声明
摘要
缩略语表
1 前言
1.1 研究问题的由来
1.2 植物雄性不育研究进展
1.2.1 细胞质雄性不育
1.2.2 细胞核雄性不育
1.2.3 水稻光温敏雄性核不育研究进展
1.3 Long non-coding RNA研究进展
1.3.1 Long non-coding RNA的定义,分类及功能
1.3.2 植物IncRNA研究进展
1.4 植物phasiRNA研究进展
1.4.1 tasiRNA的发现和形成过程
1.4.2 phasiRNA的形成和特异表达
1.5 研究的目的和意义
2 材料和方法
2.1 水稻材料及田间种植
2.2 定位群体的构建
2.3 分子标记的开发
2.4 转化载体及菌株
2.5 遗传转化载体构建及转化
2.5.1 互补载体构建
2.5.2 抑制载体构建
2.5.3 超表达载体构建
2.5.4 Target mimicry载体构建
2.5.5 农杆菌介导的遗传转化
2.6 水稻育性考察
2.7 水稻总DNA抽提
2.8 水稻材料基因型检测与转基因植株Southern blot拷贝数分析
2.9 水稻总RNA抽提
2.10 RACE与5’RLM-RACE
2.11 基因表达量分析与small RNA表达量分析
2.11.1 RT-PCR与qPCR
2.11.2 Stem-loop RT-PCR与page-northern blot
2.11.3 RPA(Ribonuclease Protection Assay)
2.12 Small RNA-seq及PARE文库构建
2.13 DNA甲基化分析
3 结果与分析
3.1 前人定位结果的验证
3.2 pms1显隐性关系的确定
3.3 pms1的精细定位
3.3.1 分子标记的获得
3.3.2 图位克隆pms1
3.4 pms1候选基因的分离和验证
3.4.1 互补转化结果
3.4.2 RACE确定pms1转录本
3.4.3 抑制PMS1T表达的转化结果
3.4.4 超量表达PMS1T的转化结果
3.5 PMS1T表达谱分析
3.6 PMS1T是一个long non-coding RNA
3.7 确定pms1的功能性序列差异
3.7.1 比较测序确定SNP S2是功能性序列差异
3.7.2 65 bp插入对光敏感雄性不育的影响
3.8 PMS1Y是PHAS基因
3.8.1 PMS1T是miR2118的靶基因
3.8.2 PMS1T产生phasiRNA
3.9 SNP S2与PMS1T-phasiRNA
3.9.1 SNP S2对miR2118介导的剪切效率的影响
3.9.2 PMS1T-phasiRNA可能的靶基因
3.10 PMS1T区间DNA甲基化分析
4 讨论
4.1 pms1的作用机理研究
4.2 未来研究方向
4.3 应用前景
4.4 Small peptide与IncRNA
4.5 phasiRNA与雄性不育
4.6 pms1与pms3间关系的讨论
参考文献
附录
在读期间研究成果
致谢