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Nano-mechanical mapping of the interactions between surface-bound RC-LH1-PufX core complexes and cytochrome c (2) attached to an AFM probe

机译:表面结合的RC-LH1-pufX核心复合物与附着于aFm探针的细胞色素c(2)之间相互作用的纳米机械作图

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摘要

Electron transfer pathways in photosynthesisudinvolve interactions between membrane-bound complexesudsuch as reaction centres with an extrinsic partner. In thisudstudy, the biological specificity of electron transfer betweenudthe reaction centre-light-harvesting 1-PufX complex and itsudextrinsic electron donor, cytochrome c2, formed the basisudfor mapping the location of surface-attached RC-LH1-PufXudcomplexes using atomic force microscopy (AFM). Thisudnano-mechanical mapping method used an AFM probeudfunctionalised with cyt c2 molecules to quantify the interactionudforces involved, at the single-molecule level underudnative conditions. With surface-bound RC-His12-LH1-PufXudcomplexes in the photo-oxidised state, the mean interactionudforce with cyt c2 is approximately 480 pN with an interactionudfrequency of around 66 %. The latter value loweredud5.5-fold when chemically reduced RC-His12-LH1-PufXudcomplexes are imaged in the dark to abolish electronudtransfer from cyt c2 to the RC. The correspondence betweenudtopographic and adhesion images recorded over the sameudarea of the sample shows that affinity-based AFM methodsudare a useful tool when topology alone is insufficient forudspatially locating proteins at the surface of photosyntheticudmembranes.
机译:光合作用中的电子转移途径涉及与膜结合的复合物之间的相互作用例如外部反应伙伴的反应中心。在这项研究中,电子在反应中心集光的1-PufX配合物与其非外在电子供体细胞色素c2之间转移的生物学特异性,为绘制表面附着的RC-LH1的位置奠定了基础。 PufX udcomplexs使用原子力显微镜(AFM)。这种 udnano-机械作图方法使用了以cyt c2分子功能化的AFM探针,以定量的单分子水平定量了涉及的相互作用 uds。当表面结合的RC-His12-LH1-PufX ud复合物处于光氧化态时,与cyt c2的平均相互作用 udforce约为480 pN,相互作用 udfrequency约为66%。当化学还原的RC-His12-LH1-PufX ud复合物在黑暗中成像以消除从cyt c2到RC的电子 ud转移时,后者值降低了 ud5.5倍。在同一样品上记录的 u地形图和粘附图像之间的对应关系表明,仅靠拓扑结构不足以在空间上将蛋白质 u光合作用 udecmranbrane定位时,基于亲和力的AFM方法是一种有用的工具。

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