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Programmable biomolecular switches for rewiring flux in Escherichia coli

机译:可编程生物分子开关用于重新连接大肠杆菌中的通量

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摘要

Synthetic biology aims to develop programmable tools to perform complex functions such as redistributing metabolic flux in industrial microorganisms. However, development of protein-level circuits is limited by availability of designable, orthogonal, and composable tools. Here, with the aid of engineered viral proteases and proteolytic signals, we build two sets of controllable protein units, which can be rationally configured to three tools. Using a protease-based dynamic regulation circuit to fine-tune metabolic flow, we achieve 12.63 g L−1 shikimate titer in minimal medium without inducer. In addition, the carbon catabolite repression is alleviated by protease-based inverter-mediated flux redistribution under multiple carbon sources. By coordinating reaction rate using a protease-based oscillator in E. coli, we achieve d-xylonate productivity of 7.12 g L−1 h−1 with a titer of 199.44 g L−1. These results highlight the applicability of programmable protein switches to metabolic engineering for valuable chemicals production.
机译:合成生物学旨在开发可编程工具来执行复杂的功能,例如在工业微生物中重新分配代谢通量。但是,蛋白质级电路的开发受到可设计,正交和可组合工具的可用性的限制。在这里,借助于工程化的病毒蛋白酶和蛋白水解信号,我们构建了两组可控的蛋白质单元,可以合理地将其配置为三种工具。使用基于蛋白酶的动态调节电路微调代谢流量,我们在没有诱导剂的基本培养基中达到了12.63 g L -1 iki草酸酯滴度。此外,在多种碳源下,基于蛋白酶的逆变器介导的通量再分配可减轻碳分解代谢物的阻抑作用。通过在大肠杆菌中使用基于蛋白酶的振荡器协调反应速率,我们实现了7.12 g L -1 h -1 的d-木糖酸盐产率,滴度为199.44 g L -1 。这些结果突显了可编程蛋白质开关在代谢工程中的应用,可用于有价值的化学品生产。

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