绿色荧光蛋白质类
绿色荧光蛋白质类的相关文献在2004年到2020年内共计113篇,主要集中在基础医学、分子生物学、肿瘤学
等领域,其中期刊论文113篇、专利文献299966篇;相关期刊49种,包括中国医药生物技术、中华病理学杂志、中华临床医师杂志(电子版)等;
绿色荧光蛋白质类的相关文献由583位作者贡献,包括刘毅、黄强、严俊等。
绿色荧光蛋白质类—发文量
专利文献>
论文:299966篇
占比:99.96%
总计:300079篇
绿色荧光蛋白质类
-研究学者
- 刘毅
- 黄强
- 严俊
- 代兴亮
- 兰青
- 刘娟
- 刘洋
- 吴祖泽
- 宋枚
- 张德宇
- 张芙蓉
- 张超
- 徐宇
- 徐小洁
- 惠玲
- 朱祥
- 李庆芳
- 杨国玲
- 杨月峰
- 杨洁
- 王华
- 王立生
- 王荣亮
- 肖凤君
- 葛林
- 董军
- 袁文
- 谭灿
- 陈玉
- 马路园
- 高星杰
- Erwin Tschachler
- Florian Gruber
- Heidemarie Rossite
- Leopold Eckhart
- Michael Mildner
- 丁国富
- 丛洪良
- 于世炎
- 于德民
- 付文亮
- 付文亮2
- 付治卿
- 付秋霞
- 付雪
- 付鹏
- 任远
- 任静1
- 任静12
- 伍建春
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张芙蓉;
郭春梅;
谭灿;
刘洋;
徐宇;
杨国玲
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摘要:
目的 对丝氨酸水解酶家族1(FSH1)蛋白在犬小孢子菌中进行亚细胞定位分析.方法 以前期构建的犬小孢子菌FSH1质粒及载体pCAMBIA-LRP-增强型绿色荧光蛋白(EGFP)为模板,PCR扩增FSH1基因及EGFP基因;同时利用SnaBI/KpnI对pCAMBIA-LRP-EGFP质粒双酶切获得载体DNA,将扩增的EGFP基因克隆至酶切好的载体DNA中获得EGFP表达载体;将扩增的FSH1基因及EGFP基因克隆至酶切好的载体DNA中获得融合载体Ptrcp-FSH1-EGFP-Ttrcp.通过根癌农杆菌介导的遗传转化方法,用重组质粒转化犬小孢子菌,使融合基因FSH1-EGFP在真菌通用启动子(Ptrpc)和终止子(Ttrpc)调控下在犬小孢子菌中整合型表达,利用激光共聚焦显微镜观察融合蛋白的细胞定位.结果 成功构建根癌农杆菌转化系统及犬小孢子菌EGFP表达载体;融合基因FSH1-EGFP在犬小孢子菌中获得整合型表达.激光共聚焦显微镜显示FSH1-EGFP融合蛋白的荧光信号呈颗粒状或团块状集中于犬小孢子菌的细胞质及细胞核中.结论 FSH1-EGFP融合蛋白成功定位于犬小孢子菌的细胞质及细胞核中,为进一步明确犬小孢子菌FSH1基因的功能及致病机制奠定了基础.
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刘姗;
刘美丽;
刘丹;
闫承慧;
田孝祥;
刘艳霞
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摘要:
目的 构建人E1A激活基因阻遏子基因(hCREG)不同截短片段的启动子增强型绿色荧光蛋白(pEGFP1)报告基因载体,比较各启动子转录活性,从而确定hCREG核心启动子区.方法 通过查询美国国立生物技术信息中心(NCBI)数据库hCREG序列并结合启动子特点,获得长度为2003(–1925/+78)bp的启动子片段.利用PCR法及双酶切法截短5个启动子片段并克隆至pEGFP1中,构建pEGFP1_hCREG_2003、pEGFP1_hCREG_945、pEGFP1_hCREG_586、pEGFP1_hCREG_478、pEGFP1_hCREG_358报告基因载体质粒.并将其与内参质粒pGL4.73[hRluc/SV40]瞬时共转染入293T细胞48 h,荧光显微镜下观察pEGFP1_hCREG启动子报告基因的绿色荧光表达;采用实时定量PCR检测各启动子mRNA的表达,并确定核心启动子区.采用生物信息学方法预测核心启动子区可能结合的转录因子.结果 通过双酶切和基因测序法证实成功构建5个hCREG启动子报告基因载体.荧光显微镜下的观察结果和实时定量PCR结果均显示,pEGFP1_hCREG_586转录活性最高(P0.05),提示–867/–509 bp为负性调控区,–400/–281 bp和–508/–401 bp均存在增强子序列,故hCREG基因核心启动子区位于基因5'上游序列–508/–281 bp区域.生物信息学预测关键启动子区–508/–281 bp可能结合的转录因子为Pax5/P53、C/EBPβ、GR-β、GATA-1、GR-α、c-Jun、PRB/PRA、YY1、RXR-α、AP-2、FOXP3、GR、TFIID、STAT4、c-Ets-1.结论 成功构建了hCREG基因启动子重组质粒,其核心启动子位于–508/–281 bp区域,此区域可结合多个转录因子.
