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壳寡糖对幼建鲤生产性能和非特异性免疫功能的影响

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摘要

1 前言

2 文献综述

2.1 壳寡糖的理化性质

2.2 壳寡糖的生物学活性

2.2.1 壳寡糖对动物生产性能的影响

2.2.2 壳寡糖对动物非特异性免疫功能的影响

2.2.3 壳寡糖对动物抗氧化能力的影响

2.2.4 壳寡糖对动物脂肪代谢的影响

2.2.5 壳寡糖对动物肠道免疫的影响

2.3 饲料添加剂在抗嗜水气单胞菌感染上的应用

2.4 壳寡糖对水产动物中的应用及适宜添加水平

2.5 存在的问题

3 研究目的和意义

3.1 本研究的目的

3.2 本研究的意义

4 试验方案

4.1 试验动物与饲料

4.1.1 试验鱼的选择与分组

4.1.2 试验饲料

4.2 试验设计

4.2.1 饲养管理

4.2.2 样品采集

4.2.3 生产性能指标测定

4.2.4 部分脂肪代谢指标测定

4.2.5 非特异性免疫功能指标测定

4.2.6 抗氧化指标测定

4.2.7 显微结构观察

4.2.8 肠道茵群检测

4.2.9 攻毒试验

4.3 数据处理

5 试验结果与分析

5.1 添加不同剂量壳寡糖对幼建鲤生产性能的影响

5.1.1 添加不同剂量壳寡糖对幼建鲤生长性能的影响

5.1.2 添加不同剂量壳寡糖对幼建鲤部分肌肉品质指标的影响

5.1.3 添加不同剂量壳寡糖对幼建鲤器官发育的影响

5.2 添加不同剂量壳寡糖对幼建鲤部分脂肪代谢指标的影响

5.3 添加不同剂量壳寡糖对幼建鲤非特异性免疫功能的影响

5.4 添加不同剂量壳寡糖对幼建鲤抗氧化能力的影响

5.5 添加不同剂量壳寡糖对幼建鲤肠道组织结构的影响

5.6 添加不同剂量壳寡糖对幼建鲤肠道菌群变化的影响

5.7 壳寡糖对幼建鲤攻毒试验后抗病力的影响

5.7.1 壳寡糖对攻毒后幼建鲤免疫保护率的影响

5.7.2 壳寡糖对攻毒后幼建鲤头肾组织学变化的影响

5.7.3 壳寡糖对攻毒后幼建鲤脾脏组织学变化的影响

5.7.4 壳寡糖对攻毒后幼建鲤肠道组织学变化的影响

5.7.4 壳寡糖对攻毒后幼建鲤肠道菌群的影响

5.8 相关分析和回归分析

5.8.1 相关分析

5.8.2 回归分析

6 讨论

6.1 壳寡糖对幼建鲤生产性能的影响

6.2 壳寡糖对幼建鲤部分脂肪代谢指标的影响

6.3 壳寡糖对幼建鲤非特异性免疫功能及抗病力的影响

6.4 壳寡糖对幼建鲤肠道菌群的影响

6.5 幼建鲤饲料对壳寡糖的适宜添加量

7 结论

参考文献

致谢

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附图

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摘要

本试验拟探究壳寡糖对幼建鲤生产性能、脂肪代谢、非特异性免疫功能及肠道菌群的影响。选择初始体重为(8.78+0.38)g的健康幼建鲤225尾,随机分为5组,每组3个重复,每个重复15尾鱼,分别饲喂壳寡糖添加量为0(对照组)、0.30%、0.60%、0.90%和1.50%的饲料。饲养试验周期为80 d,试验结束后,分别对幼建鲤进行指标测试和攻毒试验。主要结果如下:
