声明
摘要
1 文献综述
1.1 非生物胁迫
1.1.1 缺水胁迫
1.1.2 低温胁迫
1.2 基因表达与调控
1.2.1 组成型表达
1.2.2 诱导型表达
1.2.3 组织特异性表达
1.3 基因表达的检测方法
1.3.1 转录水平检测
1.3.2 翻译水平检测-Western blot
1.3.3 产物水平检测
1.4 植物PEAMT基因及启动子
1.4.1 PEAMT基因
1.4.2 PEAMT基因的表达特性
1.4.3 PEAMT启动子
1.5 辽宁碱蓬和转pP-GUS烟草
1.6 本研究的目的和意义
2 SIPEAMT基因在辽宁碱蓬中表达特性分析
2.1 实验材料
2.1.1 植物材料
2.1.2 试剂
2.1.3 培养基
2.1.4 仪器设备
2.1.5 引物
2.2 实验方法
2.2.1 辽宁碱蓬幼苗培养
2.2.2 非生物胁迫处理
2.2.3 辽宁碱蓬总RNA提取及检测
2.2.4 引物设计
2.2.5 去除基因组DNA及反转录反应
2.2.6 半定量PCR检测
2.2.7 实时荧光定量PCR检测
2.3 结果与分析
2.3.1 辽宁碱蓬总RNA的提取及检测
2.3.2 非胁迫条件下SIPEAMT基因在辽宁碱蓬不同器官中的表达
2.3.3 盐胁迫下SIPEAMT基因在辽宁碱蓬中的表达特性
2.3.4 冷胁迫下SIPEAMT基因在辽宁碱蓬中的表达特性
2.3.5 干旱胁迫下SIPEAMT基因在辽宁碱蓬中的表达特性
2.3.6 ABA胁迫下SIPEAMT基因在辽宁碱蓬中的表达特性
2.3.7 实时荧光定量RT-PCR曲线分析
2.4 讨论
2.4.1 非胁迫条件下SIPEAMT基因在辽宁碱蓬各个器官中的表达
2.4.2 盐胁迫下SIPEAMT基因在辽宁碱蓬中的表达特性
2.4.3 冷胁迫下SIPEAMT基因在辽宁碱蓬中的表达特性
2.4.4 干旱胁迫下SIPEAMT基因在辽宁碱蓬中的表达特性
2.4.5 ABA胁迫下SIPEAMT基因在辽宁碱蓬中的表达特性
2.5 小结
3 GUS基因在转pP-GUS烟草中表达特性分析
3.1 实验材料
3.1.1 植物材料
3.1.2 实验试剂
3.1.3 培养基
3.1.4 仪器设备
3.1.5 引物
3.2 实验方法
3.2.1 转pP-GUS烟草培养
3.2.2 非生物胁迫处理
3.2.3 转pP-GUS烟草总RNA提取及检测
3.2.4 引物设计
3.2.5 去除基因组DNA及反转录反应
3.2.6 半定量PCR检测
3.2.7 实时荧光定量PCR检测
3.3 结果与分析
3.3.1 pP-GUS烟草总RNA的提取及检测
3.3.2 非胁迫条件下GUS基因在转pP-GUS烟草各器官中的表达
3.3.3 盐胁迫下GUS基因在转pP-GUS烟草中的表达特性
3.3.4 冷胁迫下GUS基因在转pP-GUS烟草中的表达特性
3.3.5 干旱胁迫下GUS基因在转pP-GUS烟草中的表达特性
3.3.6 ABA胁迫下GUS基因在转pP-GUS烟草中的表达特性
3.3.7 实时荧光定量RT-PCR曲线分析
3.4 讨论
3.5 小结
结论
参考文献
附录A MS培养基配方
附录B DNA Maker
附录C 序列
攻读硕士学位期间发表学术论文情况
致谢