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微量测定阳离子抗菌肽最小抑菌和最小杀菌浓度的方法

摘要

本发明公开了一种微量测定阳离子抗菌肽最小抑菌浓度和最小杀菌浓度的方法,包括以下步骤:1)试剂配制:配制MHB培养基;2)细菌悬液制备:复苏细菌至对数生长期,制备浓度一定的细菌悬液;3)细菌悬液计数:倍比稀释步骤2)中的细菌悬液后滴板计数;4)药剂稀释:倍比稀释药剂至不同测试浓度梯度;5)测定最小抑菌浓度:将步骤4)中稀释好的药剂与步骤2)中制备的细菌悬液混合后培养,观察是否有肉眼可见的细菌沉淀;6)测定最小杀菌浓度:将步骤5)中有抑菌效果的测试滴板后培养,观察是否有菌落生长。采用该方法测定阳离子抗菌肽最小抑菌浓度和最小杀菌浓度具有干扰小、微量、方便、快捷的特点。

著录项

  • 公开/公告号CN103173517A

    专利类型发明专利

  • 公开/公告日2013-06-26

    原文格式PDF

  • 申请/专利权人 浙江大学;

    申请/专利号CN201310065813.4

  • 申请日2013-03-01

  • 分类号C12Q1/18(20060101);

  • 代理机构33200 杭州求是专利事务所有限公司;

  • 代理人张法高

  • 地址 310027 浙江省杭州市西湖区浙大路38号

  • 入库时间 2024-02-19 18:48:14

法律信息

  • 法律状态公告日

    法律状态信息

    法律状态

  • 2014-07-30

    授权

    授权

  • 2014-07-23

    著录事项变更 IPC(主分类):C12Q1/18 变更前: 变更后: 申请日:20130301

    著录事项变更

  • 2013-07-24

    实质审查的生效 IPC(主分类):C12Q1/18 申请日:20130301

    实质审查的生效

  • 2013-06-26

    公开

    公开

说明书

技术领域

本发明属于一种测定微量抗菌物质最小抑菌浓度和最小杀菌浓度,特别是适用于阳离子抗菌肽测定的方法。

背景技术

抗菌肽是动物体内一大类具有抗菌活性和免疫功能的生物活性物质。抗菌肽具有广谱抗菌活性和丰富的作用机制。不仅和传统抗菌活性物质一样,具有胞内作用机制,包括:与核酸物质结合,阻断DNA复制、RNA合成;影响蛋白质合成;抑制隔膜、细胞壁合成,阻碍细胞分裂;抑制胞内酶的活性。抗菌肽尤其是阳离子抗菌肽有膜作用机制,目前认为存在:“桶板”模型、“毯式”模型,“环形孔”模型和“凝聚”模型等理论。由于抗菌肽的来源天然和作用机制特殊,不易产生耐药性,对人和动物的副作用小,所以备受关注,是抗生素的理想替代品。研究其菌株耐药性、杀菌效果及其杀菌机制则尤为重要,而最小抑菌浓度和最小杀菌浓度是评价抗菌物质抗菌效果和进一步实验的基础指标。

由于阳离子抗菌肽携带有正电荷,一般检测方法使用的抗生素敏感测定培养基中的阳离子浓度以及所用器皿的吸附作用对检测会造成较大影响。加之一般抗菌肽的待测样品量微少,不能满足一般检测方法的需求量。所以找到一种能够适用于阳离子抗菌肽的,检测干扰小、微量样品即可操作,并且在实验过程中根据需要可以相应调节的方法,显得尤为迫切。

发明内容

本发明要解决的技术问题是提供一种干扰小、微量、方便、快捷的测定阳离子抗菌肽最小抑菌浓度和最小杀菌浓度的方法。

为了解决上述技术问题,本发明提供一种测定阳离子抗菌肽最小抑菌浓度和最小杀菌浓度的方法,包括以下步骤:

1) 试剂配制

①MHB(Mueller Hinton Broth)培养基:21 g MHB培养基粉末溶于1 L蒸馏水中,121 ℃灭菌20 min,室温冷却,4 ℃保存备用。

②MHB琼脂培养基:21 g MHB培养基粉末、15 g琼脂粉溶于1 L蒸馏水中,121 ℃灭菌20 min,倒入无菌培养皿中,以刚好覆盖培养皿底部为宜,室温冷却凝固,4℃保存备用。