  (1)壳寡糖可以提升幼建鲤的WGR、SGR和肝胰脏指数(P>0.05),对肠长指数、肠体指数、肠皱襞高度、肠皱襞密度和肠壁厚度均有显著提高(P<0.05)。WGR与前、中、后肠皱襞高度呈显著或极显著正相关(r1=+0.834,P<0.05; r2=+0.973,P<0.01;r3=+0.868,P<0.05),表明壳寡糖促增重作用可能与其促进肠道发育有关;同时,壳寡糖能极显著的降低幼建鲤肌肉中粗脂肪和失水率(P<0.01),对肌肉MDA含量也具有一定的改善。
  (2)壳寡糖显著降低幼建鲤血浆中TG和TCH的含量(P<0.05),极显著提高幼建鲤血浆中HDL-C的含量(P<0.01)。粗脂肪与血浆HDL-C和肌肉MDA呈显著或极显著相关(r1=-0.928,P<0.05; r2=+0.979,P<0.01),说明全鱼脂肪含量可能与血浆中HDL-C及肌肉中MDA的含量有关。
  (3)壳寡糖极显著提高幼建鲤头肾指数、白细胞吞噬率、白细胞吞噬指数、红细胞吞噬率、红细胞吞噬指数、血浆和肝胰脏T-AOC(P<0.01),极显著降低血浆和肝胰脏中MDA的含量(P<0.01)。白细胞吞噬率与肝胰脏T-AOC、血浆T-AOC和血浆MDA含量呈显著或极显著相关(r1=+0.825,P<0.05;r2=+0.722,P<0.05;r3=-0.968,P<0.01),表明壳寡糖可能是通过提高幼建鲤的抗氧化能力,进而提高吞噬细胞的非特异性免疫能力。
  (4)壳寡糖显著或极显著增加幼建鲤前、中、后肠道内双歧杆菌和乳酸杆菌数量(P<0.05或P<0.01),极显著的降低大肠杆菌的数量(P<0.01)。前、中、后肠双歧杆菌与大肠杆菌、乳酸杆菌呈显著或极显著相关(r1=-0.958,P<0.01; r2=+0.948,P<0.05; r3=-0.917, P<0.05; r4=+0.950,P<0.01;r5=-0.942,P<0.05; r6=+0.935,P<0.05)。说明壳寡糖抑制肠道内有害菌群生长可能与有益菌群的增殖有关。
  (5)壳寡糖能提高攻毒后幼建鲤的存活率,减少发病率。组织切片观察显示,壳寡糖对攻毒后幼建鲤头肾肾间质充血、肾间细胞增生、肾小管毛细血管充血和扩展;脾脏红髓和白髓结构破坏、脾间充血、淋巴细胞缺失;肠粘膜上皮细胞大量脱落、杯状细胞破坏、肠皱襞粘合等现象均有一定的缓解作用。同时,壳寡糖还可以显著降低攻毒后幼建鲤肠道内嗜水气单胞菌的数量(P<0.05)。存活率与脾脏指数、头肾指数、白细胞吞噬率、大肠杆菌、双歧杆菌、乳酸杆菌和嗜水气单胞菌呈显著或极显著相关(r1=+0.925,P<0.05; r2=+0.869,P<0.05; r3=+0.887,P<0.05; r4=-0.889,P<0.05; r5=+0.987,P<0.01;r6=+0.883,P<0.05; r7=-0.971,P<0.01),说明壳寡糖增强幼建鲤抗病力与非特异性免疫和肠道免疫有关。
  综上所述,饲料中添加壳寡糖可以提高幼建鲤的生产性能,增强非特异性免疫能力,影响部分脂肪代谢指标;同时,壳寡糖还能改善幼建鲤肠道菌群的结构,提高幼建鲤对嗜水气单胞菌的抗病力。在本试验条件下,通过线性回归分析,以WGR为标识(Y=-20.865x2+40.899x+102.31,R2=0.926,P>0.05,X极值=0.9801),幼建鲤饲料中壳寡糖的适宜添加量为0.9801%。

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