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刘洋;
徐宇;
张芙蓉;
谭灿;
杨国玲
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摘要:
目的 用增强型绿色荧光蛋白(EGFP)标记犬小孢子菌PQ-LRP蛋白,明确PQ-LRP蛋白在犬小孢子菌中的定位.方法 提取犬小孢子菌总RNA,反转录为cDNA作为模板,PCR扩增PQ-LRP基因,将PQ-LRP基因与EGFP基因构成融合基因,连接到pCAMBIA 1300质粒载体,采用根癌农杆菌转化法对犬小孢子菌进行转化,使融合基因LRP-EGFP在真菌通用启动子(Ptrpc)和终止子(Ttrpc)调控下在犬小孢子菌中整合型表达,激光共聚焦显微镜检测融合蛋白的细胞定位.结果 成功构建表达载体pCAMBIA-LRP-EGFP,融合基因LRP-EGFP在犬小孢子菌中获得整合型表达.激光共聚焦显微镜下LRP-EGFP的荧光信号呈颗粒状或团块状集中于犬小孢子菌的细胞膜上.结论 LRP-EGFP融合基因在犬小孢子菌中成功表达,且PQ-LRP蛋白定位于犬小孢子菌细胞膜上.%Objective To determine the location of PQ-LRP protein in Microsporum canis using the enhanced green fluorescent protein(EGFP)as a marker.Methods The total RNA was extracted from Microsporum canis,and reversely transcribed into cDNA.The PQ-LRP gene was amplified by PCR using the above cDNA as the template.The fusion gene of PQ-LRP gene and EGFP gene was linked to the plasmid pCAMBIA 1300.Microsporum canis was subjected to Agrobacterium tumefaciens-mediated transformation,in order to achieve the integrated expression of the fusion gene LRP-EGFP in Microsporum canis under the regulation by the fungal universal promoter Ptrpc and terminator Ttrpc.Laser-scanning confocal microscopy was conducted to determine the cellular localization of the fusion protein.Results The expression vector pCAMBIA-LRP-EGFP was successfully constructed,and the fusion gene LRP-EGFP was expressed integratedly in Microsporum canis.Laser-scanning confocal microscopy showed that fluorescence signals of LRP-EGFP were concentrated on the cell membrane of Microsporum canis,giving a granular or cluster-like appearance.Conclusion The infusion gene LRP-EGFP can be successfully expressed in Microsporum canis,and PQ-LRP protein is located on the cell membrane of Microsporum canis.
