声明
第一章 文献综述
1.1 小麦杂种优势和雄性不育系的研究
1.2.1 小麦 K型雄性不育系的来源及特点
1.2.2 小麦 K 型不育系育性恢复的配子传递研究
1.2.3 小麦 K 型不育系育性恢复机理的研究
1.2.4 小麦光温敏不育系的研究与K型小麦温敏不育系KTM3315A
1.3 分子标记在小麦育性恢复基因上的应用
1.4 高通量转录组测序与花药发育研究
1.5 研究的目的意义及技术路线
1.5.1 研究的目的意义
1.5.2 技术路线
第二章 K-TCMS小麦KTM3315A育性恢复基因Rfk1-1B(CS)的分子作图
2.1 试验材料
2.1.1 主要试验材料
2.1.2 材料种植与创建杂交组合
2.1.3 挂牌、套袋与取材
2.2 试验方法
2.2.1 KTM3315A、中国春和(KTM3315A/中国春)F1育性的生物学观察
2.2.2 KTM3315A//中国春/TM3315B的花粉粒I2-KI染色鉴定
2.2.3 BC1F1群体的结实率育性调查
2.2.4 亲本及其BC1F1群体基因组DNA的提取、检测及混池构建
2.2.5 育性恢复基因Rfk1-1B(CS)的分子作图
2.3.1 花药及小孢子的形态学及扫描电镜观察结果
2.3.2 BC1F1群体的遗传分析
2.3.3 育性恢复基因Rfk1-1B(CS)的遗传图谱构建
2.4 讨论
2.4.1 KTM3315A发生败育的形态学特点
2.4.2 K型不育系育性恢复的遗传机制
2.4.3 对K型不育系恢复基因的定位
第三章 K-TCMS小麦育性恢复相关代谢通路及候选基因的转录组分析
3.1 试验材料
3.2 试验方法
3.2.1 表型特征和显微观察
3.2.2 RNA提取、cDNA文库构建及转录组深层测序
3.2.3 基因组比对和序列组装
3.2.4 差异表达基因的生物信息学分析
3.2.5 总糖含量测定
3.2.6 类黄酮含量测定
3.2.7 差异表达基因的实时荧光定量PCR检测(qRT-PCR)
3.3 试验结果
3.3.1 表型特征的显微观察
3.3.2 转录组测序和基因组比对
3.3.3 差异表达基因的鉴定
3.3.4 差异表达基因的功能分类
3.3.5 鉴定与育性恢复相关的转录因子
3.3.6 碳水化合物代谢和苯丙烷类生物合成途径参与了Aegilops kotschyi细
3.3.7 可溶性糖和类黄酮的测定
3.3.8 转录组测序结果的qRT-PCR验证
3.4 讨论
3.4.1 碳水化合物代谢影响细胞壁发育、花药生长和育性
3.4.2 黄酮类化合物对可育花药的发育至关重要
3.4.3 参与调控花粉发育和雄性育性的转录因子
结论
参考文献
附录
致谢
作者简介