法律状态公告日
法律状态信息
法律状态
2017-11-03
授权
授权
2017-06-23
实质审查的生效 IPC(主分类):C12N15/29 申请日:20170329
实质审查的生效
2017-05-31
公开
公开
技术领域
本发明属于植物分子生物学领域,具体涉及一种玉米SILKY1基因突变体silky1-3552及其分子鉴定方法和应用。
背景技术
植物雄性不育突变是自然界中十分普遍的现象,至少己在43个科、162个属的617个物种中发现了雄性不育突变体。在遗传上植物雄性不育分为细胞核雄性不育,细胞质雄性不育和细胞核细胞质互作雄性不育三大类:1)细胞核雄性不育由细胞核基因突变产生,有显性突变和隐性突变,有孢子体基因突变和配子体基因突变。显性突变和配子体基因突变只能通过雌配子遗传,隐性突变既可通过雌配子也可通过雄配子进行遗传,而且遵循孟德尔定律。目前已克隆了一些孢子体隐性核不育基因,如拟南芥的MS2,玉米的MS45和水稻的MIL1等(Aarts等,1997,The Arabidopsis MALE STERILITY 2protein shares similarity with reductases in elongation/condensation complexes,Plant Journal,12:615-623;Albertsen,2006,Male tissue-preferred regulatory sequences of MS45gene and method of using same,专利号:US7154024B2;Hong等,2012,Somatic and reproductive cell development in rice anther is regulated by a putative glutaredoxin,Plant Cell,24:577-588);一些配子体隐性核不育基因也被克隆,如拟南芥的两个小孢子有丝分裂异常的突变体sidecar pollen和gemini pollen(Oh等,2010,The SIDECAR POLLEN gene encodes a microspore-specific LOB/AS2domain protein required for the correct timing and orientation of asymmetric cell division,Plant Journal,64:839-50;Park等,1998,The Arabidopsis thaliana gametophyticmutation gemini pollen1disrupts microspore polarity,division asymmetry and pollen cell fate,Development,125:3789-99);玉米上还克隆了一个孢子体显性核不育基因MS44(Cigan and Albertsen,1998,Reversible nuclear genetic system for male sterility in transgenic plants,US5750868);2)细胞质雄性不育则是由细胞质基因控制,并没有相对应的核恢复基因,属母性遗传;3)细胞核细胞质互作雄性不育由细胞质基因和细胞核基因共同控制,其实质是细胞质与细胞核遗传物质不和的结果。不育细胞质是一些由突变线粒体基因引起,但有相对应的核恢复基因,能抑制不育细胞质基因。不育细胞质基因可产生一种新的蛋白质,够影响线粒体正常功能(Chen and Liu,2014,Male sterility and fertility restoration in crops,Annu Rev Plant Biol,65:5.1-5.28)。在育恢复基因方面,目前水稻中已经克隆了Rf-1,Rf-2,Rf-4,Rf-5等基因(Komori等,2004,Map-based cloning of a fertility restorer gene,Rf-1,in rice(Oryza sativa L.),Plant Journal,37:315-325;Itabashi等,2011,The fertility restorer gene,Rf2,for Lead Rice-type cytoplasmic male sterility of rice encodes a mitochondrial glycine-rich