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CXCR4启动子区低甲基化介导其上调诱导大鼠炎症性痛敏的机制研究

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声明

第一部分 绪 论

参考文献

第二部分 材料与方法

2.1实验动物

2.2 CFA诱导炎症痛模型的建立

2.3行为学实验

2.4免疫荧光检测

2.5 Westing blotting检测DRGs中CXCR4蛋白表达

2.6实时定量PCR

2.7甲基化检测

2.8染色质免疫沉淀(ChIP)

第三部分 结 果

3.1CXCR4参与CFA诱导的大鼠炎症痛的发生和发展

3.2 CFA导致CXCR4启动子区CpG岛去甲基化。

3.3 CFA导致CXCR4基因启动子区去甲基化机制

3.4 CFA增强转录因子NF-κB p65与CXCR4基因启动子区结合

第四部分 讨 论

第五部分 结 论

参考文献

综述一:趋化因子CXCL12/CXCR4信号轴介导病理性疼痛研究进展

综述二:关于疼痛动物模型的建立及相关技术研究进展

本文使用的缩略词表

在攻读博士学位期间公开发表的论文与参加的项目

致谢

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摘要

背景:
  慢性炎症痛是一种常见的临床疾病,严重影响病人的功能状态和生活质量。有研究报道DNA甲基化与慢性疼痛的发病机制有关。然而,在炎症性痛敏情况下,DNA甲基化是否参与调控特定基因表达进而介导炎症痛敏的分子机制仍然不清。
  目的:
  本研究旨在探讨趋化因子受体CXCR4在CFA诱导的慢性炎症痛中的作用,并从表观遗传学的方面研究CXCR4基因启动子调控区CpG岛甲基化状态,在基因、分子和整体水平来探讨CXCL12/CXCR4信号通路在慢性炎症痛中的作用特点及其机制。
  方法:
  1.用完全弗氏佐剂(complete Freund's adjuvant,CFA)诱导大鼠炎症疼痛模型的建立
  2.用行为学检测来判断大鼠的机械性触诱发痛和热痛觉过敏的程度
  3.用免疫荧光双标染色来定位表达CXCR4的细胞类型
  4.用western blot方法检测DRGs中CXCR4蛋白含量变化情况
  5.用Real-time PCR法检测CXCLl2和CXCR4 mRNA的表达
  6.用甲基化特异性 PCR(MSP)和重亚硫酸测序 PCR(BSP)对 CXCR4基因启动子区甲基化检测
  7.用染色质免疫沉淀分析法(ChIP)检测NF-κB p65与CXCR4基因启动子区CpG岛结合情况。
  结果:
  研究结果显示足底注射完全弗氏佐剂(CFA)能诱导大鼠出现显著的痛觉过敏,同时也能显著增加背根神经节(DRG)中的 CXCR4 mRNA和蛋白的表达,其配体CXCL12表达同样显著上调。鞘内注射CXCR4阻断剂AMD3100能显著缓解炎症大鼠的痛觉过敏,效果呈时间和剂量依赖性。进一步通过甲基化特异性 PCR和重亚硫酸测序PCR分析发现,足底注射CFA后,CXCR4启动子调控区CpG岛发生明显的去甲基化,参与 DNA甲基化酶 DNMT3b也显著下调。通过生物信息学预测发现, CXCR4启动子调控区CpG岛上存在3个潜在的P65结合位点,并进一步通过染色质免疫沉淀证实确实存在,且炎症组的结合能力明显强于对照组。
  结论:
  炎症痛时 DRG中 CXCR4基因启动区低甲基化同时增强 p65结合进而促进CXCR4基因表达上调,高表达的 CXCR4可能参与外周痛觉信号的调制,最终产生炎症性痛过敏;这些研究结果有望从表观遗传的角度为治疗慢性痛提供理论依据。

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