摘要
1 研究背景和文献综述
1.1 斑马鱼心脏发育概述
1.1.1 斑马鱼模型的选择
1.1.2 斑马鱼心脏发育过程及研究现状
1.2 蛋白质二硫键异构酶(PDIs)家族
1.2.1 含ZF-CXXC结构域的蛋白质与表观遗传学调控
1.2.2 CXXC家族基因与Wnt信号通路及RA信号通路的关系
1.3 本文研究意义
2 材料和方法
2.1 材料
2.1.1 酶类、抗体和试剂盒
2.1.2 细胞系、菌株和质粒
2.1.3 其它试剂
2.1.4 缓冲液和培养基
2.1.5 主要实验仪器和耗材
2.1.6 生物信息学软件及数据库
2.2 方法
2.2.1 PCR
2.2.2 琼脂糖凝胶电泳检测
2.2.3 质粒的酶切鉴定
2.2.4 酶切产物与载体的连接
2.2.5 E.coliTOP10感受态细胞的制备
2.2.6 连接子的转化
2.2.7 阳性转化子的筛选和鉴定
2.2.8 融合蛋白的表达
2.2.9 考马斯亮蓝染色分析
2.2.10 CFL抗原的大量制备及纯化
2.2.11 CFL多抗血清的制备
2.2.12 抗体效价检测
2.2.13 mRNA的转录合成
2.2.14 蛋白的提取
2.2.15 免疫共沉淀
2.2.16 Western-blot
2.2.17 斑马鱼Morpholino的处理及显微注射
2.2.18 细胞(胚胎)免疫荧光标记
2.2.19 视黄酸/DEAB处理胚胎
2.2.20 胚胎原位杂交
3 实验结果及其分析
3.1 斑马鱼CFL基因生物信息学分析
3.1.1 CFL基因的进化树分析
3.1.2 CFL蛋白结构域分析
3.1.3 CFL基因的CpG岛分析
3.2 CFL多克隆抗体的制备及分析
3.2.1 CFL基因的克隆及pMD-18T-CFL重组质粒的构建
3.2.2 pET-28a-CFL融合表达质粒的构建
3.2.3 融合蛋白的诱导表达及纯化
3.2.4 CFL多克隆抗体的制备及效价检测
3.2.5 Western blot实验分析CFL的表达情况
3.2.6 Western blot实验分析CFL在斑马鱼各组织中的表达
3.2.7 CFL在斑马鱼体内的表达情况
3.2.8 CFL Morpholino的有效性检测
3.2.9 pXT7-CFL质粒的构建
3.3 视黄酸及其抑制剂对CFL表达的影响
3.4 CFL与DVL2相互作用研究
3.4.1 pCMV-MYC-CFL质粒的构建
3.4.2 pCMV-tag2B-DVL2质粒的构建
3.4.3 CFL与DVL2的CO-IP
3.4.4 CFL与DVL2的亚细胞共定位
4 讨论
4.1 CFL基因的克隆及抗体的制备
4.2 CFL基因与心脏发育的关系
4.3 CFL基因可能参与RA信号及Wnt信号之间的cross-talk
4.4 CFL基因的研究有助于明确zf-CXXC的功能
结语
参考文献
附录1:中英文缩写词简表
附录2:攻读学位期间的学术论文
致谢
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