protein,Plant Journal,65:359-367;Tang等,2014,The rice restorer Rf4for wild-abortive cytoplasmic male sterility encodes a PPR protein that functions in reduction of WA352transcripts,Molecular Plant,7:1497-500;Hu等,2012,The rice pentatricopeptide repeat protein RF5restorers fertility in Hong-Lian Cytoplasmic male-sterile lines via a complex with the glycine-rich protein GRP162,Plant Cell,24:109-22)。
玉米在我国乃至全世界的粮食的粮食生产中有着举足轻重的地位,到2013年,我国玉米的总产量达到2.15亿吨,占据粮食总产量的35%,首次超过水稻成为第一大粮食作物;玉米是杂种优势利用的典范,其中杂交育种和制种技术的关键均在于母本的去雄。人工去雄相对容易,还可以通过机械去雄、化学杀雄等途径,但是这些策略也存在一些问题:一方面,这些技术大大增加了制种的成本,另一方面,因人工去雄的不彻底或不及时,会降低杂交种的纯度,造成生产上大面积减产,最终导致很大的经济损失。因此,提高杂交种种子纯度是当前玉米生产上急待解决的问题,而利用雄性不育系制种是提高杂交种质量最为有效的途径之一。玉米核雄性不育材料是一种宝贵的种质资源,对玉米杂交种生产具有极其重要的意义,但长期以来,由于纯合核雄性不育系无法繁殖保持等问题,这类材料在实际生产上几乎没有被有效地利用起来。随着新的核雄性不育材料的不断发现,玉米育种家对其进行了多方面的研究和利用尝试,如利用标记性状与不育性的紧密连锁关系,开发了粒色标记系统法、黄绿苗连锁标记法和多花丝连锁标记体系等,但是由于标记性状与不育性连锁不完全、标记性状鉴定困难、鉴定时期滞后等问题,这些方法和尝试在玉米生产上并没有得到推广应用。随着现代生物技术的迅速发展,部分玉米核雄性不育材料的不育机理逐渐明确,为分子设计创制稳定的玉米不育系奠定了理论基础。
利用人工诱变比如物理辐射,化学处理,组织培养等方法,人们在玉米上获得了多种新的不育突变体。silky1突变体是其中之一,其雄小花不产生雄蕊,但形成丝状物,雌花花丝大量增多。SILKY1基因有7个外显子,编码一个227个氨基酸的蛋白;SILKY1在雄花花原基初期的雄蕊原基和浆片原基中特异表达,决定着雄蕊的分化和浆片的形成;SILKY1在雌花中表达量较低,突变引起雄蕊转化成心皮样器官,在每个雌小花中同时出现4条花丝,其中仅有原雌花的花丝能正常授粉结实(Ambrose BA,Lerner DR,Ciceri P,Padilla CM,Yanofsky MF,Schmidt RJ.Molecular and genetic analyses of the Silky1gene reveal conservation in floral organ specification between eudicots and monocots.Molecular cell,2000;5:569-79)。SILKY1与拟南芥AP3蛋白同源,属于MIKC类型的MADS家族蛋白,含有M(MADS)、I(intervening)、K(keratin)和C(C-terminal)四个结构域,其中M可与特异DNA序列结合,K结构域是SILKY1中最为保守的结构域,为DNA结合二聚体和蛋白复合体的形成所必需(Kaufmann K1,Melzer R,Theissen G.MIKC-type MADS-domain proteins:structural modularity,protein interactions and network evolution in land plants.Gene.2005Mar 14;347(2):183-98.)。