③药剂储存液:准确称取2 mg待测药剂,用无菌水溶解至4 mg/ml,4 ℃保存备用。

2) 细菌悬液制备

①选取-80 ℃保存的测试菌种的甘油菌,室温解冻后混悬,用接种环划线MHB琼脂培养基,37 ℃培养12 hr,待长出单菌落后,4 ℃保存备用。

②用接种环挑取步骤2)①中的单菌落,接种于5 ml MHB培养基试管,37 ℃、250 rpm培养12 hr,待菌液浑浊后,4 ℃保存备用。

③混悬步骤2)②中的菌液,移取50 μl接种于5 ml MHB培养基试管,37 ℃、250 rpm培养约2 hr。

④测定步骤2)③中菌液的OD600值,OD600值约为0.5时可使用。0.6<OD600<1.0时,可用MHB培养基稀释至适宜范围。

⑤将步骤2)④中的菌液与MHB培养基以30 μl:30 ml混合制成细菌悬液,制备好的细菌悬液应在30 min内使用完毕。

3) 细菌悬液计数

①步骤2)⑤中的细菌悬液与MHB培养基以10 μl:90 μl混合稀释,连续4次,分别得到10、10^2、10^3和10^4倍稀释细菌悬液。

②取1块MHB琼脂培养基(提前2 hr在37 ℃培养箱中缓解),记号笔在底部外侧画十字分为4个相等扇区。从步骤3)①中的10、10^2、10^3和10^4等4个浓度稀释梯度细菌悬液中移10 μl滴加在MHB琼脂培养基标记好的对应扇区,每个梯度3个重复。

③待步骤3)②中的细菌悬液被培养基吸收,37 ℃培养12 hr,选取3个重复菌落总数为30~200的扇区计数,计算CFU=3个重复菌落总数/30×稀释倍数×1000,CFU值在0.5~1×10^6/ml为宜。

4) 药剂稀释

取1块未经细胞培养处理的聚丙烯材质的96孔板,第1列每孔加入32 μl步骤1)③中的药剂储存液和168 μl无菌水,终浓度为640 μg/ml。第2~10列每孔加入100 μl 无菌水。从第1列起移取100 μl加入次列,如此逐级等比稀释至第10列,第10列移去100 μl。得到640、320、160、80、40、20、10、5、2.5、1.25共10个浓度梯度,每孔100 μl,现用现配。

5) 最小抑菌浓度(MIC)的测定

①取1块未经细胞培养处理的聚丙烯材质的96孔板,每行作为1个测试,第1~10列每孔加入90 μl细菌悬液,第11列加入100 μl细菌悬液作为有菌对照,第12列加入100 μl MHB培养基作为无菌对照。

②从步骤4)中的药剂稀释板移取10 μl稀释药剂加入步骤5)①中96孔板对应的孔中,终浓度为64、32、16、8、4、2、1、0.5、0.25和0.125 μg/ml以及有菌和无菌对照,终体积100 μl。每种药剂对每种细菌进行3次重复测试。

③步骤5)②中的96孔板用保鲜膜包好,放入湿盒(置于容器中覆盖湿润纱布即可),37 ℃培养12 hr。肉眼无可见细菌沉淀的孔所对应的最小浓度数值即为最小抑菌浓度(MIC)。

6) 最小杀菌浓度(MBC)的测定

①MHB琼脂培养基提前2 hr在37 ℃培养箱中缓解,记号笔在底部外侧画十字分为4个相等扇区。

②从步骤5)③中最小抑菌浓度对应的孔起,向高浓度选取4个浓度梯度,每个浓度梯度取10 μl滴加在步骤6)①中MHB琼脂平板对应扇区,做好标记,每个梯度3个重复。待细菌悬液被培养基吸收,37 ℃培养12 hr。肉眼无菌落生长的扇区所对应的最小浓度数值即为最小杀菌浓度(MBC)。

作为本发明的微量测定阳离子抗菌肽最小抑菌浓度和最小杀菌浓度的方法的改进:1)使用非阳离子调节的培养基,或者说是低阳离子培养基。

作为本发明的微量测定阳离子抗菌肽最小抑菌浓度和最小杀菌浓度的方法的改进:4)和5)使用未经细胞培养处理的聚丙烯材质的96孔板。

本发明中,待测药剂是各类具有抗菌活性的物质,特别是阳离子抗菌肽。

本发明方法的检测结果表明:测试方法能够满足微量抗菌活性物质的最小抑菌浓度和最小杀菌浓度测定的需求,结果重复性好。

本发明具有如下有益效果:

1 可以微量测定,满足抗菌活性物质样品少时的测定需求,2 mg即可测定,且节约试剂。

2 可以测定阳离子抗菌肽,排除了反应体系中阳离子的干扰,以及96孔板对阳离子抗菌肽的吸附作用。

3 本方法操作简便,所用设备简单常见,所用试剂经济实惠,方法简单易行。

附图说明

图1是细菌悬液计数滴板培养后培养皿照片。

图2是药剂稀释及与细菌悬液混合铺96孔板的结果示意图。

具体实施方式

以下结合附图和具体实施方式对本发明做进一步的说明。

实施例1

 2012年9月18日,测定抗菌肽PR-39和抗生素金霉素、新霉素及硫酸粘菌素对大肠杆菌CMCC 44103和ATCC 25922的最小抑菌浓度和最小杀菌浓度。

)试剂配制

①MHB培养基:21 g MHB培养基粉末(BD Difco,货号275730 )溶于1 L蒸馏水中,121 ℃灭菌20 min,室温冷却,4 ℃保存备用。

②MHB琼脂培养基:21 g MHB培养基粉末、15 g琼脂粉溶于1 L蒸馏水中,121 ℃灭菌20 min,倒入无菌培养皿中,以刚好覆盖培养皿底部为宜,室温冷却凝固,4℃保存备用。

