声明
摘要
1 前言
1.1 沙门氏菌鞭毛蛋白的概况
1.1.1 鞭毛蛋白的结构与功能
1.1.2 鞭毛蛋白与天然免疫
1.1.3 鞭毛蛋白与获得性免疫
1.2 沙门氏菌鞭毛蛋白的佐剂作用
1.2.1 鞭毛蛋白作为佐剂的研究进展
1.2.2 鞭毛蛋白作为免疫增强剂在禽类免疫的研究
1.3 乳酸菌表达重组蛋白的优势
1.3.1 乳酸菌作为疫苗佐剂的潜能
1.3.2 乳酸菌作为活菌载体表达外源蛋白的研究
1.3.3 禽为模型的乳酸菌相关研究
1.4 IBDV疫苗的研究与应用
1.5 本研究的目的与意义
2 材料与方法
2.1 试验材料
2.1.1 病毒、细胞和抗体
2.1.2 实验动物
2.1.3 质粒和菌株
2.1.4 酶类及主要试剂
2.1.5 引物
2.1.6 主要仪器设备
2.2 试验方法
2.2.1 FliB、FliBc和IBDV VP2基因片段的克隆
2.2.2 FliB、FliBc、VP2和FliBc-VP2基因E.coli表达载体的构建
2.2.3 FliB、FliBc、VP2和FliBc-VP2在E.coli中表达和鉴定
2.2.4 乳酸菌表达载体pPG-2-FliB、pPG-2-FliBc和pPG-2-FliBc-VP2的构建
2.2.5 目的蛋白在干酪乳杆菌L.393中的诱导表达及鉴定
2.2.6 乳酸菌表达的重组蛋白体外活性检测
2.2.7 FliBc、VP2和FliBc-VP2重组蛋白的纯化和免疫
2.2.8 pPG-2-FliB/L.casei393和pPG-2-FliBc/L.casei393培养上清的处理并和IBDV弱毒疫苗配合的免疫
2.2.9 乳酸菌活载体疫苗的制备和免疫
2.2.10 疫苗免疫效果的评估
3 实验结果
3.1 IBDV VP2、FliB和FliBc基因的克隆
3.1.1 FliB和FliBc基因的克隆
3.1.2 IBDV VP2基因的克隆
3.2 FliBc、IBDV VP2和FliBc-VP2基因E.coli表达载体的构图
3.2.1 Ppro-HTa-FliB和Ppro-HTa-FliBc的构建
3.2.2 重组载体Ppro-HTa-VP2的构建
3.2.3 重组载体Ppro-HTa-FliBc-VP2的构建
3.3 重组E.coli的诱导表达和鉴定
3.3.1 鞭毛蛋白Fli的多克隆抗体的制备
3.3.2 E.coli表达重组蛋白FliB和FliBc的表达鉴定
3.3.3 Ppro-HTa-VP2/BL21的诱导表达和鉴定
3.3.4 Ppro-HTa-FliC-VP2/BL21的诱导表达和鉴定
3.4 重组乳酸菌载体的构建与鉴定
3.4.1 重组载体pPG-2-FliB的构建及鉴定
3.4.2 重组载体pPG-2-FliBc的构建及鉴定
3.4.3 重组载体pPG-2-FliB-VP2的构建及鉴定
3.5 FliB、FliBc和FliBc-VP2基因的乳酸菌表达及鉴定
3.5.1 pPG-2-FliB/L.casei393和pPG-2-FliBc/L.casei393的诱导表达
3.5.2 pPG-2-FliBc-VP2/L.casei393的诱导表达
3.6 乳酸菌表达的重组蛋白FliB和FliBc体外活性检测
3.6.1 重组乳酸菌表达蛋白的处理和检测
3.6.2 对Caco-2细胞表达TLR-5和IL-8水平的影响
3.7 FliBc对IBDV VP2亚单位疫苗佐剂活性的评估
3.7.1 亚单位疫苗重组疫苗的纯化
3.7.2 免疫SPF鸡血清中特异性IgY的测定
3.7.3 特异性脾淋巴细胞增殖试验
3.7.4 血清中和抗体效价
3.7.5 攻毒保护性试验
3.8 FliBc对IBDV弱毒疫苗佐剂活性的评估
3.8.1 免疫SPF鸡血清中特异性IgY的测定
3.8.2 特异性脾淋巴细胞增殖试验
3.8.3 中和抗体水平
3.8.4 攻毒保护试验
3.9 FliBc对IBDV活载体疫苗佐剂活性的评估
3.9.1 pPG2-VP2/L.casei393和pPG2-FliBc-VP2/L.casei393免疫SPF鸡血清特异性IgY的测定
3.9.2 特异性脾淋巴细胞增殖活性
3.9.3 泪液、气管灌洗液和肠粘液中分泌型IgA的测定
3.9.4 中和抗体水平检测
3.9.5 攻毒保护试验
4 讨论
4.1 重组目的蛋白表达条件的优化选择
4.2 鞭毛蛋白佐剂活性区域的选择
4.3 IBDV作为抗原模型的选择
4.4 鞭毛蛋白作为免疫佐剂对亚单位疫苗免疫增强效应
4.5 鞭毛蛋白对弱毒疫苗的免疫增强作用
4.6 鞭毛蛋白作为乳酸菌疫苗的分子佐剂的免疫增强作用
4.7 鞭毛蛋白应用的潜在价值
5 结论
致谢
参考文献
附录
攻读博士学位期间发表的学术论文