然而,上述文献中报道的4个silky1突变体中,si1-R是自发突变,具体突变序列不详,是非完全敲除,仍然有少量基因表达水平;此外,该突变体报道于1933年的美国玉米(Fraser AC.Heritable characters of maize.XLIV-silky ears.Journal of Heredity,1933,11:41-46),可能存在于突变基因连锁的不适于当代玉米品种或中国生态环境的不利基因。其余三个silky1突变体(si1-mum2,si1-mum3,si1-mum4)为人工创制的Mutator转座子插入突变体,这种类型突变体非常有利于分离突变基因,但其中插入的转座子在后代中仍然具有继续诱导新的突变的能力,也有一定概率发生回复突变,因而在遗传上不够稳定(Robertson DS.Characterization of a mutator system in maize.Mutation Research/Fundamental and Molecular Mechanisms of Mutagenesis.1978,51(1):21-28),不利于生产应用。
发明内容
本发明的目的是提供一种玉米SILKY1基因突变体silky1-3552及其分子鉴定方法和应用。
本发明首先对杂交种京科糯2000种子(M0代)进行钴60辐射诱变处理,种植处理的种子获M1代植株;M1代植株自交产生种子(为M2代),种植M2代植株,对M2代植株进行形态学,组织学和遗传学鉴定,筛选不育植株;然后对不育植株进行基因测序和DNA序列分析,在分子水平上进行验证。最后获得纯合不育单株,并用于杂交育种和生物技术研究。
本发明提供的玉米SILKY1基因突变体silky1-3552,其为玉米SILKY1基因起始密码子起基因组序列第373个碱基,即编码区第239个碱基之后插入两个碱基GA,该突变位点位于第二外显子上。
进一步地,玉米SILKY1基因突变体silky1-3552,其核苷酸序列如SEQ ID No.1所示。
本发明提供了含有本发明所述玉米SILKY1基因突变体silky1-3552的表达载体。
本发明提供了含有上述表达载体的宿主细胞。
本发明提供了玉米SILKY1基因突变体silky1-3552在制备转基因植物中的应用。
本发明提供了玉米SILKY1基因突变体silky1-3552在制备隐性雄性核不育的转基因水稻中的应用。
本发明提供了玉米SILKY1基因突变体silky1-3552在玉米改良育种、制种中的应用。
本发明还提供了检测玉米SILKY1基因突变体silky1-3552的分子标记,该分子标记是由以下引物对扩增得到,所述引物对的核苷酸序列为:
上游引物3552_F:CGTGTGTGTTGGTTGGTTGGT(如SEQ ID NO.2所示);
下游引物3552_R:GACGGACCTCATACTGCTCGAT(如SEQ ID NO.3所示)。
本发明提供了上述分子标记在制备隐性雄性核不育的转基因玉米中的应用。
本发明提供了上述分子标记在玉米种质资源改良中的应用。
一种玉米SILKY1基因突变体silky1-3552的分子标记的方法,通过下述引物对扩增待检植物基因组DNA,并检测酶切产物:
所述引物对的核苷酸序列为:
上游引物3552_F:CGTGTGTGTTGGTTGGTTGGT(如SEQ ID NO.2所示);
下游引物3552_R:GACGGACCTCATACTGCTCGAT(如SEQ ID NO.3所示);
如果用上述引物对能够扩增出比野生型京科糯2000扩增产物长2bp的片段,则标志着该待检植物存在玉米SILKY1基因突变体silky1-3552。
本发明的有益效果在于:
1)本发明获得的突变体silky1-3552雄蕊完全消失,不存在雄性败育不彻底的缺点。
2)本发明使用的被诱变材料是优良杂交糯玉米品种京科糯2000,突变体可直接用于普通玉米和糯玉米的不育系选育。
3)文献“Ambrose BA,Lerner DR,Ciceri P,Padilla CM,Yanofsky MF,Schmidt RJ.Molecular and genetic analyses of the Silky1gene reveal conservation in floral organ specification between eudicots and monocots.Molecular cell,2000,5:569-79”中报道了4个silky1突变体,其中1个si1-R为自然突变,其余3个为Mutator转座子插入突变。自发突变体si1-R并不是完全敲除突变体,仍然有一定的表达水平,因此该突变基因功能可能丧失不完全;其次,si1-R最早报道于1933年(Fraser AC.Heritable characters of maize.XLIV-silky ears.Journal of Heredity,1933,11:41-46),突变品种为老品种,可能携带不适于现代品种、或不适于中国特殊生态环境的连锁基因。与si1-R相比,本发明的突变体基因组背景是国内广泛应用的当代杂交玉米品种,其携带不良连锁基因的概率很小;本发明突变体使SILKY1蛋白完全失去K和C结构域,生理功能完全丧失,不存在表型部分恢复的可能。
