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毒毛旋花子苷原引起海马神经元细胞内钙变化机制研究

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毒毛旋花子苷原引起海马神经元细胞内钙变化机制研究

前言

材料与方法

结果

附图

附表

讨论

结论

参考文献

综述 Na+,K+-ATP酶信号转导功能在[Ca2+]i调控中的作用

参考文献

致谢

个人简历

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摘要

目的:Na+,K+-ATP酶(NKA)是一类广泛存在于真核生物细胞膜中的跨膜蛋白,在跨膜转运中维持Na+、K+的离子梯度,这种梯度对调节渗透压的平衡、静息电位的水平和生电性细胞(组织)如神经和肌肉的兴奋性具有重要的作用。强心类甾醇(CTS)是一类与Na+,K+-ATP酶特异性结合的化学物质,可在许多生理和病理条件下调节Na+,K+-ATP酶。在脑缺血、缺氧、中毒等病理条件下,Na+,K+-ATP酶的活性降低,Na+,K+-ATP酶被抑制,导致细胞内[Ca2+]i升高,从而引起细胞的损伤,故NKA是参与神经元损伤的机制之一,本研究主要选取对缺血、缺氧敏感的海马神经元,研究Na+,K+-ATP酶抑制剂毒毛旋花子苷原(Strophanthin,Str)对神经元细胞内钙的影响,并分析其作用机制。
   方法:①海马神经元的原代培养:取出生24小时内的乳鼠,断头,取脑,放入冰浴的D-Hanks液中,分离海马,剪成约1mm3小块,加入4~5倍组织块体积的0.125%的胰蛋白酶,37℃,消化10分钟,种植液冲洗3次后,用火焰刨光的玻璃吸管吹打制成细胞悬液,用种植培养液将细胞浓度调至1~2×106/ml。将细胞悬液种于预先铺好多聚赖氨酸的24孔细胞培养板中,3~5小时后给细胞补液。24小时后,全量换成饲养液,以后每3天换1次液,培养至7-14天用于实验。②激光共聚焦扫描显微镜测定海马神经元[Ca2+]i的变化:Fluo-420μmol/L37℃孵育神经元40min后,激发波长488nm,发射波长530nm,对细胞XYT平面进行扫描,间隔时间为10秒,连续扫描30分钟,[Ca2+]i变化通过给药前后荧光强度比值R表示(R=Ft/F0)。
   结果:1神经元的形态学观察接种后1~2小时海马神经元开始贴壁,细胞呈圆形或椭圆形,3天后,多数细胞从胞体长出数个突起,在7~10天开始成熟,胞体逐渐长至30~40μm,晕光明显,胞核和核仁清晰可见,突起变粗、变长并且有分支,14天后神经细胞生长最为丰满,胞体呈圆形或多角形,四周晕光明显。Fluo-4负载后,可在共聚焦显微镜下观察到海马神经元细胞胞浆内的绿色荧光。
   2Str对海马神经元细胞内钙的影响
   用含有不同浓度的Str(10-10、10-8、10-6、10-5和10-3mol/L)的HBSS灌流海马神经元,实验结果表明,给药前海马神经元的平均荧光强度为60-110,给予不同浓度的Str后,海马神经元平均荧光强度明显增加,其荧光强度分别是给药前荧光强度的109.4%、127.0%、172.7%、198%和274.1%,且呈剂量依赖性,从而提示Str可部分或全部抑制Na+,K+-ATP酶的活性,Str浓度越大,其抑制作用越强,升高海马神经元[Ca2+]i的作用越大。
   3谷氨酸释放对Str诱导的海马神经元细胞内钙升高的影响
   实验选用Str的浓度为10-8mol/L和10-5mol/L,10-8mol/LStr可抑制高亲合力Na+,K+-ATP酶a2和α3亚基的活性,10-5mol/LStr可抑制低亲合力Na+,K+-ATP酶ai亚基的活性。用含有NMDA受体阻断剂D-APV(50μM)和AMPA/Kainate受体阻断剂CNQX(10μM)的HBSS灌流海马神经元,二者对神经元[Ca2+]i均无明显影响(n=52,p>0.05)。灌流给予Str+D-APV(50μM)和Str+CNQX(10μM)后,低浓度的Str(10-8mol/L)引起Ca2+的荧光强度变化的比值是1.317±0.01和1.314±0.017,与对照组相比无明显统计学意义(p>0.05);高浓度的Str(10-5mol/L)引起Ca2+的荧光强度变化的比值是1.925士0.071和1.910士0.031,与对照组相比也无统计学意义(p>0.05),从而提示海马神经元谷氨酸的释放对Str诱导[Ca2+]i的升高无明显影响。
