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蜡样芽孢杆菌B2菌株、液体制剂及其制作方法和在防治板栗炭疽病中的应用

摘要

本发明公开了一株蜡样芽孢杆菌B2菌株、液体制剂及其制作方法和在防治板栗炭疽病应用,该菌株已于2013年6月20日保藏在中国北京市朝阳区中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心(CGMCC),保藏编号为CGMCC NO:7767,分类命名为蜡样芽孢杆菌Bacillus cereus。发酵液采用喷雾法对板栗炭疽病进行田间防治,以发酵液原液的防治效果最佳,防治效果达到了91.31%;发酵液的50倍和100倍稀释液,防效在85%以上,分别为89.37%、85.69%,差异极显著;而500倍稀释液的防效仅为64.21%。如应用于实践生产,从经济角度考虑,应在50倍和100倍稀释液两种处理中进行选择。

著录项

  • 公开/公告号CN103361291A

    专利类型发明专利

  • 公开/公告日2013-10-23

    原文格式PDF

  • 申请/专利权人 四川农业大学;

    申请/专利号CN201310317014.1

  • 申请日2013-07-25

  • 分类号C12N1/20;A01N63/02;A01P3/00;C12R1/085;

  • 代理机构北京众合诚成知识产权代理有限公司;

  • 代理人龚燮英

  • 地址 611130 四川省成都市温江区惠民路211号

  • 入库时间 2024-02-19 20:39:13

法律信息

  • 法律状态公告日

    法律状态信息

    法律状态

  • 2017-09-15

    未缴年费专利权终止 IPC(主分类):C12N1/20 授权公告日:20150722 终止日期:20160725 申请日:20130725

    专利权的终止

  • 2015-07-22

    授权

    授权

  • 2013-11-20

    实质审查的生效 IPC(主分类):C12N1/20 申请日:20130725

    实质审查的生效

  • 2013-10-23

    公开

    公开

说明书

技术领域

本发明涉及的是一种蜡样芽孢杆菌B2菌株、液体制剂及其制作方法和在防治板栗 炭疽病中的应用。

背景技术

板栗炭疽病(Colletotrichum gloeosporioide s Penz)为害栗叶、嫩枝幼杆和 栗果,造成栗叶早落,嫩枝幼杆枯死和栗果霉烂,是板栗的重要病害之一。

目前主要采用化学防治和营林技术,而生物防治措施研究尚未涉及。化学防治虽 是一种有效的防治手段,但存在病原菌抗药性、环境与食品安全、药害等许多实际问题, 一些化学杀菌剂在许多发达国家和地区已严格限制使用。而与环境友好的生物农药越来 越受到人们的青睐,是未来农业可持续发展的重要组成部分。板栗炭疽病,尚未涉及生 物防治,该技术是生态学领域的一个应用学科分支,是基于生态平衡的原理,引进有 益生物基因或基因产物,达到稳定、有效地防治靶标病(虫),生物农药(biopesticides) 是利用生物活体或者其代谢产物对有害生物进行防治的一类制剂,是生物防治的物质基 础和重要手段。

发明内容

本发明在杂交竹根际中发现蜡样芽孢杆菌(Bacillus cereus Frankland)一新菌株 B2菌株,能有效防治板栗炭疽病。

该B2菌株于2010年6月14日分离自四川雅安市天全县杂交竹根际。经形态,生 理,分子鉴定为蜡样芽孢杆菌(Bacillus cereus);该菌株已于2013年6月20日保藏在 中国北京市朝阳区中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心(CGMCC),保藏编号 为CGMCC NO:7767,分类命名为蜡样芽孢杆菌Bacillus cereus。

含有所述的B2菌株的液体制剂的制作方法,包括以下步骤:

①一级斜面种子:常规方法制作牛肉膏蛋白胨斜面培养基,接种蜡样芽孢杆菌B2 后在26-28℃下培养24-36小时制成一级种子;

②二级液体种子:营养肉质培养液经高压灭菌后,按100mL液体盛于300mL三角 瓶比例装瓶,在无菌状态接种蜡样芽孢杆菌B2斜面种子,每瓶接种2支斜面种子,温 度26-28℃,初始pH值6.0,120r/min振荡培养36h,制成蜡样芽孢杆菌B2液体种子;

③液体发酵:营养肉质培养液经高压灭菌后,按200mL液体盛于500mL三角瓶比 例(通氧控制)装瓶,在无菌状态接种B2液体种子,接种量10%(体积比),温度26-28℃, 初始pH值6.0,120r/min振荡培养72h,制成B2液体制剂;所述的营养肉质培养液: 牛肉膏7.0g,蛋白胨10g,NaCl5g,板栗叶浸渍液1000mL。