Ambrose等人创制的其余3个silky1突变体,是利用玉米Mutator转座子插入获得的,该类型突变,存在体细胞回复突变的情况;Mutator插入突变体的另一个缺陷是该转座子可能仍然具有活性,导致突变体后代频繁产生新的突变表型。以上特点都使Mutator插入突变体遗传难以完全稳定,不利于生产应用。而本发明突变基因是两个碱基的简单缺失,不存在表型回复的可能,也不会引发新的突变,遗传稳定,完全适合生产应用。
附图说明
图1是实施例2中野生型京科糯2000和3552突变体的雄穗、雌穗和小花照片。
图2是实施例6中3552突变体SILKY1基因的突变位点及氨基酸残基改变示意图。
图3是实施例7中野生型HiIIB、3552突变体、“3552×HiIIB”F2群体中可育株和不育株SILKY1基因突变位点的PCR产物的电泳照片。
图4是实施例8的杂交转育的技术路线图。
具体实施方式
以下实施例用于说明本发明,但不用来限制本发明的范围。在不背离本发明精神和实质的情况下,对本发明方法、步骤或条件所作的修改或替换,均属于本发明的范围。
若未特别指明,实施例中所用的技术手段为本领域技术人员所熟知的常规手段。
实施例1:钴60辐射诱变突变体库
2015年秋,于长沙钴60(Co60)辐射京科糯2000种子(M0代)3公斤,10月种植于海南三亚田间,分单株收获M1代种子,共收获约5495份种子。
选取M1代种子4678个株系,每个株系种植50棵单株。2016年春季,种植于海南临高田间。在孕穗期、抽穗期、开花期、灌浆期等经过仔细观察田间性状,筛查株型、穗型、育性、产量等各种类型突变体,对各类型突变体单株收种保存作为特殊突变体。
实施例2:M2代种植与性状观察
在M2代抽穗、开花期间,在田间对花药的形态进行观察,选取颜色浅白、形态小、花粉量小等表现异常的花药在显微镜下进行进一步镜检。在编号为3552的家系中发现1株育性异常的植株,该突变体在营养生长、抽穗期、穗型均与野生型没有明显区别,雄花中没有花药(图1E),部分雄穗小花有丝状结构长出(图1A,1F),与野生型相比,雌穗花丝非常浓密(图1C,1D),每个雌穗小花长出多个花丝(图1G)。开放授粉下,雌穗结实正常。该突变体与已报道silky1突变体表型一致(Ambrose>
实施例3:自交和异交
开放授粉以及以玉米自交系HiIIB为父本授粉,3552突变体均可正常结实。表明该突变体为雄性不育突变体。
“3552×HiIIB”F1代自交得到F2代种子,种植F2代植株314株,将雄小花解剖后观察,其中232株雄花正常,82株无雄蕊,符合3:1分离,表明该不育性状由单个隐性基因控制。
实施例4:叶片采样与DNA提取
本项研究采用CTAB法提取水稻叶片DNA,具体方法如下:称取约0.1g叶片,放入离心管,加入600μL CTAB提取缓冲液,5μL RNase A,震荡分散,65℃水浴0.5hr,其间轻摇2-3次;加入等体积氯仿/Tris-饱和酚(1:1,v/v),混匀,轻摇10min;4℃10000rpm离心20min;转移上清至新管,加入1/10体积的3M乙酸钠(pH值5.2)、0.6-1倍体积的冷异丙醇;轻摇混匀,至絮状沉淀出现;4℃10000rpm离心10min;弃去上清,用体积百分含量70%乙醇洗沉淀2次;风干,加入50μL 1×TE溶解沉淀,-20℃保存。用Nanodrop2000检测DNA浓度,稀释至10ng/L用作PCR模板。
实施例5:PCR反应与产物回收
根据玉米SILKY1基因序列合成特异引物扩增野生型京科糯2000和突变体DNA。
用于扩增SILKY1的引物对序列见表1:
表1用于扩增MSP1的引物对序列
PCR反应体系为:1μL 10×反应缓冲液,0.25μL dNTP,0.25μL正向引物和0.25μL反向引物,0.5U Taq酶,1μL 10ng/μL模板DNA,加超纯水将总体积补至10μL。PCR反应程序为:94-98℃变性1-3min,然后执行以下循环:95℃变性20s,53-58℃复性20s,72℃延伸30s,30-40个循环。循环结束后72℃补充延伸3-10min,结束反应。配置1.5%琼脂糖凝胶,在5V/cm电场下电泳30min;采用市面DNA凝胶回收试剂盒回收PCR产物。