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姜佳楠;
覃金华;
范增;
何丽娟;
岳文;
郑敏;
李艳华;
裴雪涛
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摘要:
目的构建人血小板第4因子(PF4)基因启动子-绿色荧光蛋白(GFP)报告基因载体PLVX-PF4-promoter-GFP,并检测其转录活性。方法在NCBI数据库中获得人PF4基因启动子5’端非编码区包含转录起始位点在内的-245~+49 bp的DNA序列。以正常人全血基因组DNA为模板,利用PCR扩增该序列,与GFP序列连接并插入到PLVX-tight-puro载体上,构建重组质粒PLVX-PF4-promoter-GFP。将其包装慢病毒并感染MEG01细胞,用嘌呤霉素筛选出稳转细胞株,并用12-肉豆蔻酰-13-乙酸佛波酯(PMA)诱导MEG01细胞分化成熟,通过流式细胞术检测GFP表达率,从而验证报告基因的转录活性。结果构建的载体PLVX-PF4-promoter-GFP经酶切鉴定及测序结果比对完全正确,将其转入MEG01细胞,经药物筛选获得了MEG01-PF4-GFP细胞株。流式细胞术检测结果表明,正常培养条件下的MEG01-PF4-GFP细胞中GFP阳性细胞率低[(5.467±0.2603)%],该细胞经PMA诱导分化后,GFP阳性细胞率显著升高[(24.93±2.571)%]。结论成功构建了人PF4启动子-GFP报告基因载体,为后续深入研究PF4基因的调控机制及巨核细胞发育分化的分子生物学机制奠定了基础。
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王蕾;
王晓英;
王玥;
付秋霞;
王东根;
詹林盛
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摘要:
目的建立一种高效慢病毒转染小鼠肺的方法。方法采用绿色荧光蛋白(green fluorescent protein,GFP)和萤光素酶(luciferase,Luc)双基因标记慢病毒载体,通过293 FT细胞体外包装带有报告基因的慢病毒颗粒。选取BALB/c小鼠30只,每组15只,随机分为高压喷雾注射组和普通注射组,小鼠手术暴露气管,经气道注射报告基因标记的慢病毒颗粒,观察慢病毒转染至肺后2、4、6、8、10、12 h小鼠存活率和呼吸系统表现,并在转染后24 h体外活体荧光成像仪检测报告基因在小鼠体内的发光强度。结果荧光显微镜下观察,见多数细胞表达GFP,并见细胞融合现象,少量细胞悬浮,病毒滴度为5×107U/ml。活体荧光成像结果显示,与普通注射方法相比,高压喷雾注射组报告基因荧光强度均匀分布在肺中,荧光强度较高,两组间表达强度比较差异有统计学意义(P=0.0095);且高压喷雾注射组小鼠气促、鼻唇黏膜发绀(cyanosis)较普通注射组恢复快,两组12 h存活率分别为80%和50%。结论高压喷雾注射技术转染慢病毒颗粒至小鼠肺的技术更为高效,可用于建立外源基因小鼠肺转染模型。
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金婷婷;
Heidemarie Rossite;
Michael Mildner;
Florian Gruber;
Leopold Eckhart;
Erwin Tschachler;
赵邑
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摘要:
Objective To explore a high-throughput method for quantitative analysis of autophagosomes.Methods Green fluorescent protein-light chain 3(GFP-LC3)transgenic murine keratinocytes were randomly divided into 4 groups:control group receiving no treatment,starvation group subjected to starved culture,20 J/cm2 ultraviolet A (UVA) group treated with 20 J/cm2 UVA radiation,and 40 J/cm2 UVA group treated with 40 J/cm2 UVA radiation.After 6-hour treatment,the cells were fixed,and images were acquired by confocal laser scanning microscopy.A macro was created by the ImageJ software to automatically quantify the GFP-LC3 puncta in the cells and the number of cells.Then,the level of autophagy was compared among different groups.Results By using the macro created by the ImageJ software,autophago-somes in the keratinocytes were successfully identified and quantified.Less than 0.6 second was needed for analyzing an image of 4.2 mega pixels in a test computer.The average number of autophagosomes in keratinocytes was significantly higher in the starvation group,20-J/cm2 UVA group and 40-J/cm2 UVA group than in the control group whether with the treatment with pepstatin A (F =20.05,P <0.05) or not (F =5.01,P < 0.05).This method could successfully differentiate the autophagy levels among the starvation group,UVA irradiation groups and control group.Conclusion A new high-throughput method,which can rapidly and accurately quantify GFP-LC3 puncta in cells,is established successfully to quantificationally detect autophagy.%目的 探索一种高通量定量检测细胞自噬小体数量的方法.方法 将绿色荧光蛋白-轻链蛋白3(GFP-LC3)转基因小鼠的角质形成细胞分为对照组(不接受照射或饥饿处理)、饥饿组(给予饥饿处理)、20 J/cm2长波紫外线(UVA)照射组和40 J/cm2 UVA照射组.处理后6h,将细胞固定后在共聚焦显微镜下采集图片.用ImageJ软件编辑宏指令对细胞内GFP-LC3绿色荧光点及细胞进行自动计数,并比较不同组间自噬水平.结果 利用ImageJ软件编辑的宏指令可以成功识别并计数荧光图片中的自噬小体.在测试计算机上分析一张420万像素的图片仅需不到0.6 s.饥饿组、20 J/cm2UVA照射组和40 J/cm2 UVA照射组平均自噬小体数量高于对照组,未加胃抑素A时各组间比较,F=5.01,P< 0.05;加入胃抑素A时各组间比较,F=20.05,P<0.05.该方法可以成功区分饥饿组、UVA照射组和对照组的自噬水平差异.结论 成功为自噬研究提供了一种新的高通量定量检测方法,该方法能够快速准确地检测细胞自噬荧光点.