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抗GLIPR-2单克隆抗体杂交瘤细胞及其产生的抗GLIPR-2单克隆抗体

摘要

本发明涉及生物技术领域,公开了抗GLIPR-2单克隆抗体杂交瘤细胞及其产生的抗GLIPR-2单克隆抗体。本发明所述抗GLIPR-2单克隆抗体杂交瘤细胞保藏编号为CCTCC NO:C201221。本发明所述杂交瘤细胞能够稳定产生抗GLIPR-2单克隆抗体,且细胞染色体稳定、抗体效价高,完全能够应用于GLIPR-2的分子作用机制的研究中。

著录项

  • 公开/公告号CN102876637A

    专利类型发明专利

  • 公开/公告日2013-01-16

    原文格式PDF

  • 申请/专利号CN201210418849.1

  • 发明设计人 蒲晓允;黄绍光;蒋栋能;刘飞;

    申请日2012-10-26

  • 分类号C12N5/20;C12N15/06;C07K16/18;

  • 代理机构北京集佳知识产权代理有限公司;

  • 代理人赵青朵

  • 地址 400038 重庆市沙坪坝区新桥正街2号

  • 入库时间 2024-02-19 16:35:27

法律信息

  • 法律状态公告日

    法律状态信息

    法律状态

  • 2018-10-16

    未缴年费专利权终止 IPC(主分类):C12N5/20 授权公告日:20140402 终止日期:20171026 申请日:20121026

    专利权的终止

  • 2014-04-02

    授权

    授权

  • 2013-02-27

    实质审查的生效 IPC(主分类):C12N5/20 申请日:20121026

    实质审查的生效

  • 2013-01-16

    公开

    公开

说明书

技术领域

本发明涉及生物技术领域,具体涉及抗GLIPR-2单克隆抗体杂交瘤细胞及其产生的抗GLIPR-2单克隆抗体。 

背景技术

GLIPR-2(glioma pathogenesis related-2,GLIPR-2)属于PR-1(pathogenesis related-1)家族,普遍表达于哺乳动物外周血单核细胞和脾脏。最近的研究发现,肾脏纤维化中GLIPR-2表达基因在肾小管上皮细胞中表达增加,提示它在这一病理过程中具有重要作用。 

肾脏纤维化是一种病理生理改变,是肾脏的功能由健康到损伤,再到损坏,直至功能丧失的渐进过程,主要包括肾间质纤维化与肾小球硬化。以往认为肾功能减退是由于肾小球病变所致,然而自1970年Schainuch提出肾小管间质(Tubuleinterstitium,TI)损害与肾功能减退呈显著相关的观点以来,TI损害日益得到重视。 

研究发现,表达GLIPR-2的肾小管上皮细胞明显向间质细胞转化,是肾脏成纤维细胞的主要来源之一。但目前对于GLIPR-2在纤维化中作用的分子机制尚不清楚,主要原因是缺乏有效的试验工具,特别是抗GLIPR-2的特异性抗体。因此,提供一种抗GLIPR-2的单克隆抗体,对进一步研究GLIPR-2的分子作用机制具有重要意义。 

发明内容

有鉴于此,本发明的目的在于提供抗GLIPR-2单克隆抗体杂交瘤细胞及其产生的抗GLIPR-2单克隆抗体。 

为实现上述目的,本发明提供如下技术方案: 

抗GLIPR-2单克隆抗体杂交瘤细胞,保藏编号为CCTCC NO:C201221。 

本发明所述抗GLIPR-2单克隆抗体杂交瘤细胞由以下方法制备获 得: 

GLIPR-2蛋白免疫BALB/C小鼠,然后取BALB/C小鼠脾细胞与SP2/0细胞在50%聚乙二醇作用下进行融合,融合后进行HAT培养,然后吸取杂交瘤细胞培养上清液进行ELISA检测,筛选出阳性杂交瘤细胞用有限稀释法克隆至能稳定分泌抗GLIPR-2单克隆抗体,即获得抗GLIPR-2单克隆抗体杂交瘤细胞。 

其中,所述GLIPR-2蛋白免疫BALB/C小鼠优选为: 