实施例6:DNA序列分析
将回收所得野生型与突变体的PCR产物DNA采用ABI3730测序仪进行测序,测序引物分别使用正向引物与反向引物。使用常见DNA序列分析软件DNAman6.0对双向测序结果进行拼接;将3552突变体的SILKY1等位基因记为silky1-3552。对野生型和突变体序列进行比对发现,在玉米SILKY1基因的编码区第239位碱基,即基因组序列中起始密码子起第373位碱基后插入2个碱基GA(参见图2三角形号处);蛋白序列分析比对显示,该突变引起了SILKY1蛋白从第81位氨基酸残基起发生移码突变,并在第91个氨基酸残基之后形成终止密码子而提前终止蛋白翻译(参见图2星号位置)。这一移码和删除突变,导致SILKY1中的K结构域(第89-154氨基酸,Ambrose BA,Lerner DR,Ciceri P,Padilla CM,Yanofsky MF,Schmidt RJ.Molecular and genetic analyses of the Silky1gene reveal conservation in floral organ specification between eudicots and monocots.Molecular cell,2000,5:569-79)以及之后的序列完全删除。
实施例7:突变位点分子标记设计与基因型-表型共分离鉴定
根据实施例6中得到的突变位点两侧的序列设计基因特异引物:正向引物3552_F,其核苷酸序列如SEQ ID NO.2所示;反向引物3552_R,其核苷酸序列如SEQ ID NO.3所示。
在实施例5中所述PCR反应条件下,用上述引物对扩增HiIIB、突变体3552、“3552×HiIIB”F2群体中不育株和可育株的DNA。
扩增产物在6%聚丙烯酰胺凝胶上进行电泳分离。聚丙烯酰胺凝胶电泳方法如下:(1)聚丙烯酰胺胶的配制:6%PA胶80mL,10%过硫酸胺250μL(冬天)/125μL(夏天),四甲基乙二胺(TEMED)80μL。摇匀后灌胶。用洗涤剂把玻璃板反复擦洗干净,用酒精擦净、晾干。在通风橱中将凹板涂上2%的Repel Silane后,再用酒精擦净、干燥,将另一块平板涂上0.5%的Bingding Silane 1.5mL(在1.5ml离心管中加入7.5μL Binding Silane和7.5μL冰醋酸,补足95%乙醇至1.5mL)。操作过程中,防止两块玻璃板相互污染,彻底干燥后再进行玻璃板组装、灌胶。(2)预电泳:待胶凝固后,取出梳子,洗掉上边凝胶尤其注意接缝处定要洗净。先在电泳槽下槽(阴极)装入1×TBE的电极缓冲液,将聚合的凝胶板装在电泳槽内,在上槽中注入0.5×TBE的电极缓冲液。恒定功率40W-65W,预电泳约30min。用吸管清除胶面上沉淀的尿素和气泡,插入梳子。(3)电泳:扩增产物中加入5μl 5×Loading Buffer混合后95℃变性5分钟,立刻转移到冰上冷却,吸取1.5-3μl加入上样孔;恒定功率40W-65W进行电泳,至溴酚蓝到达电泳槽底部结束。视SSR扩增产物分子量大小及差异带型的可辨程度调整电泳时间。(4)银染显色,将带胶的一块玻璃板放入10%的冰乙酸固定液中,65r/min振荡约30min,直至二甲苯腈全部脱色;蒸馏水冲洗2次,每次5min;将冲洗后的胶板放入新配制的染色液(2L水中加入2g硝酸银、3mL 37%甲醛)中65r/min摇动30min;将染色后的胶板放入蒸馏水冲洗5s,立即拿出进行显影;将胶板快速转移到4℃预冷的显影液(2L水中加入30g氢氧化钠,10ml 37%甲醛)轻轻摇动至带纹出现;将胶板置于10%的冰乙酸固定液中至无气泡产生为止;用蒸馏水冲洗2次,每次2min;室温下自然干燥后,拍照保存图像(图3)。
表型为野生型植株扩增产物的电泳带型全部为野生型京科糯2000或杂合型带型,突变体扩增产物的电泳带型全部与3552的带型相同。这一结果表明实施例6中所述突变位点与隐性核雄性不育基因是共分离的。这一结果结合该突变体的突变表型、突变位点,以及已发表文献中的表型描述,可推断3552突变体的雄性不育表型是由实施例6中所述的突变造成的。我们将3552突变体中SILKY1突变基因命名为silky1-3552。
实施例8:突变基因的杂交转育
可按图4的步骤将3552的不育等位基因silky1-3552通过杂交转育到其它玉米遗传背景中:
①杂交:
以3552为母本,与受体玉米材料为父本杂交获得F1种子;
②第一轮回交:
F1播种后获得F1植株,将F1植株与轮回亲本进行杂交,获得BC1种子;
