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摘要
附图目录
附表目录
英文缩写对照表
1.引言
2.新生大鼠海马NSCs的培养及鉴定
2.1 实验材料
2.1.1 实验动物
2.1.2 主要实验仪器及试剂
2.1.3 主要培养基配制
2.2 NSCs的原代与传代培养
2.2.1 NSCs的原代培养
2.2.2 NSCs的传代培养
2.3 NsCs的免疫组化鉴定
2.3.1 NSCs接种与固定
2.3.2 NSCs免疫组化染色
2.4 NSCs培养与鉴定结果
2.4.1 NSCs培养结果
2.4.2 NSCs免疫组化染色结果
2.5 讨论
2.6 小结
3.VEGF-165诱导分化NSCs
3.1 实验材料
3.1.1 主要实验仪器
3.1.2 主要实验试剂
3.1.3 主要培养基配制
3.2 NSCs诱导分化
3.2.1 NSCs诱导分化培养
3.2.2 NSCs诱导分化后免疫荧光染色
3.3 诱导分化结果
3.3.1 NSCs诱导分化后形态学改变
3.3.2 NSCs诱导分化后免疫荧光染色结果
3.4 讨论
3.5 小结
4.诱导分化后NSCs在Matrigel基底膜基质中的生长
4.1 实验材料
4.1.1 主要实验仪器
4.1.2 主要实验试剂
4.1.3 主要培养基配制
4.2 Matrigel基底膜基质三维立体培养
4.2.1 Matrigel基底膜基质三维立体培养及分组
4.2.2 Matrigel基底膜基质的分装与包被
4.2.3 Matrigel基底膜基质中神经干细胞的接种与培养
4.3 神经干细胞三维立体培养后免疫荧光染色
4.3.1 免疫荧光染色前准备
4.3.2 免疫荧光染色步骤
4.4 神经干细胞在Matrigel基底膜基质中生长分化结果
4.4.1 神经干细胞在Matrigel基底膜基质三维立体培养结果
4.4.2 巢蛋白Nestin免疫荧光染色结果
4.4.3 β-tubulinⅢ蛋白和GFAP蛋白免疫荧光双重染色结果
4.5 讨论
4.6 小结
5.结论
参考文献
综述 神经干细胞对组织修复的新进展
自我介绍
致谢
郑州大学;