   4细胞外钙对Str诱导的海马神经元细胞内钙升高的影响
   海马神经元用正常的HBSS灌流5分钟后,将灌流液换成含钙离子螯合剂EGTA1mM的无钙生理盐溶液,海马神经元[Ca2+]i无明显变化(p>0.05),5分钟后在灌流液中分别加入高浓度的Str(10-5mol/L)和低浓度的Str(10-8mol/L),低浓度的Str(10-8 mol/L)引起Ca2+的荧光强度变化的比值是1.063士0.005(p<0.01),高浓度的Str(10-5mol/L)引起Ca2+的荧光强度变化的比值是1.099士0.018(p<0.01),与对照相比二者均可使海马神经元[Ca2+]i明显降低,从而提示细胞外钙内流是Str诱导[Ca2+]i的升高参与机制之一。为进一步证实细胞外钙对Str诱导的海马神经元细胞内钙升高的影响,用含有电压依赖性钙通道阻滞剂Nimodipine(50μM)的HBSS灌流海马神经元,结果表明,低浓度的Str(10-8mol/L)引起Ca2+的荧光强度变化的比值是1.060士0.041,高浓度的Str(10-5mol/L)引起Ca2+的荧光强度变化的比值是1.056士0.022,与对照相比二者均可使海马神经元[Ca2+]i明显降低,从而进一步提示Str诱导细胞[Ca2+]i的升高与细胞外钙的内流有关。5细胞内钙释放对Str诱导的海马神经元细胞内钙升高的影响
   用含有IP3受体阻断剂2-APB(50μmol/L)的HBSS灌流海马神经元,低浓度的Str(10-8mol/L)引起Ca2+荧光强度变化的比值是1.315士0.0237,与对照组相比无显著性差异(p>0.05),提示低浓度Str引起[Ca2+]i升高与细胞内钙的释放无关;而高浓度的Str(10-5mol/L)引起Ca2+的荧光强度变化的比值是1.640士0.045(p<0.01),与对照相比可使海马神经元[Ca2+]i明显降低,提示细胞内钙释放参与了高浓度Str(10-5mol/L)引起[Ca2+]i升高。
   6 PKA和PKC信号转导通路与Str诱导的海马神经元细胞内钙升高的关系
   在灌流液加入中PKC信号转导通路阻断剂CHE(10μmol/L),低浓度的Str(10-8mol/L)引起Ca2+的荧光强度变化的比值是1.333±0.049,高浓度的Str(10-5mol/L)引起Ca2+的荧光强度变化的比值是1.853士0.024,与对照组相比二者均无显著性意义(p>0.05),提示Str引起[Ca2+]i升高与PKC信号转导途径无关。在灌流液加入中PKA信号转导通路阻断剂H89(1μM),低浓度的Str(10-8mol/L)引起Ca2+的荧光强度变化的比值是1.245±0.029(p>0.05),高浓度的Str(10-5mol/L)引起Ca2+的荧光强度变化的比值是1.675±0.047(p<0.01),高浓度Str可使海马神经元[Ca2+]i明显降低,提示PKA信号转导途径与高浓度Str诱导细胞[Ca2+】i的升高有关。
   结论:Str可剂量依赖性增加大鼠海马神经元细胞[Ca2+】i的升高;谷氨酸受体与Str诱导海马神经元细胞[Ca2+】i无明显相关性;细胞外钙的内流参与Str诱导细胞[Ca2+]i的升高;细胞内钙可通过IP3受体参与高浓度Str(10-5mol/L)引起[Ca2+]i升高;Str引起[Ca2+]i升高与PKC信号转导途径无关,高浓度Str可通过PKA信号转导途径参与Str诱导细胞[Ca2+]i的升高;Src-MAPK信号转导通路参与Str诱导的海马神经元[Ca2+]i升高;Str引起[Ca2+]i升高与钠通道无关;高浓度的Str(10-5mol/L)引起[Ca2+]i升高可能与Na+-Ca2+交换体激活有关。

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