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摘要
第一章 前言
1.1 动脉粥样硬化与炎症
1.1.1 As影响因素与发病机制学说
1.1.2 As与炎症
1.1.3 与As相关的炎症信号通路及信号转导分子
1.2 PPAR-α简介及其与动脉粥样硬化的关系
1.2.1 过氧化物酶体增殖物激活受体概述
1.2.2 PPAR-α在As中的作用
1.3 大麻素受体简介及其与动脉粥样硬化的关系
1.3.1 大麻素受体简介
1.3.2 大麻素受体与As
1.4 OEA概述
1.4.1 OEA来源及其合成与分解代谢
1.4.2 OEA的作用及其对As的影响
1.5 本论文的主要研究内容和意义
第二章 人脐静脉内皮细胞的分离、培养与鉴定
2.1 脐静脉内皮细胞提取分离与传代培养
2.1.1 实验仪器及部分实验试剂
2.1.2 主要试剂配制
2.1.3 脐静脉内皮细胞提取前准备
2.1.4 人脐静脉内皮细胞的分离提取
2.1.5 HUVECs的传代培养
2.2 人脐静脉内皮细胞的鉴定
2.2.1 HUVECs的形态学鉴定
2.2.2 HUVECs的Ⅷ因子相关抗原检测
2.3 实验结果及讨论
2.3.1 HUVECs形态学观察
2.3.2 免疫组织化学染色鉴定结果
2.4 本章小结
第三章 不同浓度OEA对TNF-α诱导的HUVECs相关炎症因子和黏附分子表达的影响
3.1 实验仪器和部分试剂
3.2 部分实验试剂的配制
3.3 实验方法
3.3.1 细胞活性检测
3.3.2 基因水平检测的给药方法
3.3.3 蛋白水平检测的给药方法
3.3.4 细胞总RNA提取及含量测定
3.3.5 逆转录,cDNA的合成
3.3.6 引物的设计与合成
3.3.7 聚合酶链式反应(PCR)
3.3.8 酶联免疫吸附试验
3.3.9 Western Blot实验方法
3.4 统计学处理
3.5 实验结果及讨论
3.5.1 细胞活性检测结果
3.5.2 不同浓度OEA下调TNF-α诱导的HUVECs IL-6、IL-8 mRNA水平
3.5.3 不同浓度OEA减轻TNF-α诱导的HUVECs中IL-6、IL-8蛋白的分泌
3.5.4 不同浓度OEA降低TNF-α诱导的HUVECs黏附分子VCAM-1、ICAM-1的表达
3.6 本章小结
第四章 不同浓度OEA对TNF-α刺激下HUVECs上PPAR-α和CB2受体表达的影响
4.1 实验仪器及部分试剂
4.2 实验方法
4.2.1 基因水平检测的细胞给药
4.2.2 蛋白水平检测的细胞给药
4.2.3 细胞总RNA提取及含量测定
4.2.4 逆转录,cDNA的合成
4.2.5 引物的设计与合成
4.2.6 聚合酶链式反应(PCR)
4.2.7 Western Blot实验方法
4.3 统计学处理
4.4 实验结果及讨论
4.4.1 不同浓度OEA上调TNF-α诱导的HUVECs上PPAR-α、CB2 mRNA水平
4.4.2 不同浓度OEA上调TNF-α诱导的HUVECs上PPAR-α、CB2蛋白的表达
4.5 本章小结
第五章 OEA减轻TNF-α诱导的HUVECs炎症反应机制的探究
5.1 实验所需仪器和实验试剂
5.2 实验方法
5.2.1 基因水平检测的给药方法
5.2.2 蛋白水平检测的给药方法
5.3 统计学处理
5.4 实验结果与讨论
5.4.1 阻断PPAR-α和CB2受体后IL-6及IL-8 mRNA表达上调
5.4.2 阻断PPAR-α和CB2受体后HUVECs培养上清液中IL-6及IL-8蛋白含量升高
5.4.3 阻断PPAR-α和CB2受体后黏附分子VCAM-1、ICAM-1表达上调
5.5 本章小结
第六章 OEA激活CB2和PPAR-α受体后抑制NF-κB的激活
6.1 实验仪器及部分试剂
6.2 实验方法
6.3 统计学处理
6.4 实验结果
6.4.1 阻断CB2受体后并不影响HUVECs上PPAR-α受体的表达
6.4.2 不同浓度OEA抑制TNF-α诱导的NF-κB蛋白激活
6.4.3 OEA抑制TNF-α诱导的NF-κB蛋白激活和CB2及PPAR-α受体有关
6.5 本章小结
第七章 OEA对P38-MAPK和STAT3信号通路的影响
7.1 实验仪器及部分试剂
7.2 实验方法
7.2.1 蛋白水平检测的细胞给药方法
7.2.2 Western Blot实验方法
7.3 统计学处理
7.4 实验结果
7.4.1 不同浓度OEA抑制磷酸化P38-MAPK信号的激活
7.4.2 不同浓度OEA抑制磷酸化STAT3蛋白信号的激活
7.5 本章小结
第八章 结论与展望
缩略语表
附录 硕士期间发表的学术论文
参考文献
致谢