取GLIPR-2蛋白100μg加等质量福氏完全佐剂对BALB/C小鼠进行第一次免疫注射,3周后取GLIPR-2蛋白300μg加等质量福氏不完全佐剂对BALB/C小鼠进行第二次免疫注射,7周后取GLIPR-2蛋白500μg对BALB/C小鼠进行第三次免疫注射。本发明免疫所用GLIPR-2蛋白可参照文献《人GLIPR-2基因的克隆及在原核中可溶性表达》(黄绍光,李强,钮芹,倪丹妮,蒲晓允,免疫学杂质,2010年5月第26卷第5期)记载的内容获得。 

所述HAT培养具体操作优选为: 

用含20%胎牛血清的HAT选择性培养基与杂交瘤细胞混匀并加入到种有饲养细胞的96孔板中培养2周。 

所述ELISA检测具体操作优选为: 

杂交瘤细胞培养上清液加入到GLIPR-2蛋白包被的酶标板中于37℃孵育20min,洗涤后以工作浓度为1:2000的标准加HRP标记的羊抗鼠IgG于37℃孵育20min,然后加邻苯二胺底物显色15min后终止反应。 

经过上述方法制备后,最终筛选出能够稳定分泌抗GLIPR-2单克隆抗体的杂交瘤细胞,命名为1A11A11C9E2,并于2012年7月5日保藏于中国典型培养物保藏中心,地址为中国武汉大学。 

此外,本发明还提供一种抗GLIPR-2单克隆抗体,由保藏编号为CCTCC NO:C201221的杂交瘤细胞分泌产生。 

制备抗GLIPR-2单克隆抗体可采用本技术领域常规方法,如用杂交瘤细胞株诱导小鼠腹水,本发明优选为: 

将保藏编号为CCTCC NO:C201221的杂交瘤细胞传代培养,取对数生长期的细胞计数,小鼠腹腔接种5×105个/只,诱导腹水,离心,收集上清,用DEAE-SephadexA50离子交换柱层析法纯化抗GLIPR-2单克隆抗体。 

本发明所述保藏编号为CCTCC NO:C201221的杂交瘤细胞染色体稳定,其分泌产生的抗GLIPR-2单克隆抗体均为IgG1型,效价较高,直接培养的上清可达1:2000,小鼠腹水可达10mg/mL,效价可达1:10000,完全能够应用于GLIPR-2的分子作用机制的研究中。因此,本发明还提供了保藏编号为CCTCC NO:C201221的杂交瘤细胞在制备抗GLIPR-2单克隆抗体中的应用。 

由以上技术方案可知,本发明提供了一株抗GLIPR-2单克隆抗体杂交瘤细胞及其分泌产生的抗GLIPR-2单克隆抗体,该杂交瘤细胞能够稳定产生抗GLIPR-2单克隆抗体,且细胞染色体稳定、抗体效价高,完全能够应用于GLIPR-2的分子作用机制的研究中。 

生物保藏信息说明 

杂交瘤细胞株1A11A11C9E2于2012年7月5日保藏在保藏于中国典型培养物保藏中心,地址为中国武汉大学,保藏编号为CCTCC NO:C201221。 

具体实施方式:

本发明公开了抗GLIPR-2单克隆抗体杂交瘤细胞及其产生的抗GLIPR-2单克隆抗体,本领域技术人员可以借鉴本文内容,适当改进工艺参数实现。特别需要指出的是,所有类似的替换和改动对本领域技术人员来说是显而易见的,它们都被视为包括在本发明。本发明的产品及应用已经通过较佳实施例进行了描述,相关人员明显能在不脱离本发明内容、精神和范围内对本文所述的方法和应用进行改动或适当变更与组合,来实现和应用本发明技术。 

下面就本发明提供的抗GLIPR-2单克隆抗体杂交瘤细胞及其产生 的抗GLIPR-2单克隆抗体做进一步说明。 

实施例1:免疫小鼠 

1、材料 

抗原:GLIPR-2蛋白,根据文献《人GLIPR-2基因的克隆及在原核中可溶性表达》(黄绍光,李强,钮芹,倪丹妮,蒲晓允,免疫学杂质,2010年5月第26卷第5期)的方法制备; 