②BC1不育基因选择(前景选择):
播种BC1种子,获得不少于500株幼苗,在幼苗期采集各单株叶片,以实施例4中所述方法提取DNA,以实施例7中所列的引物对(3552_F和3552_R)进行扩增,选取基因型为杂合的单株继续种植,弃去纯合野生型的单株;
③BC1背景选择:
采用一组(例如100个,或200个等)在3552和轮回亲本之间存在多态的,且在基因组上均匀分布的分子标记(可以是但不限于SSR、SNP、INDEL、EST、RFLP、AFLP、RAPD、SCAR等类型标记),对步骤③中选出的单株进行鉴定,选取与轮回亲本相似度高(例如大于88%相似度,或2%中选率等)的材料;
⑤第二轮回交:用步骤④中选出的单株为父本,为轮回亲本授粉,获得BC2种子;
⑥BC2的前景与背景选择:对选出的材料重复步骤③至步骤④的操作,选出与轮回亲本相似度高于选择标准(如相似度大于98%,或2%中选率等)的BC2代植株;
⑦自交获得BC2F2种子:对步骤⑥中选出的BC2植株进行自交,获得BC2F2种子;
⑧BC2F2的前景选择:将步骤⑦中获得的BC2F2种子播种,获得500株以上幼苗,在幼苗期采集叶片,以实施例4中所述方法提取DNA,以实施例7中所列的引物对(3552_F和3552_R)进行扩增、酶切和电泳,选出带型为纯合突变体和杂合型的单株继续栽培,丢弃纯合野生型的单株;
⑨BC2F2的背景选择及应用:将步骤⑧中选出的单株按照步骤④的方法进行背景筛选,选出100%背景纯合的单株。如果中选单株的3552_F/3552_R引物对扩增后酶切带型为纯合突变体,则该单株为最终目标材料,可进一步与轮回亲本杂交保存材料,或与其它玉米材料进行杂交。如果中选单株是杂合带型,可直接用于保存种质,或通过自交获得不育株用于杂交育种或制种。
SEQUENCE LISTING
<110>海南波莲水稻基因科技有限公司
<120>一种玉米SILKY1基因突变体及其分子鉴定方法和应用
<130>KHP171111643.5TQ
<160>22
<170>PatentIn version 3.5
<210>1
<211>3926
<212>DNA
<213>玉米
<400>1
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catacgacgc atgcgtcgtc gtctgcatgc gtgtctctct cgtcaagcct gtggtggcta2460
gctagctagc taaggctgca tgccgcctac agatcatgac atgctagcta gcttatttgg2520
tccccgtgct actagctatc agctgggagt agcatgttaa gcgctgattt ttatggtgtt2580
gcaccgtggc atgatatgca cccacagatg aggaccgagg gtgtaggctt tatgatttgc2640
agaggtatgg aaatgggact cattagtgtg gaagtacttt tgcttgattg tcattactga2700
atgtatgtag tctgtcaata cgtacacagc gccatgtact gtgtatattg actgaaacgt2760
acgttgcatc atatccagct catctccaaa tcagccaaat atttctttct ctctctatat2820
atatatcact gaaatgttgt ccatgagata catgcaaata gctagcttac cctttctttt2880
gagctatcag tttcatagta tgcatgcctg ttcttccact cccgcaatca taaatagtat2940
gtaatataca ttgcagctat atatgtttgt tcaaaaacaa aatgcggtaa gaatgactga3000
gttattttcg ttggcggaaa gaaagcattt atgtttctta acttcgtaca gaaactccaa3060
tggggtatca gactatatat ttaccaaacg ttagtgtaca gaaactatct taggccttgt3120
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gtttaagtta tatctcaata cacgtcgatt ggggtgaaca tgaaagtatc taaataaggc3240
