胞的端粒长度(T/S ratio)
6.2.12 TRF检测端粒长度
6.2.13 流式细胞仪检测基因组甲基化水平
6.2.14 亚硫酸盐测序
第三节 实验结果
6.3.1 G4 Terc-/-ESC中端粒维持稳定的长度而WT ESC中端粒在培养过程中是延长的
6.3.2 端粒大为缩短的G4 Terc-/-ESC中增殖能力下降
6.3.3 Zscan4在G4 Terc-/-ESC中高表达
6.3.4 在G4 Terc-/-ESC中干扰Zscan4后端粒缩短及生长变慢
6.3.5 G4 Terc-/-ESC中亚端粒区域甲基化水平下降
6.3.6 G4 Terc-/-ESC中H3K9me3水平下降、AcH3水平升高
6.3.7 在WT ESC用小分子药物抑制剂介导DNA及H3K9me3的下降能激活Zscan4的表达及延长端粒
6.3.8 人ZSCAN4基因同样能维持端粒酶缺失的人肿瘤细胞的端粒长度
6.3.9 人端粒酶缺失的肿瘤细胞利用与G4 Terc-/-相似的机制来激活ZSCAN4基因的表达
第四节 讨论
第七章 结论与展望
附录
参考文献
致谢
个人简历 在学期间发表的学术论文及研究成果