所述的液体制剂在防治板栗炭疽病中的应用,B2发酵液采用喷雾法对板栗炭疽 病的田间防治效果见表3,4种处理均表现出一定的防治效果,防效均在60%以上。其 中,以发酵液原液的防治效果最佳,防治效果达到了91.31%;其次是发酵液的50倍和 100倍稀释液,防效在85%以上,分别为89.37%、85.69%,差异极显著;而500倍稀释 液的防效仅为64.21%。如应用于实践生产,从经济角度考虑,应在50倍和100倍稀释 液两种处理中进行选择。

具体实施方式

以下结合具体实施例,对本发明进行详细说明。

(一)蜡样芽孢杆菌B2菌株筛选

1.1供试病原菌

供试病原菌为胶孢炭疽菌(Colletotrichum gloeosporioides Penz)。

1.2芽孢的分离和纯化

取杂交竹根际土壤(表层10cm以下)装入无菌样品袋带回实验室,备用。每份样 品称量10g转至装有90mL生理盐水和少量玻璃珠的三角瓶中,充分混匀后制成土壤 悬浮液,放入100℃水浴中加热5min。冷却后,无菌条件下取1mL加入装有9mL无 菌水的试管中,充分混匀得到10-2的样品稀释液,按照此法依次稀释,分别获得10-3、 10-4、10-5和10-6的土壤稀释液,取10-3、10-4、10-5和10-6的土壤稀释液各0.1mL,分 别采用稀释平板涂布法将其涂布在LB培养基上,倒置在30℃恒温培养箱中,48h后 根据菌落形态特征,挑取单菌落进行平板划线,以保证菌落纯度,分别保存于斜面中, 保存备用。

1.3生防芽孢杆菌的初筛

将斜面培养的产孢胶孢炭疽菌用无菌水洗出分生孢子,用移液枪取1mL加入无菌 培养皿中,然后倒入45℃左右的PDA培养基15mL,充分混合均匀,冷却后制成含菌 平板。采用点菌法,接种分离获得的芽孢杆菌,倒置在30℃恒温培养箱中,24h后观 察有无抑菌圈产生进行生防芽孢杆菌的筛选,并做好记录。

分离共获得36株芽孢杆菌,根据菌落形态、颜色、边缘、光学特性以及是否产生 色素进行合并后,共25株。分别通过点菌法进行拮抗测定,筛选出胶孢炭疽菌具有较 强拮抗做用的菌株7株。抑菌圈直径达到5mm以上的共3株,其中B2菌株拮抗作用 最强,抑菌圈直径均达到17mm左右;其次是B27,抑菌圈直径均达到10mm左右; B29抑菌圈最小,仅达到5mm。

1.4发酵液活性的测定(复筛)

1.3筛选出抑菌活性较强的芽孢杆菌菌株,活化后分别将其接种于LB肉汤培养液 中,30℃,120r/min的恒温摇床中培养,培养24h后,作为种子液以1:1比例加入含 有葡萄糖的LB肉汤培养基,30℃,120r/min的恒温摇床中培养48h后取出,用牛津 杯法和打孔法进行抑菌试验,检测发酵液是否有抑菌活性。

待测生防菌株发酵后,静置,取上清液,3500r/min,离心5min,取上清液分别采 用打孔法、牛津杯法对指示病原菌进行拮抗测定。

采用打孔法,将指示病原菌分生孢子接种在平板上,直径5mm打孔器打孔后,在 孔中加入待测的生防菌发酵液,测得B27、B29基本不产生抑菌圈,而B2菌株抑菌圈 直径达到23mm±0.5mm,说明B2胶孢炭疽菌具有较好的抑制作用。

采用牛津杯法对发酵液进行拮抗活性的测定,测得B2具有一定的拮抗活性,发酵 液对病原菌的抑菌圈直径达到15mm±0.4mm,而B27和B29基本看不出抑菌圈,发酵 液无抑菌活性。

1.5发酵滤液活性的测定

用移液枪吸取5mL经过24h培养的种子液,加入装有45mL含葡萄糖的LB肉汤 培养液的250mL三角瓶中,30℃,120r/min的恒温摇床中培养,36h后,经3000r/min, 离心5min后,取上清液,用0.2μm细菌过滤器过滤,获得无细胞发酵滤液。取0.1mL 病原菌稀释液涂布于平板上,采用牛津杯法、打孔法测定发酵滤液对病原菌的抑菌活性, 重复3次,并设对照,2d后测量抑菌圈直径。

