文摘
英文文摘
声明
引言
1文献综述
1.1脐血造血干/祖细胞
1.1.1造血干/祖细胞的定义
1.1.2造血干/祖细胞的生物学特征
1.1.3脐血造血干/祖细胞的特点和应用
1.2低温保存
1.2.1低温保存技术的发展
1.2.2低温损伤机理及其假说
1.2.3冷冻保护剂
1.2.4玻璃化技术
1.2.5造血干细胞的低温保存
1.2.6本文工作思路及主要内容
2脐血来源的造血干/祖细胞分离
2.1实验材料
2.1.1脐血来源
2.1.2实验药品与装置
2.2实验方法
2.2.1实验试剂配制
2.2.2造血干/祖细胞的分离
2.2.3台盼蓝拒染法检测细胞活率
2.2.4单个有核细胞短期静态培养
2.3结果与讨论
3玻璃化冷冻对造血干/祖细胞的活率和生物学特征的影响
3.1实验材料
3.1.1细胞来源
3.1.2实验仪器与药品
3.2实验方法
3.2.1台盼蓝拒染法检测细胞活率
3.2.2检测玻璃化冷冻过程各操作后的细胞活率
3.2.3流式细胞术检测CD34+细胞数目
3.2.4冷冻复苏后细胞生长曲线的测定
3.2.5集落培养
3.3结果与讨论
3.3.1玻璃化冷冻后单个有核细胞的回收率
3.3.2玻璃化冷冻过程各操作环节后单个有核细胞的回收率
3.3.3玻璃化冷冻后CD34+细胞的回收率
3.3.4冷冻复苏后细胞的生长曲线
3.3.5玻璃化冷冻后造血干/祖细胞的集落形成能力
4玻璃化冷冻方案导入过程中细胞体积的皱缩与恢复
4.1实验材料
4.2实验方法
4.2.1联合玻璃化保护剂的配制
4.2.2联合玻璃化保护剂渗透压的测定
4.2.3单个有核细胞原始体积的测定
4.2.4保护剂导入过程不同时间细胞的体积测定
4.3结果与讨论
4.3.1联合玻璃化保护剂的渗透压
4.3.2单个有核细胞原始体积
4.3.3平衡时间为90s的分步导入过程中细胞体积变化
5导入过程平衡时间的优化设计
5.1实验材料
5.2实验方法
5.2.1第一步导入联合玻璃化保护剂后细胞体积变化的测定
5.2.2第一步导入联合玻璃化保护剂后细胞活率的检测
5.2.3第二步导入联合玻璃化保护剂后细胞体积变化的测定
5.2.4第二步导入联合玻璃化保护剂后细胞活率的检测
5.2.5后续的导入过程研究
5.3结果与讨论
5.3.1第一步导入平衡时间的确定
5.3.2第二步导入平衡时间的确定
5.3.3第三步导入平衡时间的确定
5.3.4第四步导入平衡时间的确定
5.3.5第五步导入平衡时间的确定
结论
参考文献
附录A单个有核细胞尺寸统计
攻读硕士学位期间发表学术论文情况
致谢