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tcatgaattg aaccacttca gtgcctgtta cttatggatt aggtaagttt aaatccataa3360
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tctatagagc ggctttttcc tttgatacga ttcaatcgat cgaccttgca ttgttgctga3540
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acaacacggg cgccggcgtc gcctgggacg gcgcggcggc ggcgctgggc ggcgccccgc3840
cggacatgta cgccttccgc gtggtgccca gccagcccaa cctgcacggc atggcctacg3900
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<213>人工序列
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<212>DNA
<213>人工序列
<400>3
gacggacctc atactgctcg at 22
<210>4
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<212>PRT
<213>玉米
<400>4
Met Gly Arg Gly Lys Ile Glu Ile Lys Arg Ile Glu Asn Ala Thr Asn
1 5 1015
Arg Gln Val Thr Tyr Ser Lys Arg Arg Thr Gly Ile Met Lys Lys Ala
202530
Arg Glu Leu Thr Val Leu Cys Asp Ala Gln Val Ala Ile Ile Met Phe
354045
Ser Ser Thr Gly Lys Tyr His Glu Phe Cys Ser Pro Gly Thr Asp Ile
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Lys Thr Ile Phe Asp Arg Tyr Gln Gln Ala Ile Gly Thr Ser Leu Trp
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Arg Ser Ser Ser Met Arg Ile Cys Ser Ala Arg
8590
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<212>DNA
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<400>22
tgcattgcat tgcttacttg ct 22
机译: 双低(00)fad3等位基因的等位基因双低等位基因(A)的位点A和C的突变和非突变片段的核苷酸序列形成去饱和酶基因和油菜植物(甘蓝型油菜)的低亚麻酸突变体(LLMut),是同种异体对fad3基因座A和C特异的SNP标记形成去饱和酶基因-冬季油菜植物的双低(00)和低亚麻酸突变体(LLMut),用于扩增fad3基因去饱和酶A和C的引物对的核苷酸序列冬季油菜植物基因,fad3去饱和酶基因的基因座A和C的扩增方法,用于鉴定fad3形式脱氢酶基因的突变和非突变等位基因的引物的核苷酸序列-双低(00 )和基因座A和基因座C中油菜的低亚麻酸突变体(LLMut)的微测序反应,fad3形式脱氢酶基因突变和非突变等位基因的鉴定方法-双低(00)和低亚麻酸突变体(法学硕士
机译: 提高产量的方法,核酸分子,双链rna分子,核酶,显性负突变体,核酸构建体,载体,转基因宿主细胞,多肽的生产方法,分离的多肽,抗体,植物组织,植物,栽培的植物材料或植物的繁殖材料,筛选生物活性拮抗剂的方法,化合物的鉴定方法,农业组合物,组合物,食品和食品组合物的生产方法以及基因产物的鉴定方法
机译: 鉴定玉米植物的方法,所述玉米植物包含至少一个与玉米植物上的抗高斯萎t等位基因相关的等位基因;介绍一种基因座方法。玉米植物细胞植物玉米上的抗枯萎病(QTL)高斯的定量特征。