封面
中文摘要
英文摘要
英文缩写对照表
目录
1前言
1.1狂犬病病原学
1.1.1分类
1.1.2 狂犬病病毒的基因结构特征
1.1.3 狂犬病病毒蛋白功能
1.2狂犬病病毒实验室检测方法
1.2.1小鼠分离病毒试验(Mouse Isolation Test, MIT)
1.2.2细胞培养分离病毒技术(Cell-culture Isolation Technique, CIT)
1.2.3 荧光抗体实验(Fluorescent Antibody Test, FAT)
1.2.4 快速狂犬病酶免疫诊断法(Rapid Rabies Enzyme Immunodetection, RREID)
1.3狂犬病病毒抗体的实验室检测方法
1.3.1 小鼠病毒中和试验(mouse neutralization test, MNT)
1.3.2 荧光抗体病毒中和试验(Fluorescent Antibody Virus Neutralization test, FAVN)
1.3.3 快速荧光灶抑制试验(Rapid Fluorescent Focus Inhibition Test, RFFIT)
1.3.4 酶联免疫吸附试验(Enzyme Linked Immunosorbent Assay, ELISA)
1.4本研究的目的与意义
2 材料与方法
2.1 材料
2.1.1 毒株与血清
2.1.2主要试剂及配制
2.1.3 主要仪器
2.2 方法
2.2.1 菌株的复苏与PCR验证
2.2.2 目的蛋白的诱导表达与纯化
2.2.3 间接ELISA方法的建立
3 结果与分析
3.1 菌株的鉴定
3.2 蛋白诱导与纯化
3.2.1 蛋白诱导表达的情况
3.2.2 纯化后目的蛋白条带的鉴定
3.2.3 蛋白浓度测定结果
3.3 狂犬病病毒中和抗体间接ELISA方法的优化
3.3.1 封闭液的选择
3.3.2 血清稀释液的优化
3.3.3 最佳抗原浓度和最适血清浓度的确定
3.3.4 抗原包被时间的优化
3.3.5 封闭时间的优化
3.3.6 血清孵育时间的优化
3.3.7 酶标二抗稀释度的确定
3.3.8 酶标二抗孵育时间的优化
3.3.9 标准曲线方程的建立
4.1 包被蛋白的选取
4.1.1 包被病毒与包被表达蛋白的比较
4.1.2 不同毒株G基因的选择
4.1.3 表达RV G3蛋白的工程菌的优势
4.2 浓缩纯化RV G3蛋白的注意事项
4.3定量中和抗体的间接ELISA的注意事项
4.3.1 酶标板
4.3.2 封闭液和血清稀释液
4.3.3 包被
4.3.4 洗涤
4.3.5 显色
4.3.6 标准曲线
4.3.7 特异性
4.3.8 重复性
4.3.9 敏感性
全文总结
致谢
参考文献