同时对发酵液进行121℃,15min高温处理,按照上述方法检测拮抗活性的有无。

结合1.3和1.4实验结果,筛选出最佳生防芽孢杆菌进行后续试验。

B2菌株经发酵后,取其上清液用细菌过滤器(直径0.2μm)过滤后获得无菌发酵 滤液,用打孔法和牛津杯法分别测定抑菌活性测定。结果表明,B2菌株经发酵后获得 无细胞发酵滤液对指示病原菌表现出较强的拮抗效果,打孔法和牛津杯法产生的抑菌圈 带宽分别为5mm±0.5mm和4mm±0.2mm。发酵滤液经过121℃,15min高温处理后 仍具有拮抗活性,说明抑菌代谢产物具有耐热性。

1.6盆栽试验

选取一年生盆栽板栗苗为对象。筛选出的生防菌经发酵后,取其发酵液采用喷雾法 对种苗进行喷雾,每隔7d喷施1次(共3次),并以无菌水作对照。一个月后采用针刺 接种法将病原菌接种在幼苗叶片上,每处理接种100个部位,并对接种部位进行保湿, 每处理重复3次。

病原菌接种15d后,按照表2中病害分级标准进行病害调查统计,并计算发病率。

表1盆栽接种试验15d后的防治效果

注:大小写字母分别为p<0.05和p<0.01水平上具有显著性差异。

接种病原菌15d后,生防菌B2发酵液对板栗表现出良好的保护效果(表1),防治 效果随稀释倍数的增加而降低。在稀释500倍时,发病率为19,而1000倍时,发病率 达38%,因此选用50倍,100倍,500倍稀释液用于大田试验的测定。

(二)田间防治实例

1、B2菌株液体制剂制作

①一级斜面种子:常规方法制作牛肉膏蛋白胨斜面培养基(牛肉膏7.0g,蛋白胨10g, NaCl5g,琼脂17g,水1000mL),接种蜡样芽孢杆菌B2后在26-28℃下培养24-36小时 制成一级种子。

②二级液体种子:营养肉质培养液(牛肉膏7.0g,蛋白胨10g,NaCl5g,板栗叶浸 渍液1000mL)经高压灭菌后,按100mL液体盛于300mL三角瓶比例(通氧控制)装 瓶,在无菌状态接种蜡样芽孢杆菌B2斜面种子,每瓶接种2支斜面种子,温度26-28℃, 初始pH值6.0,120r/min振荡培养36h,制成蜡样芽孢杆菌B2液体种子。

③液体发酵:营养肉质培养液(牛肉膏7.0g,蛋白胨10g,NaCl5g,板栗叶浸渍液 1000mL,板栗叶浸渍液制备方法:新鲜板栗叶10g在1000ml水中煮沸10分钟,保持 水量,除去叶片滤液即可)经高压灭菌后,按200mL液体盛于500mL三角瓶比例(通 氧控制)装瓶,在无菌状态接种B2液体种子,接种量10%(体积比),温度26-28℃,初 始pH值6.0,120r/min振荡培养72h,制成B2液体制剂。

④制剂保存:瓶装制剂常温保存半年或低温(4度)1年半不影响防治效果。

2、田间防治

(1)B2菌制剂配制:拮抗菌发酵后,将发酵原液稀释成1×109cfu/mL的发酵液, 并在此基础上依次配制50倍、100倍、500倍的稀释液。

(2)喷雾防治:选择历年发病板栗园进行,每个浓度处理应做到喷洒均匀一致,以 滴水不成线为宜,并以喷洒无菌水作对照。每处理设50株,喷雾间隔7d一次,连续喷 3次。每处理重复4次。

分别在喷雾前和在最后一次喷雾后的第30d进行调查统计,记录发病植株数、发病 程度,并计算病情指数增长率、防治效果。

发病率同上计算。

表2板栗炭疽病害分级标准

级别 代表值 分级标准 0 无病 1 25%以下叶发病 2 25%-50%叶发病 3 51%-75%叶发病 4 76%叶发病

B2发酵液采用喷雾法对板栗炭疽病的田间防治效果见表3,4种处理均表现出一定 的防治效果,防效均在60%以上。其中,以发酵液原液的防治效果最佳,防治效果达到 了91.31%;其次是发酵液的50倍和100倍稀释液,防效在85%以上,分别为89.37%、 85.69%,差异极显著;而500倍稀释液的防效仅为64.21%。如应用于实践生产,从经 济角度考虑,应在50倍和100倍稀释液两种处理中进行选择。

表3采用喷雾法板栗炭疽病的田间防治效果

注:大小写字母分别为p<0.05和p<0.01水平上具有显著性差异。

应当理解的是,对本领域普通技术人员来说,可以根据上述说明加以改进或变换, 而所有这些改进和变换都应属于本发明所附权利要求的保护范围。

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