试验动物:6周龄、17g左右BALB/C小鼠(由第三军医大学实验动物中心提供); 

试剂:福氏完全佐剂和不完全佐剂(购自Promega公司); 

2、方法 

BALB/C小鼠后腿肌肉及背部皮内注射抗原免疫,第一次100μg加等量福氏完全佐剂,3周后用100μg加等量福氏不完全佐剂,7周后500μg不加佐剂腹腔注射,腹腔注射后第4天准备进行细胞融合。 

实施例2:细胞融合 

1、材料 

骨髓瘤细胞:SP2/0细胞(由中国典型培养物保藏中心提供); 

培养基:胎牛血清(购自Invitrogen公司);HAT选择性培养基(购自Sigma公司); 

饲养细胞: 

2、方法 

腹腔注射后第4天取BALB/C小鼠脾细胞与SP2/0细胞在50%聚乙二醇作用下融合。融合后的杂交瘤细胞用含20%进口胎牛血清的HAT选择性培养基混均加入种有饲养细胞的96孔板中培养,2周后在倒置显微镜下挑选克隆孔。 

接种96孔细胞培养板7块共660孔(对照孔除外),其中420孔有克隆生长,融合率为64%(420/660)。 

实施例3:ELISA检测 

GLIPR-2蛋白包被酶标板,封闭后加杂交瘤细胞培养上清液37℃孵育20min,洗涤后加HRP标记的羊抗鼠IgG(工作浓度1∶2000),37℃孵育20min后洗涤,加邻苯二胺(OPD)底物显色15min后终止反应。同时设阴性、阳性和空白对照,筛选出能分泌抗体的杂交瘤细胞。结果显示,抗体阳性有16孔,阳性率为2.4%(16/660)。 

实施例3:克隆化培养及染色体鉴定 

将前述筛选出的阳性杂交瘤细胞用有限稀释法进行多次克隆化培养,至克隆细胞抗体阳性率为100%,获得10株能稳定分泌特异性抗体的杂交瘤细胞,选择其中一株活性最强的杂交瘤细胞,命名为1A11A11C9E2。 

秋水仙素处理传代培养的1A11A11C9E2杂交瘤细胞,0.075mol/LKCl溶液低渗处定、铺片,10%Giemsa染色,镜检。结果显示,正常BALB/C小鼠脾细胞染色体的数目恒定为40对,同品系的SP2/0细胞的染色体众数目为68对,1A11A11C9E2杂交瘤细胞的染色体数目约为两种亲本染色体数目的总合,染色后计数为102对。 

实施例4:腹水诱导抗GLIPR-2单克隆抗体及抗体亚型检测 

1A11A11C9E2杂交瘤细胞经传代取对数生长期的细胞计数,小鼠腹腔接种5×105个/只,诱导腹水,离心,收集上清,用DEAE-SephadexA50离子交换柱层析法纯化单克隆抗体。 

用鼠源性单克隆抗体亚型检测试剂盒(购自于Sigma)鉴定,结果显示,制备的单克隆抗体均为IgG1型。 

实施例5:抗GLIPR-2单克隆抗体特异性及效价检测 

1、特异性检测 

采用常规的Western Blot印迹测定抗体纯度,操作步骤参见《分子生物学基本实验技术》(赵亚力,马学斌,韩为东主编),一抗为本发 明腹水纯化后的抗GLIPR-2单克隆抗体,二抗为羊抗鼠IgG/HRP,ECL试剂盒。 

结果显示,抗GLIPR-2单克隆抗体可特异性识别分子量为17KD的抗GLIPR-2蛋白。 

2、ELISA法效价检测 

按照常规ELISA法进行检测,结果显示,直接培养的上清可达1:2000,小鼠腹水可达10mg/mL,效价可达1:10000。 

以上所述仅是本发明的优选实施方式,应当指出,对于本技术领域的普通技术人员来说,在不脱离本发明原理的前提下,还可以做出若干改进和润饰,这些改进和润饰也应视为本发明的保护范围。 

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