水稻叶片淀粉异常积累基因SEM1的克隆及光合产物运输机制的研究

目录

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第一章 引言

1.1 光合作用

1.1.1 光合作用研究近况

1.1.2 C3和C4植物的光合作用

1.1.3 C3植物中的C4途径

1.1.4 水稻的光合作用效率

1.2 库源流

1.2.1 库的研究进展概述

1.2.2 源的研究进展概述

1.2.3 流的研究进展概述

1.2.4 库源关系

1.3 水稻中光合同化产物的运输

1.3.1 水稻中的一般光合产物运输方式

1.3.2 韧皮部在光合产物运输中的作用

1.4 胼胝质及其生物学功能

1.4.1 胼胝质沉积的调控基因

1.4.2 胼胝质合成酶GSL

1.4.3 胼胝质降解酶

1.5 细胞周期

1.5.1 细胞周期概述

1.5.2 细胞周期调控因子

1.5.3细胞周期调控研究展望

第二章 材料与方法

2.1 实验材料

2.1.1 植株材料

2.1.2 菌株

2.1.3 质粒载体

2.1.4 实验试剂以及器材

2.2 实验方法

2.2.1 水稻基因组DNA提取

2.2.2 水稻总RNA提取

2.2.3 反转录PCR

2.2.4 荧光定量PCR

2.2.5 图位克隆

2.2.6 载体构建

2.2.7 质粒提取

2.2.8 大肠杆菌感受态制备

2.2.9 农杆菌感受态的制备

2.2.10 水稻的遗传转化

2.2.11 叶片的碘化钾染色

2.2.12 电镜观察

2.2.13 水稻农艺性状的观察、统计

2.2.14 烟草注射

2.2.15 石蜡切片

2.2.16 原位杂交

2.2.17 激光共聚焦显微镜采图

2.2.18 免疫荧光

2.2.19 CFDA溶液处理水稻组织

2.2.20 转录组测序分析

2.2.21 光合测定方法

2.2.22 糖含量的测定

2.2.23 蛋白提取及western blot检测

第三章 实验结果

3.1 水稻淀粉异常积累突变体的筛选

3.2 sem1突变体农艺性状的统计

3.3 可溶性糖含量测定

3.4 突变体sem1遗传分析

3.5 基因克隆

3.6 基因SEM1的互补验证

3.7 SEM1进化分析及序列比对

3.8 基因SEM1编码一个跨膜蛋白

3.9 基因SEM1表达模式分析

3.10 sem1叶片解剖学结构观察

3.11 叶片中胼胝质的检测

3.11.1 免疫荧光检测胼胝质的积累

3.11.2 免疫荧金标记检测胼胝质含量

3.12 western blot检测蛋白SEM1抗体的特异性

3.13 蛋白OsSEM1在细胞壁上的定位

3.14 sem1突变体源库转化障碍

3.15 sem1突变体中细胞周期蛋白表达受到抑制

3.16 sem1突变体光合作用效率测定

第四章 结论

第五章 讨论

5.1 基因SEM1突变造成水稻叶片糖转运异常

5.2 突变体sem1维管束韧皮部细胞数目减少

5.3 蛋白SEM1跨膜结构分布探讨

5.4 糖的运输方式探讨

5.5 胼胝质合成酶在植物发育过程中的重要作用

5.6 对胼胝质合成酶发挥作用机制的探讨

5.7 SEM1调节细胞循环过程控制细胞数目

5.8糖做为一种信号分子抑制突变体sem1的光合作用效率

参考文献

致 谢

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