声明
摘要
英文缩略语
第1章 绪论
1.1 力学因素与血管重建
1.1.1 低切应力与血管重建
1.1.2 张应变与血管重建
1.2 血管重建中内皮细胞与平滑肌细胞的相互交流
1.3 低切应力诱导血管重建的蛋白质组学和信号转导网络预测
1.3.1 低切应力条件下体外培养血管的蛋白质表达谱差异
1.3.2 本文的主要研究思路
第2章 低切应力条件下PDGF-BB和TGF-β1在血管平滑肌细胞和内皮细胞相互交流中的作用及其机制
2.1 引言
2.2 实验仪器与材料
2.2.1 主要的溶剂溶液成分及配制
2.2.2 实验动物及实验材料
2.2.3 实验仪器
2.3 实验方法
2.3.1 大鼠胸主动脉ECs和VsMCs原代培养、传代培养和鉴定
2.3.2 内皮细胞和血管平滑肌细胞联合培养和平行平板流动腔系统
2.3.3 细胞迁移检测(Transwell法)
2.3.4 细胞增殖检测(BrdU掺入比色法)
2.3.5 重组蛋白刺激和中和抗体封闭实验
2.3.6 siRNA干扰
2.3.7 蛋白免疫印迹(Western blotting)
2.3.8 RT-PCR
2.3.9 酶联免疫吸附实验(ELISA)
2.3.10 统计学分析
2.4 结果
2.4.1 低切应力条件下联合培养细胞PDGF-BB、TGF-β1、LaminA、LOX和磷酸化ERK1/2表达的变化
2.4.2 低切应力条件下细胞迁移和增殖的变化
2.4.3 重组PDGF-BB和TGF-β1对细胞Lamin A,LOX,磷酸化ERK1/2表达及迁移、增殖的影响
2.4.4 siRNA干扰对细胞PDGF-BB、TGF-βB、Lamin A、LOX和磷酸化ERK1/2表达以及细胞迁移和增殖的影响
2.4.5 联合培养VSMCs通过PDGF-BB和TGF-β1正反馈调控低切应力诱导的ECs迁移和增殖
2.5 讨论
第3章 高张应变条件下血管平滑肌细胞与内皮细胞相互交流对细胞Rab28表达的影响及其机制
3.1 引言
3.2 实验仪器与材料
3.2.1 主要的试剂溶液成分及配制
3.2.2 实验动物和抗体
3.2.3 实验仪器
3.2.4 引物和小RNA
3.3 实验方法
3.3.1 高血压大鼠模型的建立
3.3.2 大鼠颈总动脉取材、原位增殖与凋亡测定、Western blotting
3.3.3 大鼠胸主动脉ECs和VSMCs原代培养、传代培养和鉴定
3.3.4 血管细胞的周期性张应变加载
3.3.5 细胞增殖、凋亡和迁移检测、Western blotting
3.3.6 条件培养基的制备和使用
3.3.7 小RNA干扰
3.3.8 细胞内囊泡染色
3.3.9 免疫细胞化学染色
3.3.10 新生RNA标记
3.3.11 免疫共沉淀
3.3.12 统计学分析
3.4 结果
3.4.1 高血压大鼠血管组织的Rab28表达及血管细胞的增殖与凋亡
3.4.2 高张应变条件下ECs和VSMCs的Rab28表达
3.4.3 VSMCs与ECs相互交流对细胞Rab28表达的影响
3.4.4 VSMCs条件培养液中血管紧张素Ⅱ的检测和外源性Ang-Ⅱ上调ECs的Rab28表达
3.4.5 siRNA干扰ECs的Rab28抑制增殖,诱导其凋亡和迁移;抑制VSMCs迁移
3.4.6 Rab28在ECs中的定位与分布
3.4.7 Rab28与NF-κB活化的关系
3.4.8 Rab28与NF-κB免疫共沉淀
3.5 讨论
全文小结
文献综述
参考文献
致谢
攻读博士学位期间已发表的学术论文