③药剂储存液:准确称取2 mg待测药剂,用无菌水溶解至4 mg/ml,4 ℃保存备用。

)细菌悬液制备

①选取-80 ℃保存的甘油菌,室温解冻后混悬,用接种环划线MHB琼脂培养基,37 ℃培养12 hr,待长出单菌落后,4 ℃保存备用。

②用接种环挑取步骤2)①中的单菌落,接种于5 ml MHB培养基试管,37 ℃、250 rpm培养12 hr,待菌液浑浊后,4 ℃保存备用。

③混悬步骤2)②中的菌液,移取50 μl接种于5 ml MHB培养基试管,37 ℃、250 rpm培养约2 hr。

④测定步骤2)③中菌液的OD600值,大肠杆菌CMCC 44103的OD600值为0.456,大肠杆菌A细胞培养C 25922的OD600值为0.476。

⑤将步骤2)④中的菌液与MHB培养基以30 μl:30 ml混合制成细菌悬液,制备好的细菌悬液应在30 min内使用完毕。

)细菌悬液计数

①步骤2)⑤中的细菌悬液与MHB培养基以10 μl:90 μl混合稀释,连续4次,分别得到10、10^2、10^3和10^4倍稀释细菌悬液。

②取1块MHB琼脂培养基(提前2 hr在37 ℃培养箱中缓解),记号笔在底部外侧画十字分为4个相等扇区。从步骤3)①中的10、10^2、10^3和10^4等4个浓度稀释梯度细菌悬液中移10 μl滴加在MHB琼脂培养基标记好的对应扇区,每个梯度3个重复。方法如图1所示。

③待步骤3)②中的细菌悬液被培养基吸收,37 ℃培养12 hr,选取3个重复菌落总数为30~200的扇区计数,计算CFU=3个重复菌落总数/30×稀释倍数×1000,CFU值在0.5~1×10^6/ml为宜。结果如下表1所示:

表1

菌  种稀释100倍折CFU稀释1000倍折CFU大肠杆菌CMCC 441032317.7×10^5993.3×10^6大肠杆菌ATCC 259221394.6×10^5361.2×10^6

4)药剂稀释

取1块未经细胞培养处理的聚丙烯材质的96孔板,第1列每孔加入32 μl步骤1)③中的药剂储存液和168 μl无菌水,终浓度为640 μg/ml。第2~10列每孔加入100 μl 无菌水。从第1列起移取100 μl加入次列,如此逐级等比稀释至第10列,第10列移去100 μl。得到640、320、160、80、40、20、10、5、2.5、1.25共10个浓度梯度,每孔100 μl,现用现配。

)最小抑菌浓度(MIC)的测定

①取1块未经细胞培养处理的聚丙烯材质的96孔板,每行作为1个测试,第1~10列每孔加入90 μl细菌悬液,第11列加入100 μl细菌悬液作为有菌对照,第12列加入100 μl MHB培养基作为无菌对照。方法如图2所示。

②从步骤4)中的药剂稀释板移取10 μl稀释药剂加入步骤5)①中96孔板对应的孔中,终浓度为64、32、16、8、4、2、1、0.5、0.25和0.125 μg/ml以及有菌和无菌对照,终体积100 μl。每种药剂对每种细菌进行3次重复测试。

③步骤5)②中的96孔板用保鲜膜包好,放入湿盒(置于容器中覆盖湿润纱布即可),37 ℃培养12 hr。肉眼无可见细菌沉淀的孔所对应的最小浓度数值即为最小抑菌浓度(MIC,μg/ml)。结果如下表2所示:

表2

菌  种金霉素新霉素硫酸粘菌素PR-39大肠杆菌CMCC 44103110.54大肠杆菌ATCC 25922120.54

6)最小杀菌浓度(MBC)的测定

①MHB琼脂培养基提前2 hr在37 ℃培养箱中缓解,记号笔在底部外侧画十字分为4个相等扇区。

②从步骤5)③中最小抑菌浓度对应的孔起,向高浓度选取4个浓度梯度,每个浓度梯度取10 μl滴加在步骤6)①中MHB琼脂平板对应扇区,做好标记,每个梯度3个重复。待细菌悬液被培养基吸收,37 ℃培养12 hr。肉眼无菌落生长的扇区所对应的最小浓度数值即为最小杀菌浓度(MBC, μg/ml),结果如下表3所示:

表3

菌  种金霉素新霉素硫酸粘菌素PR-39大肠杆菌CMCC 441034214大肠杆菌ATCC 259228818

最后,还需要注意的是,本发明同样适用于其他阳离子抗菌物质测定和非阳离子抗菌物质微量测定的需求。以上列举的仅是本发明的若干个具体实施例。显然,本发明不限于以上实施例,还可以有许多变形。本领域的普通技术人员能从本发明公开的内容直接导出和联想到的所有变形,均应认为是本发明的保护范围。

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